紫薇组培快繁

紫薇组培快繁（精选5篇）

紫薇组培快繁 篇1

紫薇别名痒痒树、满堂红、百日红, 为千屈菜科紫薇属的落叶灌木或小乔木。其皮光滑洁净, 老后表皮片状剥落, 树形优美。枝干多扭曲, 小枝幼时略成四棱。单叶互生或对生, 椭圆形至长卵圆形, 长3~7cm, 几无柄, 端尖或钝。圆锥花序顶生, 长6~20cm。花多为紫色或粉色。花瓣皱褶, 花萼绿色, 平滑。雄蕊多数, 不等长。花朵繁密, 花期7~9月。蒴果圆球形, 果熟10月。紫薇喜温暖湿润, 喜阳光而稍耐阴, 有一定的抗寒力和耐寒力, 是夏秋季节主要的园林观花、观干和观姿树种, 适宜栽植于城市花坛、庭园内、建筑物前或池畔、路边及草坪等处。一般通过播种和扦插的方法进行繁殖, 现研究其组培快速繁殖技术, 为紫薇的繁殖提供一条新的思路。

1 材料与方法

1.1 试验材料与培养条件

5~6月选取健康生长的紫薇当年萌发的带芽枝条, 去掉大叶, 在自来水下冲洗干净, 剪成带芽2~3cm茎段, 在超净工作台上, 先用70%的酒精处理30s, 无菌水冲洗2~3次, 再用0.1%升汞消毒5~7min, 无菌水冲洗3~4次, 将茎段接种于启动培养基上。各培养基均加入白砂糖30g/L、琼脂6.5g/L, 调p H值至6.2。培养温度 (25±1) ℃, 光照14h/d, 光照强度2000Lx。

1.2 启动培养

启动培养基以MS为基本培养基, 附加不同浓度的细胞分裂素BA和生长素NAA, 每瓶接种1个芽, 每处理30瓶, 重复2次, 生长25d, 调查芽的诱导率。

1.3 增殖培养

将启动培养诱导的芽, 接种到以MS为基本培养基, 附加不同浓度的BA与NAA配比的增殖培养基上。每瓶接种5个芽, 每处理20瓶, 重复2次, 生长30d, 调查增殖系数和平均株高, 筛选最佳增殖组合。

1.4 生根培养

无菌条件下切取丛生芽中3cm左右的壮苗转接至1/2MS生根培养基上, IBA设置4种浓度水平, 摸索最佳生根浓度。每处理20瓶, 每瓶5株, 重复2次, 生长25d, 调查平均每株生根数、平均根长和生根率。

2 结果与分析

2.1 启动培养

启动培养的成功除了有很好的外植体杀菌外, 还取决于外植体生长需要的营养与激素配比。从表1可以看出, 在紫薇启动培养中, 保持生长素NAA不变, 不同浓度的细胞分裂素BA对芽的启动影响很大, 随着浓度的升高, 成芽率不断升高, 当BA为0.8mg/L时, 成芽率最高, 随后成芽率下降。另外, 在启动培养中发现, 较高的BA会使茎段产生愈伤组织, 不利于芽的诱导。紫薇启动培养的最佳培养基为MS+BA 0.8 mg/L+NAA 0.1mg/L, 诱导率平均为50.0%。

2.2 不同浓度BA与NAA对紫薇增殖系数和生长量的影响

在紫薇的增殖过程中发现, 随着细胞分裂素BA浓度的增大, 增殖系数不断增高;在BA浓度为1.0mg/L时增殖系数最高;当BA浓度再增高时, 增殖系数呈下降趋势。由此说明紫薇适宜在低浓度的细胞分裂素下增殖。由表2可以看出, MS+BA 1.0mg/L+NAA 0.4mg/L作为增殖培养基效果最佳。

2.3 不同浓度IBA对紫薇试管苗生根的影响

当丛生芽长至2.5cm左右时, 可以接入生根培养基中, 在生根培养基中10d有根眼出现, 20d根可以长到2cm左右, 根数2~4条。从表3可以看出, 1/2MS+IBA 0.5mg/L培养基最适合紫薇生根。

3 结论

对紫薇当年生茎段进行组培快繁技术研究, 结果表明, 紫薇在MS基本培养基附加不同浓度BA与NAA激素配比下, 启动诱导率平均可达50.0%, 增殖系数平均为3.9, 生根培养基为1/2MS+IBA 0.5mg/L, 生根率达到100.0%。

摘要：以紫薇的当年生嫩枝茎段为外植体进行组织快繁试验, 结果表明:紫薇的最佳诱导培养基为MS+NAA0.1mg/L+BA0.8mg/L, 增殖培养基为MS+BA1.0mg/L+NAA0.4mg/L, 生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg/L, 生根率可达到100.0%。

关键词：紫薇,组织培养,增殖系数,生长量

参考文献

[1]杨彦伶, 杨柳, 张亚东.紫薇组织培养技术[J].林业科技开发, 2005 (2) :50-52.

[2]瞿宏杰, 王会.不同培养基对紫薇试管苗的诱导·增殖·生根的影响[J].安徽农业科学, 2008 (21) :8906-8907.

[3]姜旭红, 宋刚, 张虎, 等.日本紫薇的组织培养与快速繁殖[J].植物生理学通讯, 2004 (6) :707.

[4]曾志林.紫薇的繁殖技术[J].中国林业, 2004 (19) :39.

[5]杨建刚.紫薇的繁殖技术[J].农村实用技术, 2006 (3) :43.

[6]牟少华, 刘庆华, 王奎玲.紫薇研究进展[J].莱阳农学院学报, 2002 (4) :276-278.

[7]周玉敏, 徐自警.紫薇的繁殖栽培技术[J].中国林副特产, 2009 (1) :46-47.

紫薇组培快繁 篇2

连钱草组培快繁技术研究

用连钱草无菌茎尖为外植体进行快速繁殖,分别诱导、分化、生根形成再生植株进行快速繁殖,并移栽成活.结果表明在MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L培养基上诱导丛生芽效果最佳.在MS+IBA1.0 mg/l+KT 1.0 mg/L培养基中根的诱导率为100%.

作 者：韩素菊 黎云祥 杨子松 姜天亮 李尤 HAN Su-ju LI Yun-xiang YANG Zi-song JIANG Tian-liang LI You 作者单位：西华师范大学,四川省环境科学与生物多样性保护重点实验室,四川,南充,637002刊 名：广西植物 ISTIC PKU英文刊名：GUANGXI ZHIWU年，卷(期)：26(3)分类号：Q943.1关键词：连钱草 组织培养 快繁 Glechoma longituba tissue culture rapid propagation

高山杜鹃组培快繁技术 篇3

高山杜鹃通常无种子, 主要靠扦插繁殖, 而扦插繁殖受母株材料和繁殖季节的影响, 往往无法满足市场的需要。应用组织培养技术进行高山杜鹃的繁殖, 具有繁殖速度快, 不受季节影响等特点, 对于优良品种的引进和推广具有重大意义。本课题组通过引进高山杜鹃品种, 采用组织培养技术进行种苗快速繁殖研究, 经过三年的试验, 基本上可以实现高山杜鹃种苗的规模化生产。

一、培养条件

培养温度为25℃左右, 每天12~14小时光照, 光照强度为1 500~2 500勒克斯 (Lx) 。

二、培养基的制备

先将植物生长需要的MS大量元素、微量元素和激素配制成母液, 按照所需培养基配方进行培养基的制备, 培养基分装到清洗干净并通过高温烘干的玻璃瓶中, 放入高压灭菌锅灭菌20分钟后, 取出冷却待用。

1. 茎尖诱导分化丛生芽培养基

R ead+ZT1.0 mg/L+N AA 0.1mg/L

2. 增殖培养基

R ead+ZT 0.5mg/L+N AA 0.1mg/L

3. 生根壮苗培养基

1/4 MS+TDZ0.5mg/L+IAA 0.5mg/L+GA31.0mg/L+活性炭1.5g/L

三、培养程序

1. 取材

选取长势良好的高山杜鹃茎尖作为外植体。

2. 接种

外植体在加有适量洗衣粉的水中浸泡10分钟, 再用流水反复冲洗干净, 然后在超净工作台上用70%酒精消毒10秒, 取出用无菌水冲洗2次, 再用0.1%升汞消毒5分钟, 用无菌水冲洗4~5次, 用无菌滤纸吸干表面水分, 将外植体接种在诱导培养基上。

3. 生长分化

60天左右形成丛生芽, 90天后丛生芽生长明显加快。

4. 增殖培养

在无菌条件下将丛生芽分割成直径1cm的小块, 然后接种在增殖培养基上进行继代培养。

5. 生根壮苗培养

将增殖培养基上形成的高2cm的粗壮苗分株, 扦插于生根培养基中培养20天后, 在切口处长出辐射状的不定根。生根阶段, 为了使生根苗生长健壮, 尽快地适应移栽环境, 要适当增加光照强度, 一般控制在3 000~5 000勒克斯 (Lx) , 这样生根多且粗壮, 植株生长均衡, 株型较好。

四、试管苗的移栽及管理

当苗基部诱导出3条左右不定根且根长达到2cm时, 将培养瓶薄膜掀开并移到温室条件下炼苗3天, 再将培养苗从培养瓶中取出, 并洗净根上附着的培养基, 移栽于消毒后的基质穴盘中 (1份珍珠岩+1份泥炭土) 。晴天应视天气情况覆盖遮阳网遮荫, 温度控制在20~25℃, 环境湿度≥85%。当苗有新叶长出, 可适当追施浓度较低的复合肥。一段时间后, 就可将苗移栽上盆, 移栽成活率可达90%以上。

五、质量标准及调控技术

高山杜鹃组培苗质量标准为:苗高5cm, 叶6~8片, 主茎粗0.2~0.3cm, 根3~5条, 根长2cm, 叶色深绿, 叶片肥厚, 无病虫害。对叶片发黄、细弱或无根苗, 应予淘汰。

木薯组培快繁技术研究 篇4

关键词：木薯,组织培养,快速繁殖,激素,培养基,影响

木薯(Manihot Esculenta Crantz)又称木番薯、树薯,属大戟科木薯属植物,块根淀粉含量可达25%～35%,享有“淀粉之王”的美称。木薯不仅是一种重要的经济作物,而且也是一种极具开发潜力的能源作物,已列为国家重要的战略资源[1,2,3]。

福建省是我国木薯的一个主要产区,属于粤东—闽西南优势范畴,具有良好的种植基础及发展空间。据统计,全省现有木薯栽培面积约1.67万hm2,主要分布在闽中南、闽西南一带,促进了当地经济的发展和农民的增收。长期以来,木薯一般采用成熟的茎段进行繁殖,不仅繁殖系数低、周期长,而且长期种植相同的品种,导致种性退化,产量下降;此外,受不良环境的影响,冬季种茎贮藏时易受潮腐烂,春季种植时若遇干旱或倒春寒,则会影响种茎的萌发率,大大地影响了木薯优良品种的推广速度。为此,开展木薯组培快繁技术的研究,在短期内生产出大量的优质种苗,旨在为加快木薯优良新品种在福建省的辐射推广服务。

1 材料与方法

1.1 试验材料

供试木薯采自福建省农业科学院甘蔗研究所木薯种质资源圃。

1.2 试验方法

1.2.1 外植体建立。

选择健壮无病虫害的茎段,用自来水冲洗干净,在超净工作台上,切成带2～3节的茎段,在70%酒精中浸泡30 s后,用0.1%HgCl2溶液浸泡消毒10 min,再用无菌水冲洗4～5遍,最后用无菌滤纸吸干表面水分,接种于诱导培养基中。

1.2.2 丛生芽增殖培养。

选取健康诱导苗,以MS为基本培养基,添加BA、NAA、GA3等不同浓度组合进行最佳增殖配方筛选试验,具体的浓度组合及处理设计见表1。

1.2.3 生根培养。

以MS或1/2 MS基本培养基,结合不同NAA浓度组合进行诱导不定根的配方筛选试验,具体的浓度组合及处理设计见表2。

1.2.4 移栽。

假植基质为砂壤土+蘑菇土,二者比例为2∶1。

1.2.5 培养条件。

蔗糖3%,琼脂0.7%,pH值5.8,培养室温度(25±1)℃,光照强度1 500～2 000 lx,光照时间10～12 h/d。

2 结果与分析

2.1 木薯外植体的诱导

将消毒好的外植体切成带1～2个腋芽的茎段,接在MS+BA 4.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L培养基上诱导,培养7 d后,茎段的腋芽开始膨大,10 d后萌发生长,30 d后再转入增殖培养基中培养,即可分化出丛生芽。

2.2 不同浓度的激素组合对木薯丛生芽增殖的影响

由于诱导出来的腋芽比较细少,需要一个增殖壮苗的过程,合理的激素组合有利于芽的增殖及壮苗。从表3可以看出,在木薯丛生芽的增殖培养中,BA与NAA的浓度决定其增殖与愈伤组织的生成情况,在一定范围内随着浓度的增加,增殖率提高,愈伤组织减少;通过添加GA3,在一定程度上可以抑制愈伤组织的生成,但同时也抑制芽的生长。因此,选用BA 2 mg/L+NAA 0.05 mg/L培养基作为丛生芽增殖的最佳配方,既可保证较高的增殖率及芽生长的整齐度,又可避免产生较多的愈伤组织。

2.3 不同培养基对木薯组培苗生根的影响

试管苗的生根诱导效果因培养基、生长素的不同而存在差异。从表4可以看出,在不同组合处理的培养基中诱导,生根效果及长势都很好,生根率达到100%;MS决定着苗的生长势,1/2 MS+NAA 0.2 mg/L培养基配方最有利于木薯试管苗的诱导生根。

2.4 试管苗移栽

待苗长至高5～6 cm、真叶3～4片时,将生根苗搬至炼苗棚,在自然光的条件下培养10～15 d,直至叶片由浅绿转为深绿、细弱茎变粗、根系发达多分叉时,轻轻洗去基部附带的培养基,移栽于砂壤土与蘑菇土比例为2∶1的混合基质中,浇透定根水,适当遮荫,注意通风,保温保湿,每隔7 d喷1次1 000倍多菌灵和链霉素针剂,预防小苗猝倒病,成活率达94%。

3 结论与讨论

试验研究结果表明,在木薯组培的增殖阶段,BA和NAA的浓度影响试管苗的增殖生长及愈伤组织的生成,在一定范围内随着浓度的升高,增殖率提高,愈伤组织减少,通过添加一定浓度的GA3,可有效减少愈伤组织的生成,但其原理和添加量还有待进一步的研究与探讨[4,5,6,7]。木薯耐旱耐瘠、抗性强、淀粉含量高,是一种重要的热带和亚热带经济作物,同时也是一种极具开发前景的能源作物。因此,木薯作物的大力发展,对于维护国家的粮食安全和能源稳定必将起到积极的作用。

参考文献

[1]罗振敏,吴页宝,胡平华,等.木薯高产栽培技术[J].现代园艺,2009(10):45.

[2]卢庆南,陆宇明,莫彬,等.广西木薯产业发展现状与对策[J].农村经济与科技,2008,19(12):66-68.

[3]国务院办公厅.国务院办公厅关于促进我国热带作物产业发展的意见[J].中国热带农业,2010(6):4-5.

[4]姚庆荣,郭运玲,孔华,等.影响木薯芽器官发生及植株再生的因素[J].安徽农业科学,2010(30):16781-16783.

[5]李斌,黄永才,覃剑峰,等.多效唑在木薯组培苗诱导生根的应用[J].广西热带农业,2008(3):4.

[6]王润珍,张燕玲.木薯良种———“南植188”的组培快速繁殖研究[J].广西植物,1991,11(4):324-327.

檫木组培快繁试验 篇5

目前,檫木的繁殖为种子繁殖,严重地制约其发展。本研究对檫木的组织培养繁殖进行了初步的试验,希望能为檫木的高效、快速无性繁殖做点有益的探索。

1 材料和方法

1.1 实验材料

外植体材料来自江西省林业科学院树木园,树龄20 a以上的檫木基部萌条,2008年4~5月采样3次。

1.2 试验方法

1.2.1 材料的处理。

材料的处理和灭菌方法见参考文献[2]。

1.2.2 诱导和增殖培养试验。

檫木的诱导和增殖培养试验见参考文献[2]。

1.2.3 檫木的生根培养试验。

切取增殖苗,苗高3 cm以上的粗壮芽苗,接种在生根培养基上,3个重复,每个重复20瓶,每瓶接种4~6颗芽苗,计算生根率。

培养条件:温度25(±2)℃,光照时间14 h/d,光照强度1 500~2 000 lx。

基本培养基:p H值5.8~6.0,蔗糖30 g/L,卡拉胶,灭菌温度121℃左右,灭菌时间18~20 min。

2 结果与分析

2.1 外植体的诱导

MS为基本培养基,添加6-BA和IBA进行诱导培养试验,每组20瓶,3个重复,每瓶接种一个芽,计算平均诱导率。实验结果见表1,从结果可以看到,6-BA对诱导培养起主导作用,影响比IBA明显,培养基中6-BA浓度为0.5~0.8 mg/L时,诱导率75%左右,效果较好。

2.2 檫木的增殖培养

增殖培养初期,叶片肥厚,茎干膨大,组织疏松等植株生长发育异常现象较重。经过多轮继代培养后,植株生长转为正常状态。

MS为基本培养基,添加6-BA,IBA或NAA分别与6-BA组合,每个对照20瓶,3个重复,计算平均增殖倍数。

培养基6-BA与IBA组合增殖培养试验结果见表2,结果表明,培养基的IBA浓度对增殖的影响不明显,当6-BA浓度过低时,芽苗长势较差。当浓度超过0.5 mg/L,随着浓度的增加,增殖效果不明显,浓度0.5~0.8 mg/L之间效果较好,增殖倍数可达4.2,苗的生长状态也好,比较粗壮。

培养基6-BA与NAA组合增殖培养试验结果见表3,增殖效果不如6-BA与IBA组合,表现为基部愈伤增多,长势弱。

2.3 檫木的生根培养

以MS和1/2 MS为基本培养基,分别加入NAA,IBA,IAA,各自浓度分别为0.1、0.2、0.5、0.8、1.0 mg/L,蛭石+营养液生根培养试验,暗室培养对照实验,都没有获得令人满意的结果,其中,1/2 MS+IAA 0.1~0.2mg/L中生根培养,生根率33%。

3 讨论

3.1 檫木的增殖培养

在檫木的增殖培养中,比较了2种生长素IBA和NAA分别与6-BA组合的应用效果,IBA比NAA更有利于芽苗的增殖和生长,细胞分裂素6-BA起主导作用,在MS+6-BA 0.5 mg/L+IBA 0.1 mg/L中培养,增殖倍数可达到4.0,芽苗长势较好。

在用诱导的不定芽做增殖培养的过程中,出现多数植株叶片肥厚,茎干膨大,组织疏松的生长不正常现象,但是,经过数轮继代培养后,芽苗生长正常,是什么原因造成这种现象目前还不清楚。

3.2 檫木的生根培养

分别用添加IBA、NAA或IAA的MS或1/2 MS培养基进行生根培养实验,蛭石加上述营养液(培养基配方中去除卡拉胶)生根试验,生根的暗培养试验,结果都很不理想,生根率十分低。

有关檫木的组织培养文献报道极少,本文对檫木的组织培养进行了初步的试验,结果难以让人满意,特别是生根培养,生根率极低,还有待做进一步研究。檫木是重要的造林树种,进行组培快繁技术研究十分必要。

参考文献

[1]孙其华.檫木育苗及栽培技术[J].安徽林业,2007(2):26.