猪蓝耳病

猪蓝耳病（通用12篇）

猪蓝耳病 篇1

1 高致病性猪蓝耳病

1.1 病原

高致病性猪蓝耳病 (HP-PRRS, 美洲病毒变异株) 是由猪繁殖与呼吸道综合征病毒变异株引起的一种急性高致病性疫病。仔猪发病率100%, 死亡率50%以上, 母猪流产率可达30%以上, 育肥猪也可发病死亡。与经典猪蓝耳病相比, 高致病性猪蓝耳病的致病力更强, 危害更大。我国2008年新修订的《一、二、三类动物疫病病种名录》将高致病性猪蓝耳病列为一类疫病。

1.2 流行特点

猪是唯一易感的动物, 各种年龄和种类的猪均可感染, 妊娠母猪和仔猪最易感, 并表现该综合症的临床症状。病猪和带毒猪是主要传染源。病毒由病猪鼻分泌物、尿液、精液、粪便排出。该病的传播方式不仅是猪与猪之间的直接接触传染, 还可借助空气传染, 也可通过精液传染, 且传播迅速, 污染严重, 一旦发病很难净化, 发病后经过几个月或数年可能出现重复暴发。由于该病可导致免疫抑制, 常伴有其他病毒、细菌、寄生虫病的混合或继发感染。

1.3 临床症状

高致病性猪蓝耳病比普通猪蓝耳病的临床症状要严重, 死亡率更高, 成年猪也可致病。病猪体温明显升高, 可达40~42.5℃, 眼结膜炎、眼睑水肿, 咳嗽、气喘等呼吸道症状, 部分猪后躯无力、不能站立或共济失调等神经症状。仔猪发病率可达100%, 死亡率可达50%以上, 母猪流产率可达30%以上, 成年猪也可发病死亡。

1.4 剖检病变

剖检可见肺灶性实变, 发病后期多出现并继发感染其他病原引起的病变, 如化脓或纤维素渗出等。

2 普通蓝耳病

2.1 病原

猪蓝耳病1987年首次在美国的北卡罗纳州发生。随后, 加拿大、德国、荷兰、英国、西班牙、瑞士、法国、丹麦等多国家报道发生该病。1996年我国境内发生的猪蓝耳病, 原为美洲病毒, 猪繁殖与呼吸道综合征 (PRRS) 俗称普通猪蓝耳病;2006年夏季在我国南方、华中地区发生的“高热病”, 仍然是美洲型病毒所致, 但病毒结构发生了变化, 因其临床呈急性、热性、高度接触性、流行性等特征, 死亡率30%~70%。2007年4月, 农业部正式将其定名为高致病性猪蓝耳病, 俗称变异株蓝耳病。

2.2 流行特点

普通猪蓝耳病多发生于冬春寒冷季节, 虽具有传染性, 但临床症状不明显, 少数病猪双耳呈特有的蓝灰色变化, 乳头基部呈环状黑色, 肛门周围有轻微紫色环, 部分病例伴有咳嗽、喘气, 商品猪渐进性消瘦;母猪感染该病后, 体表无明显变化, 常发生屡配不孕、流产和产死胎、弱胎、木乃伊胎, 发病仔猪在10~15日龄因呼吸困难而大批死亡。

2.3 剖解病变

普通猪蓝耳病 (普通美洲株) 以肺部病变最为突出。剖解可见猪肺部呈局部或全部的灰白到灰暗或红色病变。活体剖解可见肺心叶、隔叶、或者左右叶下部呈浅淡到灰暗、浅红色的病变区;死亡病例剖检时则表现为整个肺脏呈浅灰色到灰暗色的变化, 并且整个肺脏肿大, 俗称“橡皮肺”, 部分病例可见肾脏两端肿大而呈现明显的肾沟, 俗称“胚胎肾”。

3 诊断

根据流行病学、临床症状和病理变化, 可作出临床疑似诊断。对临床诊断为疑似病例的, 应按规范采集病料送实验室诊断。

4 防治措施

高致病性猪蓝耳病可防不可治, 普通猪蓝耳病可用药物治疗。

4.1 科学免疫

猪场按猪蓝耳病免疫程序免疫;散养户用蓝耳弱毒疫苗注射。

4.2 加强饲养管理

提倡采取“自繁自养”和“全进全出”的养殖模式。

4.3 科学引种

要选择从没有发生过疫情的地方购进仔猪, 同时查看检疫证明, 引进后要隔离饲养15 d, 无异常情况方能混群饲养。

4.4 严格消毒灭源

搞好环境卫生, 及时清扫消毒。

4.5 加强检疫和监测

发现疫情, 果断处置, 科学防控, 做到“早、快、严、小”。

4.6 平时饲料中添加电解多维及抗菌药物

选用多维、氟苯尼考、黄芪西林、高热混感康、黄芪蓝圆康等, 预防继发感染和提高抵抗力。

5 体会

猪蓝耳病可防不可怕, 坚持预防为主, 依法防制, 科学防治。搞好基础免疫, 全进全出, 做好检疫、监测和消毒工作。普通蓝耳病的治疗以抗病毒的中成药为主, 辅以抗生素治疗。

猪蓝耳病 篇2

本课题自组中药配方对猪蓝耳病进行预防试验,通过临床观察、血液检测和重复试验.试验结果显示,在试验期内试验组较对照组生长速度快,营养状态好、无发病,而对照组有发病和死亡.自组中药配方对猪蓝耳病和其它疾病具有良好的预防效果,为猪疾病的`预防提供了线索和参考.

作 者：黄德利 杨水红 贺水建 作者单位：黄德利(大足县智风镇畜牧兽医站,402361)

杨水红,贺水建(西南大学荣昌校区,重庆,400715)

猪蓝耳病的症状及防治 篇3

1 病原

猪蓝耳病病毒为单股正链RNA病毒，属套式病毒目，动脉炎病毒科，动脉炎病毒属。不凝集哺乳动物或禽类红细胞，有严格的宿主专一性，对巨噬细胞有专嗜性。病毒的增殖具有抗体依赖性增强作用，好在中和抗体水平存在的情况下，在细胞上的复制能力反而得到增强。

2 流行病学特征

该病是一种高度接触性传染病，传播速度快。在自然流行中，该病仅见于猪，不同年龄和品种的猪均能被感染。猪龄不同，易感程度也不同，母猪和仔猪较易感，一旦发病病情严重。病猪和带毒猪是主要的传染源常见的传播途径是病毒的空气传播和带毒猪的流动运输传播。病毒经呼吸道感染，当易感猪与病猪直接接触或接触到病猪污染过的运输工具、饲养工具等极易导致该病的发生和流行。最主要的传播途径是猪与猪之间的相互传播，包括母仔垂直和同一批猪群之间的平行传播。蓝耳病病毒在通常的情况下对环境因素的抵抗力较弱，但在特定的温度、湿度和PH值条件下，病毒可长期保持感染性。

3 临床症状

猪群发病快，体温明显升高，可达41℃以上精神沉郁，食欲下降或废绝，耳部发绀，腹下和四肢末梢等处皮肤呈紫红色斑块或丘疹样；便秘与腹泻交替多呈咳嗽、气喘等呼吸道症状；部分猪出现抽搐、后躯无力，关节肿大、跛行、不能站立或共济失调等神经症状。

3.1 繁殖母猪 母猪感染该病后出现食欲不振、体温高（40-41℃）、精神沉郁、呼吸急促，有的会出现呕吐和发生结膜炎症状。少数母猪的耳朵、腹部、乳头、尾部和腿发绀。妊娠后期发生流产、早产、死胎、弱仔和产木乃伊胎。每胎产死胎的数量差异大，有的无死胎，有的死亡率达80%-100%。少数母猪皮下组织出现一过性血斑，有的母猪出现麻痹性神经症状。

3.2 公猪 临床表现为咳嗽、打喷嚏、精神抑郁、食欲不振、嗜睡、呼吸急促。性欲强，但是精子成活率低且量少。少数病猪的耳朵变色，继发膀胱炎和白细胞数减少。

3.3 仔猪 仔猪感染后的症状明显，死亡率高达80%，临床症状与日龄有关。早产的仔猪出生后不久就会死亡。新生仔猪呼吸困难，呈腹式呼吸、肌肉震颤、共济失调、打喷嚏、精神抑郁、食欲不振、嗜睡，耳朵和躯体末端皮肤发绀。哺乳仔猪发病率为11%，最高能达54%，断乳前死亡率可增加到30%-50%，甚至可达到100%。存活下来的仔猪体质衰弱、腹泻，容易再次感染。

3.4 育肥猪 感染初期出现轻微的呼吸道症状，在之后病情加重，通常有高热、腹泻、肺炎、眼肿胀、结膜炎、血小板减少、血便等症状。

4 病理变化

剖检可见脾脏边缘或表面出现梗死灶，显微镜下见出血性梗死；肾脏呈土黄色，表面可见针尖至小米粒大出血点斑，皮下、扁桃体、心脏、膀胱、肝脏和肠道均可见出血点和出血斑。

5 防治措施

5.1 杜绝境外传入 严禁从有猪蓝耳病的国家和地区进口种猪、猪的精液与胚胎和血液制品。

5.2 控制引种

5.3 建立健全各项防疫制度，做好消毒、驱虫等工作

5.3.1 科學免疫

5.3.2 严格消毒防止病原微生物的传播 目前疫病的高发季节，要严格消毒。增加消毒次数和消毒药的浓度。

5.3.3 定期驱虫减少疾病感染的机率

5.4 加强场内饲养与管理工作 （1）养猪场要采用“自繁自养、全进全出”的养殖模式；（2）各舍人员要坚守岗位，不得窜舍；（3）加强猪舍保温工作；（4）保持猪舍清洁；（5）保证猪只饲养水平。

6 药物治疗

此病目前尚无特效药物进行治疗，主要采取综合性的对症疗法，控制继发感染。以下是几种简单的治疗方法：

6.1 发病母猪 用0.1%高锰酸钾水溶液500～1 000 mL冲洗子宫，再用蒸馏水500 mL冲洗后，向子宫内注入青霉素800万IU，来清理发病母猪的产道。也可使用脑垂体后叶素40 IU皮下注射，将子宫内的带菌及带毒物质排出。

6.2 发病仔猪 控制仔猪呼吸道疾病，可在断奶仔猪免疫蓝耳疫苗的同时，在饲料中按100mg/kg添加金泰妙或按80 mg/kg添加冀中无敌，饲喂1周，可有效控制猪支原体肺炎和传染性胸膜肺炎的继发感染。

6.3 有高烧症状病猪 每2 d注射1次免疫核糖核酸，连用4～5 d，同时在饮水中加入5%的葡萄糖和500 mg/kg的VC，连用7～10 d。

6.4 中药治疗 双花30 g、大青叶20 g、板蓝根20 g、薄荷10 g、黄芩30 g、防风15 g，共煎煮，灌服。

猪蓝耳病的防治 篇4

本病曾称为“猪神秘病”、“新猪病”、“猪流行性流产和呼吸综合症”、“猪不孕与呼吸综合症”、“蓝耳病”、“猪瘟疫”等, 我国将其列为二类传染病。

1 病 原

猪繁殖和呼吸障碍综合征病毒为单股正链RNA病毒, 属套式病毒目, 动脉炎病毒科, 动脉炎病毒属。病毒为圆形, 直径为50～60 nm, 含有20～35 nm的核衣壳, 在氯化铯中浮密度为1.19 g/cm3;有囊膜, 对乙醚、氯仿敏感;病毒基因组为单股正股RNA。不凝集鸡、哺乳动物和人的O型红细胞。有严格的宿主专一性, 对巨噬细胞有专嗜性。病毒的增殖具有抗体依赖性增强作用。该病毒在外界环境中的抵抗力相对较弱, 对高温敏感。在深冻组织中病毒可存活数年, 但在4 ℃仅存活1个月, 37 ℃存活18 h, 56 ℃存活15 min以内。在pH6.0时稳定, 在pH5.0以下和pH7.0以上均易失活, 将肉尸保存于4 ℃18 h仍能发现其中有活病毒。

2 流行病学

本病是一种高度接触性传染病, 呈地方流行性。在正常情况下不会单一发生, 大部分是外界因素和内在因素所致。多因各种各样的应激反应引起, 比如饲料突然更换, 气候变化, 室内空气影响, 再一个是病原微生物的侵袭, 一般多继发于猪流感, 猪瘟等传染病。PRRSV只感染猪, 各种品种、不同年龄和用途的猪均可感染, 但以妊娠母猪和1月龄以内的仔猪最易感。患病猪和带毒猪是本病的重要传染源。主要传播途径是接触感染、空气传播和精液传播, 也可通过胎盘垂直传播。易感猪可经口、鼻腔、肌肉、腹腔、静脉及子宫内接种等多种途径而感染病毒, 猪感染病毒后2～14周均可通过接触将病毒传播给其他易感猪。从病猪的鼻腔、粪便及尿中均可检测到病毒。易感猪与带毒猪直接接触或与污染有PRRSV的运输工具、器械接触均可受到感染。感染猪的流动也是本病的重要传播方式。

持续性感染是PRRS流行病学的重要特征, PRRSV可在感染猪体内存在很长时间。

3 临床症状

本病的潜伏期差异较大, 引入感染后易感猪群发生PRRS的潜伏期, 最短为3 d, 最长为37 d。本病的临诊症状变化很大, 且受病毒株、免疫状态及饲养管理因素和环境条件的影响。低毒株可引起猪群无临诊症状的流行, 而强毒株能够引起严重的临诊疾病, 临诊上可分为急性型、慢性型、亚临诊型等。

(1) 急性型:

发病母猪主要表现为精神沉郁、食欲减少或废绝、发热, 出现不同程度的呼吸困难, 妊娠后期 (105～107 d) , 母猪发生流产、早产、死胎、木乃伊胎、弱仔。母猪流产率可达50%～70%, 死产率可达35%以上, 木乃伊可达25%, 部分新生仔猪表现呼吸困难, 运动失调及轻瘫等症状, 产后1周内死亡率明显增高 (40%～80%) 。少数母猪表现为产后无乳、胎衣停滞及阴道分泌物增多。

1月龄仔猪表现出典型的呼吸道症状, 呼吸困难, 有时呈腹式呼吸, 食欲减退或废绝, 体温升高到40 ℃以上, 腹泻。被毛粗乱, 共济失调, 渐进性消瘦, 眼睑水肿。少部分仔猪可见耳部、体表皮肤发紫, 断奶前仔猪死亡率可达80%～100%, 断奶后仔猪的增重降低, 日增重可下降50%～75%, 死亡率升高 (10%～25%) 。

生长猪和育肥猪表现出轻度的临诊症状, 有不同程序的呼吸系统症状, 可表现出咳嗽及双耳背面、边缘、腹部及尾部皮肤出现深紫色。感染猪易发生继发感染, 并出现相应症状。

种公猪的发病率较低, 主要表现为一般性的临诊症状, 但公猪的精液品质下降, 精子出现畸形, 精液可带毒。

(2) 慢性型:

这是目前在规模化猪场PRRS表现的主要形式。主要表现为猪群的生产性能下降, 生长缓慢, 母猪群的繁殖性能下降, 猪群免疫功能下降, 易继发感染其他细菌性和病毒性疾病。猪群的呼吸道疾病 (如支原体感染、传染性胸膜肺炎、链球菌病、附红细胞体病) 发病率上升。

(3) 亚临诊型:

感染猪不发病, 表现为PRRSV的持续性感染, 猪群的血清学抗体阳性, 阳性率一般在10%～88%。

4 病理变化

(1) 大体病变:

无继发感染的病例除有淋巴结轻度或中度水肿外, 肉眼变化不明显, 呼吸道的病理变化转为严重的间质型肺炎, 有时有卡他性肺炎, 若有继发感染, 则可出现相应的病理变化, 如心包炎、胸膜炎、腹膜炎及脑膜炎等。

(2) 病理组织学:

PRRSV感染引起的繁殖障碍所产仔猪和胎儿很少有特征性病变, PRRS致死的胎儿病变是子宫内无菌性自溶的结果, 没出现特异性;流产的胎儿血管周围出现以巨噬细胞和淋巴细胞浸润为特征的动脉炎、心肌炎和脑炎。脐带发生出血性扩张和坏死性动脉炎。

生长猪较成年猪更常见特征性组织性病理变化, 肺的组织学病变具有普遍性, 有诊断意义。单纯的PRRS感染引起的肺炎以间质性肺炎伴随正常的呼吸道上皮为特征。其特点为肺泡间隔增厚, 单核细胞浸润及Ⅱ型上皮细胞增生, 肺泡腔内有坏死细胞碎片。

鼻甲部黏膜的病变是PRRS感染后期的特征, 其上皮细胞纤毛脱落, 上皮内空泡形成和黏膜下层淋巴细胞、巨噬细胞和浆细胞浸润。淋巴结、胸腺和脾脏的组织病理学变化, 以发生肥大和增生、中心坏死、淋巴窦内有多核巨细胞浸润为特征, 病早期可见脾脏白髓、扁桃体坏死, 后期脾脏和淋巴结肿大;另外PRRS感染引起的血管、神经系统、生殖系统的病变也主要表现为淋巴、巨噬细胞、浆细胞的增生和浸润。

5 鉴别诊断

本病应与其它繁殖障碍和呼吸道疾病进行鉴别诊断, 如应与伪狂犬病、猪圆环病毒病、猪细小病毒病、猪瘟、猪流行性乙型脑炎、猪呼吸道冠状病毒病、猪脑心肌炎、猪血凝性脊髓炎以及其他细菌性疾病进行区分。

6 防 治

(1) 坚持自繁自养的原则, 建立稳定的种猪群, 不轻易引种。如必须引种, 首先要搞清所引猪场的疫情, 此外, 还应进行血清学检测, 阴性猪方引入, 坚决禁止引入阳性带毒猪。引入后必须建立适当的隔离区, 做好监测工作, 一般需隔离检疫4～5周, 健康者方可混群饲养。

(2) 规模化猪场要彻底实现全进全出, 至少要做到产房和保育两个阶段的全进全出。

(3) 建立健全规模化猪场的生物安全体系, 定期对猪舍和环境进行消毒, 保持猪舍、饲养管理用具及环境的清洁卫生, 一方面可防止外面疫病的传, 另一方面通过严格的卫生消毒措施把猪场内的病原微生物的污染降低到最低限, 可以最大限度地控制和降低PRRSV感染猪群的发生率和继发感染机会。

(4) 做好猪群饲养管理。在猪繁殖与呼吸综合征病毒感染猪场, 应做好各阶段猪群的饲养管理, 用好料, 保证猪群的营养水平, 以提高猪群对其他病原微生物的抵抗力, 从而降低继发感染的发生率和由此造成的损失。

(5) 做好疫病的免疫接种, 控制好其他疫病, 特别是猪瘟、猪伪狂犬和猪气喘病的控制。在猪繁殖-呼吸综合征病毒感染猪场, 可以考虑给母猪接种灭活疫苗。并尽最大努力把猪瘟控制好, 否则会造成猪群的高死亡率;同时应竭力推行猪气喘病疫苗的免疫接种, 以减轻猪肺炎支原体对肺脏的侵害, 从而提高猪群肺脏对呼吸道病原体感染的抵抗力。

(6) 定期对猪群中猪繁殖与呼吸综合征病毒的感染状况进行监测, 以了解该病在猪场的活动状况。一般而言, 每季度监测一次, 对各个阶段的猪群进行采样进行抗体监测, 如果4次监测抗体阳性率没有显著变化, 则表明该病在猪场是稳定的, 相反, 如果在某一季度抗体阳性率有所升高, 说明猪场在管理与卫生消毒方面存在问题。应加以改正。

(7) 对发病猪场要严密封锁;对发病猪场周围的猪场也要采取一定的措施, 避免疾病扩散, 对流产的胎衣、死胎及死猪都做好无害处理, 产房彻底消毒;隔离病猪, 对症治疗, 改善饲喂条件等。

7 药物防治

本病重在预防, 应控制好应激及其他疾病的感染。现将有效的预防程序推荐如下:

(1) 公猪每月或每季度预防1次:每1 t饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连用7 d。

(2) 母猪妊娠70～80 d, 产前7 d到产后7 d:每1 t饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连续饲喂。

(3) 母猪断奶当天到第7 d:每1 t饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连续饲喂。

(4) 后备母猪配种前7～15 d:每1 t饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连续饲喂。

(5) 仔猪断奶前3 d到断奶后2周:每吨饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连续饲喂。

(6) 第18、22周龄分别使用1周:每1 t饲料添加蓝圆康泰500 g+支原必净500 g, 连续饲喂。

(7) 每周两次消毒:速洁1∶500倍稀释带猪喷雾。每月两次熏蒸:速洁1∶25倍稀释带猪熏蒸, 每瓶 (500 mL) 可熏蒸1 250 m3。

对于已发病猪, 尽可能不注射药物因注射时病猪的惊吓引起的应激可加重病情发展, 所以治疗时多采用内服药物, 可以采用中西药结合的方法进行治疗, 方法如下。

治疗方案1:生石膏50 g, 生地黄18 g, 牡丹皮10 g, 赤芍10 g, 玄参15 g, 黄芩15 g, 连翘10 g, 银花藤20 g, 板蓝根15 g;如有高热加水牛角30 g, 麦冬15 g, 丹参10 g, 加水2 000 mL, 浸泡30 min, 煎沸10 min后, 自然放凉。大猪每次100 mL, 3～6次/d, 小猪每次20～50 mL, 3次/d, 患猪可保基本存活。

注意事项:当病猪退烧并恢复食欲后, 不可喂食, 每日以少量清水掺以中药或西药饮之。否则, 病情会反复持续发作, 并不断加重。空腹使之饥饿, 十余天后, 肥猪渐渐变瘦, 病情随之日渐缓解, 或者康复。该法经试验表明, 效果良好。

治疗方案2:猪干扰素 (IFN) , 每40 kg体重用量1 mL肌注, 1次/d, 连用3 d, 重症加量。全群强力霉素与黄芪多康拌料, 连用7 d。

特福 (猪用转移因子) , 用法用量同干扰素, 用注射用水分别稀释后, 混合在一起注射。

圆环菌毒杀 (复方甲磺酸培氟杀星注射液) 0.3 mL/kg肌注, 连用3～5 d。

猪蓝耳病 篇5

春末夏初是高致病性蓝耳病疫病多发季节，特别是在饲养环境恶劣，猪舍通风降温不良，炎热潮湿，饲养密度过大的散养户和小型猪场更易多发。流行病学

高致病性蓝耳病发病急，传播快，发病率高、病程长，死亡率也高。夏秋季多发，主要侵害母猪和仔猪，肥育猪也会发病，主要经呼吸道感染，短期内便可波及全群或邻近猪群。临床症状

主要表现为体温明显升高，可达41℃以上，便秘与腹泻交替，眼结膜炎，眼睑水肿，耳朵发红，呈咳嗽，气喘等呼吸道症状。部分猪出现抽搐、后躯无力、不能站立或共济失调等神经症状。仔猪发病率可达100%，死亡率可达50%以上，母猪流产率可达30%以上，成年猪也可发病死亡。病理变化

可见肺有弥漫性间质性肺炎；脾脏边缘或表面出现梗死灶，显微镜下见出血性梗死；肾脏呈土黄色，表面可见针尖至小米粒大出血点斑，皮下、扁桃体、心脏、膀胱、肝脏和肠道均可见出血点和出血斑。部分病例可见胃肠道出血、溃疡、坏死。诊断

根据流行病学、临床症状、病理变化可做出初步诊断，但是确诊需做实验室诊断，做高致病性猪蓝耳病病毒分离与鉴定为阳性，做高致病性猪蓝耳病病毒反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)检测为阳性则可确诊。预防

目前尚无特效药物，因此，控制该病，防重于治，并需采取综合防治措施和对症疗法。（1）做好猪场免疫预防。制定严格免疫程序，疫苗接种并不是越多越好，一定要根据当地的疫情情况，制定适宜免疫程序，严格按程序接种，购买正规厂家的疫苗，尤其要做好高致病性蓝耳病、猪瘟、气喘病、伪狂犬等病的预防工作。（2）定期进行免疫抗体监测，抗体水平不合格时，应尽快实施一次加强免疫。（3）免疫接种时可配合使用免疫增强剂或在接种疫苗前3d后4d添加抗应激药物，增强免疫效果，防止疫苗免疫失败。同时要求做到“一猪一针头”，防止交叉感染。（4）当发生动物疫情时，应对受威胁的猪进行高致病性猪蓝耳病紧急免疫。

（5）坚持“全进

探讨猪蓝耳病特点及防控技术 篇6

关键词：生猪蓝耳病；疫情介绍；病理分析；防治措施

1 疫情介绍

1.1 发病情况

某农村共发现猪蓝耳病6起。4起发生在农村散养户，2起发生在小型饲养猪场，染疫病畜17头，其中，母猪11头渊原种母猪3头尧二杂母猪8头冤，哺乳仔猪6头。该病多发生在5要8月温度较高的季节。实地调查发现，发病的猪舍大多存在通风降温不良尧饲养密度过大尧空气中氨气浓度较高的问题。据畜主介绍，这些染疫病畜都未注射过PRRS免疫疫苗，基本属于粗放的饲养管理，大部分采用潲水养猪，染疫病畜普遍营养不良。

1.2 临床症状

据畜主及临场诊治兽医介绍，17头染疫病畜都是突然发病，同圈猪也在3耀5d内相继感染，被感染的猪全身潮红，精神沉郁，食欲减退，体温升高至40.5耀42.0益，普遍卧地不起，多数耳尖尧耳边缘呈现蓝紫色，部分病猪外阴尧尾部，腹下及口鼻等部位也发生短暂性的皮肤紫，但很快消失。发病母猪中有的出现气喘尧流鼻涕尧咳嗽等呼吸困难症状日有的出现便秘尧腹泻等消化系统紊乱症状日哺乳仔猪则多为眼结膜炎尧眼睑水肿日四肢外展呈野八字冶脚，体质衰弱尧张口呼吸，呈现哮喘样呼吸障碍。经综合诊断，确定急性型ll头，慢性型5头，亚临诊型l头。

1.3 防控结果

由于之前处理过此疫病，对猪蓝耳病的防治已积累了一定经验，因此这几起猪蓝耳病的防控结果比较理想，在使用白细胞干扰素尧黄芪多糖，氟贝尼考连续治疗7d后，17头病畜中10头病状消失，恢复正常，7头死亡。其中5头母猪发生流产，4头出现死胎尧木乃伊胎现象。且隔离及时，未出现宰杀尧食用尧出售和转运病畜现象，对7头死猪进行也进行了无害化处理，从而有效防止了疫情扩散和疫源泛滥现象的发生。

2 病理分析

2.1 血清检测

采集病猪的血清样5份，用猪蓝耳病乳胶凝集诊断试剂盒进行检测。该试剂盒由华中农业大学畜牧兽医学院病毒室研制，武汉科前动物生物制品有限责任公司出品。检测结果表明院4例出现肉眼可见的凝集现象渊白色小点冤，血清抗体阳性率80%，1例无凝集反应渊混浊冤，判断为阴性。

2.2 尸体剖检

对送检的2例病死不久的猪渊体重50耀70kg冤进行剖检，结果发现病猪尸体全身淋巴结出血，切面呈大理石样，胃底部黏膜尧脑膜尧心肌和心内外膜等处都有大量出血现象，其肾脏质脆，肝尧脾脏和肺都出现淤血肿大，肺小叶间质明显增宽，切面流出许多泡沫样液体，部分区域发生实变。

2.3 病理组织学检查

取病猪的肾脏尧脾脏制成冰冻切片，通过荧光显微镜观察，可见特异性亮绿色荧光。心脏心肌纤维间有少量的淋巴细胞尧巨噬细胞浸润，部分心肌细胞发生颗粒变性，淋巴组织灶状坏死，白髓区尤为明显，肾小管腔变得模糊，肾小管之间见少量炎性细胞浸润，成纤维细胞大量增生。脑血管周围有多量淋巴细胞及巨噬细胞浸润形成野袖套现象冶，有的神经元发生变性尧坏死，周围有胶质细胞聚集形成野卫星现象冶。胶质细胞大量增生。

2.4 细菌分离培养

从病猪肝脏中分离细菌，以普通琼脂培养基尧巧克力琼脂培养基，于37益恒温箱中培养12耀24h后，结果发现了单股正链RNA病毒，分子量约1.5伊106道尔顿，病毒为圆形，直径为50耀60nm，含有20耀35nm的核衣壳，在氯化铯中浮密度为1.19g/cm³日有囊膜，对乙醚尧氯仿敏感，在37益温度下存活了18h，在56益温度下存活时间少于15min。

3 防治措施

在养殖过程中要有效防治猪蓝耳病，必须采取以下一些强化措施。

3.1 把好引种关，做好预防接种工作

防控猪蓝耳病与其他猪瘟一样，要坚持野预防为主冶的方针。购买种猪前应该查看检疫证明日养猪场最好是自繁自养，不轻易引种，尤其不在夏季引种。无论是母猪尧断奶仔猪，还是育肥猪，尤其是妊娠母猪，都要严格按农业部发布的叶猪病免疫推荐方案曳进行预防猪繁殖与呼吸综合症接种。发生动物疫情时，对受威胁的猪还要按仔猪3头份/头尧保育猪及肥猪5头份/头尧种猪10头份/头的剂量进行超剂量免疫接种。目前预防猪蓝耳病的疫苗可分为PRRS灭活疫苗和PRRS弱毒疫苗。PRRS弱毒疫苗的返祖毒力增强，因此，应慎重使用活疫苗。要选择国家批准生产或已注册的疫苗，实践中发现广东大华农动物保健品公司生产的NVDC要JXAI株灭活疫苗和JX—A1-R株活疫苗安全有效，值得推广。在做好高致病性蓝耳病尧猪瘟尧气喘病尧伪狂犬等病的预防接种的同时，还要接种预防传染性胸膜肺炎尧气喘病等疫苗，以防制继发感染猪蓝耳病。

3.2 积极改善生猪喂养环境

要积极改善生猪喂养环境，应该注意以下几个方面内容院一是对圈舍尧场地尧排污设施要按规定严格消毒。消毒剂要避免选择毒性大尧刺激性大的品种。应该根据消毒剂的发展变化，选择毒性小尧刺激性小尧消毒效果好的消毒剂。生产中常用的消毒剂有复方戊二醛溶液，可将其稀释后对环境尧器具和空气消毒曰二是降低猪舍的湿度，保持舍内干燥舒适，湿度过大不但会影响饲养猪只生长，而且容易诱发猪瘟日三是保持猪舍温度在猪只生长的适宜范围内。尤其是夏天要注意做好防暑降温工作，因为中暑是诱发猪蓝耳病最突出的环境因素。冬天应注意猪舍保温，避免猪舍温度过低。保持通风良好是降低夏季降低猪舍温度的重要方法。在夏季还可以经常对猪群进行冲水洗浴，降低猪的体表温度日四是要合理控制饲养密度，减少各种应激反应，猪尧鸡尧鸭等动物不能混养日五是定期做好猪场杀虫灭鼠工作，防止体内外寄生虫吸收猪体营养，传播疾病，可选用伊维菌素尧芬苯达唑尧莫西菌素等驱虫药进行定期驱虫。

3.3 科学饲养

营养充足是增强抗病能力的重要保证，要积极推进规范化尧标准化饲养方式，禁喂霉变和劣质饲料，以防慢性中毒，免疫力下降。要多给清洁饮水，最好是在饲料中添加氟贝尼考粉剂，同时加入电解多维尧葡萄糖尧食盐等，搭配合理的营养，增强机体的抗病能力。

3.4 发挥抗病毒药物功效一是常喂保健药物

分娩前后1周对母猪给予500mg/kg氟苯尼考+150mg/kg支原净或300mg/kg金霉素，切断母猪到仔猪的垂直感染日对保育仔猪和小猪群，在断乳或保育出栏前后1耀2周，可在饲料中添加500mg/kg氟苯尼考+利高霉素，以增强仔猪的抵抗力日对生长育肥猪，可选用400mg/kg氟苯尼考和1000mg/kg泰乐菌素交替使用，并添加黄芪多糖尧盐酸左旋咪唑可溶性粉等抗应激药物和免疫增强剂。二是对患病猪可用黄芪多糖尧白细胞干扰素尧氟贝尼考给予治疗，并在治疗时注意使用长效抗生素，对病程长的患畜给予补给糖盐水日也可用复方花青素+牛磺酸+阿司匹林/拌饲料进行病毒复制控制和病毒净化治疗，尽量不要给猪群注射针剂，防止应激导致心力衰竭。

3.5 落实生物安全措施

猪蓝耳病病毒抗体检测 篇7

1 原理及用途

微孔板上包被的猪蓝耳病病毒抗原, 可与待测样品中的特异性抗体反应, 形成抗原抗体复合物被吸附到固相上, 再加入酶标记的抗猪抗体, 则形成固相猪蓝耳病病毒抗原-猪蓝耳病病毒抗体-HRP免疫复合物, 洗涤后, 如待测样品中含有猪蓝耳病病毒抗体, 加入显色剂即显色, 为阳性, 反之为阴性。

2 试剂盒组成

包括:包被反应板 (96孔) 2块;酶标记结合物、阳性对照、阴性对照、显色液A、显色液B、终止液、浓缩洗涤液 (20倍) 、样品稀释液各1瓶;说明书1份;封板膜6张。

3 实验所需器材

(1) 精确地单道微量移液器和多道微量移液器, 适用于吸取10~1000μL的液体。操作步骤中所要求的试剂移取体积要求移液器的误差不超过±5%。

(2) 一次性移液器吸头, 2m L离心管。

(3) 配制洗涤液用的500m L量筒。

(4) 96孔酶标仪, 带有450nm单波长的滤光片。

(5) 37℃的恒温箱。

(6) 滤纸、移液槽、振荡器、密封反应板的封膜、可盛放液体和消毒液的容器。

(7) 防护物品:防护服、口罩、手套等。

4 实验步骤

4.1 配洗液

将50m L洗液 (20×) 加纯化水稀释至1000m L, 充分摇匀后备用。

4.2 编号

每次试验应在包被板上设空白对照孔1孔, 阴、阳对照孔各两孔, 其余为待检样品孔。

4.3 加样品稀释

用移液器在包被板的待检样品孔中加入样品稀释液, 每孔100μL, 空白孔、阴性、阳性对照孔不加样品稀释液。

4.4 加样

分别于各待检样品孔中加入待检样品10μL, 阴性、阳性对照孔分别加入阴性、阳样血清100μL, 空白孔不加样。注意:加样的同时记录好各样品和阴阳对照及空白孔的次序或位置。剩余的板条放入密封袋中保存, 以备用。

4.5 温育 (一)

样品加完后, 充分混匀, 用封板膜覆盖板条, 以免孔内液体蒸发或水珠滴入, 然后置于37±2℃的恒温箱中孵育30min。

4.6 洗板 (一)

(1) 手洗:从恒温箱中取出, 甩净孔中液体, 用稀释好的洗涤液加满每孔 (约300μL) , 停留15~30s后甩净、在吸水纸上拍干反复洗板5次。

(2) 洗板机洗:从恒温箱中取出, 甩净孔中液体, 用稀释好的洗涤液注满反应孔 (约300μL) , 确保每次吸净无残留, 停留15~30s后甩净、在吸水纸上拍干反复洗板5次。

4.7 加酶标记结合物

除空白对照外, 其余各孔垂直滴加酶标记物100μL, 混匀。

4.8 温育 (二)

封膜, 置于37±2℃的恒温箱中孵育30min。

4.9 洗板 (二)

方法同洗板 (一) 。

4.1 0 显色

每孔 (含空白孔) 垂直滴加显色液A、B各50μL (约1滴) , 混匀, 置于37℃的恒温箱避光显色10min。

4.1 1 终止和测定

每孔 (含空白孔) 立即加入终止液50μL (约1滴) , 混合后以空白孔调零, 用酶标仪450nm波长测定吸光值。

5 结果判定

5.1 在酶标仪上, 以空白孔调零, 450nm波长测定吸光值。

实验成立条件:阴性对照值孔OD≤0.25, 阳性对照值孔OD≥0.7, 空白对照值孔OD≤0.15, 否则实验不成立, 重做。

5.2 判定标准

(1) 试剂盒cutoff值=0.1+阴性对照平均值 (若阴性对照OD平均值<0.05, 则按实际值计算, 若阴性对照OD平均值≥0.05, 则按0.05计算)

(2) 若待检样品OD<0.9倍cutoff值, 判为阴性。

(3) 若待检样品OD>1.1倍cutoff值, 判为阳性。

(4) 若待检样品OD处于0.9倍cutoff值与1.1倍cutoff值之间, 判为可疑。

6 注意事项

(1) 将试剂盒从2~8℃冰箱中取出放置室温平衡30min左右。

(2) 猪血清样品必须无菌, 新鲜、清亮、透明、无溶血、无腐败, 不能反复冻融。

(3) 严格按照说明书, 在有效期内使用。

(4) 不同批号的试剂不得混用。

(5) 待检血清染菌、严重溶血或高血脂可能引起错误结果, 应重新采样。

(6) 避免强光照到显色液, 或接触到氧化剂。盛放显色液的容器要用干净的玻璃或塑料器皿。

(7) 所有试剂一律放置2~8℃保存。用前恢复至室温 (约30min) , 用完后返回到2~8℃冰箱, 以便下次使用。

(8) 没有用完的微量反应板应贮存于自封带中, 于2~8℃冰箱中存放。

(9) 严格按照操作程序, 仔细地吸液、计时、充分洗涤, 对于获得精确和准确的结果是非常必要的。每个样品使用不同的吸头。洗板过程中, 甩水以及在吸水材料上扣板要轻, 否则易将板条甩掉。吸干后, 应尽快加入下一个试剂, 避免孔壁变干, 影响实验效果。

(10) 底物为强酸, 加样时一定要小心。

(11) 终止液加完后, 要立即进行酶标仪测定, 不要间隔时间过长, 以免影响实验效果。

(12) 任何样品都应作为具有传染性样品对待, 用过的材料要进行无害化处理。

猪蓝耳病病毒作用机制 篇8

1996年世界动物卫生组织 (OIE) 将猪蓝耳病列为法定报告疫病, 国内将其列为二类动物疫病。导致猪繁殖与呼吸综合征的病毒毒株变异快, 致病率高, 病猪死亡可达100%。

1 猪繁殖与呼吸综合征病毒

1.1 PRRSV病原学特点

PRRSV、LDV、SHFV、EAV等均属动脉炎病毒科动脉炎病毒属。PRRSV是有囊膜的单股正链RNA病毒, 病毒粒子直径50~70 nm, 核衣壳35 nm, 核衣壳呈立体对称的二十面体。

PRRSV在猪体内对单核巨噬细胞系统有亲嗜性, 特别对猪肺泡巨噬细胞 (PAM) 有亲嗜性。病毒能够在Marc-145、MA-104和CL2621等多种传代细胞系上生长, 但产生的CPE不明显, 高致病性蓝耳病毒株在Marc-145细胞中生长1~3代即可产生明显的CPE。

1.2 PRRSV血清型

PRRSV具有两个血清型, 即美洲型 (VR-2332株) 和欧洲型 (LV株) 。PRRSV基因组长约15 kb, 最新发现PRRSV有9个开放阅读框, 分别为ORF1a、ORF1b、ORF2a、ORF2b、ORF3-7, 不同的ORF之间存在重叠现象。

PRRSV有六个结构蛋白, 其中以N蛋白和ORF7编码的M蛋白免疫原性最好, N蛋白有六个抗原决定簇, 能够促进机体产生特异性抗体。M蛋白至少有五个抗原决定簇, 是所有保守毒株的共同决定簇。非结构蛋白Nsp2是高致病性蓝耳病暴发的最主要的抗原蛋白。

2 抗体依赖增强 (ADE) 作用

2.1 抗体依赖增强作用的特点病毒与抗体反应后, 复制或感染能力出现显著增强的现象称为抗体依赖增强作用。

研究发现在培养PRRSV巨噬细胞培养液中加入少量抗体处理后, 可显著提高病毒的复制量和速率, 如马传染性贫血病毒 (EAV) 、登革热病毒 (DV) 和水貂阿留申病毒 (ADVM) 等均存在此类现象。

蓝耳病特有的抗体依赖增强现象发现较晚, 被广泛认为是影响疫苗效果的关键因素。据报道, 不同血清型或同一血清型内的不同毒株ADE现象存在明显差异, 对17株来自北美的毒株进行培养分析发现:17株病毒在巨噬细胞中的增殖情况差异显著, 结果表明不同毒株在用中和滴度的抗体和亚中和滴度的抗体处理后, 病毒的增殖数量、速度差异极显著 (P<0.01) 。有试验发现衣壳蛋白和囊膜蛋白与ADE呈正相关, 囊膜蛋白 (GP5) 既能诱导机体产生中和抗体, 也是导致ADE现象的主要原因。

2.2 抗体依赖增强作用的机理因病毒的结构及感染的宿主细胞有差异, 故ADE的发生也存在差异。

抗体依赖增强作用最早由Halstead S B等提出, 根据反应过程不同主要分为四种:通过抗原抗体复合物结合激活C1q通道, 增加C3d蛋白与病毒的结合能力;增强C1q与细胞表面的受体结合能力, 增加病毒对细胞的亲和力;通过FcγR介导抑制抗病毒蛋白的合成;抗体与CD4结合后, 增加病毒对靶细胞的感染力。

PRRSV的抗体依赖增强作用主要是通过 (FcγR) 介导发生。PRRSV的ADE发生被认为主要是通过抗原抗体复合物借助抗体Fc段与细胞Fc段的受体结合, 通过内吞作用进入宿主细胞。Ig G作用特点是PRRSV发生抗体增强的基础, 试验发现抗体能通过 (FcγR) 介导增强细胞的吞噬作用, 将病毒引入胞内。

研究发现在机体内的抗体不能完全中和相应的病毒时, 病毒可通过细胞表面 (FcγR) 介导提高对单核细胞和肺巨噬细胞的侵蚀力, Fc和Fc R结合可改变细胞信号转导途径, 诱发抗病毒模式削弱转变为病毒容易进入的模式。病毒进入宿主细胞后, 适应和改变胞内抗病毒机制。研究发现猪繁殖与呼吸综合征病毒可通过 (FcγRII) 作用增强对巨噬细胞和单核细胞的易感性。

不同病毒的ADE作用模式和机理存在差异, PRRSV主要是在低浓度的抗体作用下形成抗原抗体复合物, 通过FcγR介导增强病毒对细胞的侵入能力。

3 PRRS免疫应答及循环感染

除抗体依赖增强作用外, 独特免疫应答也是导致免疫失败的原因。

临床上发现病猪无论是被野毒感染, 还是免疫后都存在一个免疫应答延迟的现象。病毒在宿主细胞内繁殖, 引发病毒血症, 以刺激机体产生综合性抗体, 但此时产生的抗体不能有效抑制病毒, 保护性的中和抗体在几周后产生。两种抗体的出现和消失不同步, 从而导致猪蓝耳病临床检测抗体的S/P值较高, 但猪依然处于发病状态, 并易发生继发感染。

研究发现病毒有一层特有蛋白, 当病毒侵入机体时, 猪的免疫系统对其进行识别并产生免疫应答, 但并没有中和抗原, 所以病毒依然可对猪体造成致命伤害。因此, 只有猪体内产生高滴度的蓝耳病特异性抗体, 消除保护性抗原的保护时, 才能真正阻止蓝耳病病毒的侵害。

猪蓝耳病的综合防控 篇9

疫, 包括猪瘟疫苗1次、伪狂犬

病病毒基因缺失苗1头份、细小病毒苗和乙型脑炎苗各2头份 (间隔3周加强免疫1次, 剂量同前) 、蓝耳病疫苗 (国产蓝耳病灭活苗间隔3~4周免疫2次, 4m L/次) , 其它疫苗的免疫可根据猪场的具体情况和季节来确定。隔离2周时, 可将本场至少6头猪调到隔离舍与隔离猪一起饲养, 隔离结束后一同进入大群饲养。

老猪场空场时引种, 首先要进行场内环境的彻底清理和消毒, 再空放1个月以上才可以引进猪只。蓝耳病病毒比较脆弱且存活时间短, 日常消毒用的火碱、碘制剂、生石灰、漂白粉等都能将其杀灭, 在场地彻底清理和消毒处理后, 病毒会很快死亡。

清理的粪便要发酵处理, 着重进行房舍、棚顶和空气的消毒。空场引种后也要仔细观察, 严格做好防疫和消毒工作。首免可同时采用免疫进口蓝耳病弱毒苗1头份和国产蓝耳病灭活苗4m L (间隔3~4周, 加强1次国产蓝耳病灭活苗4m L即可) 。

2免疫接种

建立完善的免疫程序, 做好免疫预防保健工作。对高致病性的猪蓝耳病做好免疫的同时, 还要加强猪瘟、猪伪狂犬病病毒基因缺失疫苗、细小病毒病和乙型脑炎的免疫, 并且关注引起呼吸道疾病的免疫, 如支原体病, 链球菌病等。

后备猪、引进猪、阳性场种公母猪用进口蓝耳病弱毒苗每年免疫3次, 国产蓝耳病灭活苗免疫2次 (也可3次, 暂定本疫苗的保护期为4个月) 。严重感染场, 可考虑每年用进口蓝耳病弱毒苗免疫4次, 国产苗免疫3次 (母猪也可采用配种前免疫1次, 配种后60日龄再免疫1次的方案) 。

仔猪15日龄用蓝耳病弱毒苗1头份免疫, 间隔2~3周, 用国产的蓝耳病灭活苗2m L加强免疫1次, 感染严重场间隔4周再免疫1次。

阴性场, 种公母猪用国产蓝耳病灭活苗每年免疫2次, 每次4m L, 也可采用更为安全的免疫程序, 每年用国产蓝耳病灭活苗免疫3次, 4m L/次。仔猪在28日龄时首免, 间隔2~3周加强免疫1次, 每次用国产蓝耳病灭活苗2m L。

国产蓝耳病灭活苗, 首次免疫后间隔3~4周实施二次免疫。

3免疫监测

根据本场的免疫程序, 制定疫苗免疫监测计划。定期进行重大疫病的疫苗保护效果监测, 定期或不定期对猪群感染概率比较大的疾病进行监控检测。4治疗方法

对于病毒性疾病, 一般采取综合性的防治措施。做好前面各环节的基础上, 遵循预防大群、对症治疗和防止继发感染的原则。

对于容易继发或并发引起呼吸道疾病的病原菌, 可全群猪采用支原净+强力霉素+阿莫西林或环丙沙星+阿莫西林等抗生素, 或根据场内致呼吸道疾病的主要病原菌用药, 还可以通过药敏试验筛选更为敏感的药物拌料预防继发感染, 同时应用电解多维或氨基维他或多维素或黄芪多糖等来增强机体抵抗力。

亦可使用中药制剂, 如黄芪多糖、清瘟败毒散、清热解毒柴胡注射液、双黄连注射液、口服液、板蓝根注射液等, 还可考虑增强机体抵抗力的猪用转移因子。

猪蓝耳病综合防制 篇10

1 临床症状

由于该病的临床症状因猪群不同而异, 所以, 临床上为便于诊查, 一般按日龄进行归类总结。

1.1 种母猪

主要是反复出现食欲不振 (食欲减退或废绝) , 高热和精神沉郁, 时有咳嗽并表现不同程度的呼吸困难。间情期延长或不孕。妊娠母猪感染后, 食欲废绝, 体温升高达40℃以上, 可发生早产、死产、产弱仔, 预产期推迟, 并于妊娠后期多发流产, 母猪流产后, 精神状况好转, 有食欲, 但无乳, 康复后再次配种时受精率可降低50%。

1.2 种公猪

临床表现厌食, 精神倦怠, 嗜睡, 并有异常呼吸症状 (常见呼吸加快) , 消瘦, 可有发热现象。精液品质严重受损, 出现少精、无精和异常精子, 精子活力下降, 需较长时期方可恢复。

1.3 新生仔猪

由于患病母猪的泌乳量下降和乳中带有病毒 (似乎不存在母源抗体) , 哺乳仔猪几乎100%感染, 表现呼吸困难, 腹泻, 消瘦, 被毛脏污、无光泽, 病猪离群独处或挤堆, 有的伏卧在母猪背上昏睡, 有的病仔猪后腿肌肉震颤, 共济失调, 眼睑水肿, 轻瘫和多发性关节炎等, 病死率达80%以上, 幸存者几乎均成为僵猪, 当继发其他感染时, 病情加重, 死亡率更高, 甚至达100%。

2 杜绝境外传入

从非疫区进口的种猪, 要严格检疫, 用国际通用的酶联免疫吸附试验 (ELISA) 等, 进行血清学检查。按国家有关法律的规定进行一段时间的隔离饲养, 只有血清学检查为阴性的猪只才允许进口, 坚决杜绝从境外传入本病。

3 境内防止传染

种猪场或规模猪场需从场外引种猪时, 先需对购入猪的场进行流行病学调查。猪只应从无本病地区引入, 引进猪时应进行隔离观察, 隔离地点应在无通过空气传染危险的安全地区。同时采取国际通用的ELISA等, 进行血清学检查。血清学阳性猪, 不允许引入;血清学阴性猪至少隔离观察5周以上, 3周后经再次检查仍为血清学阴性时, 认为无传染危险, 方可混入猪群。

严格控制啮齿类动物在猪舍进出或繁殖。应防止猪与野生动物、禽类接触。

种猪场或规模养猪场应严格执行综合性防疫措施及消毒制度, 限制来访人员入场, 必须入场的人员应消毒洗手、更衣换鞋.车辆及用具应及时消毒。

该病病原对热、干燥敏感。过氧乙酸、各种有机酸和表面活性剂均对该病原有效, 在消毒时注意选用。

种猪场建筑设计要规范, 特别是产房要隔离, 远离育肥猪舍及粪尿处理场所, 产房要由专人管理, 并进行经常性的严格清洗消毒。

哺乳猪尽量提早断奶, 不同日龄的仔猪群相互隔离, 分别饲养在不同场区。

有条件的饲养场中的育肥猪应实行“全进全出”, 每批猪进出前后, 猪舍都要进行严格清洗消毒。

加强卫生管理, 搞好猪舍卫生消毒工作, 猪群密度要合理。

4 发病时的措施

4.1 检疫

当种猪场或规模养猪场发现有流产、木乃伊胎、死胎和弱仔及仔猪呼吸症状, 公猪出现嗜睡、食欲不振、低烧等传染性疾病时, 应对发病猪进行隔离饲养。对木乃伊胎、死胎、弱胎和圈舍、用具及环境进行严格消毒, 并进行流行病学调查、临诊和病理学检查、血清学检查和病原分离、鉴定或送有关部门进行诊断。

确诊为本病后, 应立即向上一级兽医防疫部门报告疫情, 以便组织力量及时扑灭疫情, 杜绝传播。

4.2 隔离

根据诊断、检疫结果将猪群分为3类。第1类为血清学阴性, 临诊健康无症状;第2类为血清学阳性, 临诊无症状;第3类为血清学阳性, 临诊上有流产、死胎, 新生仔猪有流感样症状及死亡。将3类猪严格隔离饲养, 饲养人员、用具及围舍严格分开。种猪场严格隔离, 谢绝外来参观者, 暂不从外地引进种猪。

4.3 淘汰

发病种猪场及规模养猪场的阳性并有症状的母猪、公猪及其仔猪, 不能留作种用, 应淘汰为商品猪。

4.4 免疫

高致病性猪蓝耳病的现状及防治 篇11

关键词：高致病性猪蓝耳病；流行现状；防治措施

中图分类号：S181文献标识码：A文章编号：1674－0432(2011)－05－0298－2

1流行现状

1.1隐性感染日趋普遍

传染源难以清除，往往隐性感染、反复感染，养猪户难以觉察，只有在应激条件下，才会出现症状或发生死亡。且发病情况各地方有所差异。

1.2免疫抑制

该病可引起猪体免疫下降，诱发其他疾病。有研究表明，PRRSV对猪瘟弱毒疫苗和气喘病活菌苗的免疫应答能产生干扰作用，造成其抗体水平低下。

1.3仔猪死亡率呈上升趁势

仔猪往往由于继发感染使病情较重，常伴有拉稀、高体温等症状，死亡率有升高趁势，断奶前仔猪死亡率可高达80％100％。

1.4混合感染与继发感染增多

多数是混合感染，病情复杂化，发病率和病死率很高，治愈率低。临床上常见蓝耳病与圆环病毒病、猪瘟和伪狂犬病等混合感染。耐过猪常继发传染性胸膜肺炎、链球菌脑膜炎、附红细胞体病、副猪嗜血杆菌病和地方流行性气喘病等。

1.5病毒变异

蓝耳病活疫苗的滥用，加大了PRRSV的变异和毒株间重组的机会，其变异趋向更加不可预知。《南方农村报》在报道广东疫情时指出，2010年蓝耳病病毒出现了新的变异，目前虽然在基因序列等方面尚未发现有新的突出的特点，但在临床上已观察到了新毒株流行的趋势。

2原因分析

2.1饲料霉变

饲料原料质量差，或养猪户对饲料保存不当，在高温高湿季节时，饲料发生霉变也不知道。饲料霉变产生霉菌毒素，霉菌毒素能溶解淋巴细胞，猪只长期饲喂霉变饲料后，导致了免疫抑制，抑制免疫细胞的分裂和蛋白的合成，影响核酸的复制，降低机体的免疫应答，引起猪群免疫失败，因而难以抵抗各种病原体的侵袭，导致多种疾病的发生。

2.2养殖方式粗放

农村散养户与中小型猪场饲养环境普遍恶劣。猪舍设计不合理，通风不良，饲养密度又大，夏季高温时，不采取防暑降温措施；病死猪不经无害化处理，随意乱埋；没有合理的排泄物及污水处理设施，猪场卫生差，消毒不严格；不用全价饲料，猪只营养差，体质虚弱；引入猪群不检疫不隔离不补苗，并任意从不同的地区、不同的猪场引种，带入隐性感染的猪群；免疫程序不合理，打过就算，疫苗保存条件差，质量得不到保障，免疫效果不好，保护力不高。

2.3流通管理不严格

由于种种原因，收购病死猪、私屠滥宰等不法行为尚有存在，病猪流入市场，导致疫情发生和流行。如个别养殖场乱扔病死猪，随意猪只买卖，随意引种，引入感染猪。个别生猪贩运企业以利益为重，使大量病猪、康复猪、隐性感染猪等在市场流通。

2.4免疫水平低

一方面是疫苗本身的保护率不高。另一方面是养猪户主往往对疫苗没有很好地保存、或保存条件不够，疫苗使用不规范，没有按免疫程序进行免疫，注射时或剂量不够，或方法随意、打飞针等，影响免疫效果。

2.5其他因素

如用药不合理，有时候能加重疾病的复杂化；气候环境的突变，引起猪的应激反应等。

3防治措施建议

3.1外环境净化

首從改善饲养环境入手，改变落后的粗放型散养模式，提倡集约化饲养，推进清洁生产。农村散养户可由村为单位集中建造猪舍，进行集中饲养。中小型猪场掌握适度规模饲养，逐步发展。

3.2内环境净化

隔离饲养，饲养场所要实施隔离，控制人、猪的无序流动，出入人员和车辆要严格消毒。搞好环境卫生，及时清除粪便及污水污物，保持猪场清洁。注意栏舍的冬天保暖、夏天防暑降温，保持猪舍的干燥通风，保持合理的饲养密度，降低应急因素。

3.3提高猪营养水平

不用泔水喂猪。饲料和饮水要清洁卫生，定时、定量，适当增加多种维生素，保证充足的营养，增强猪群抗病能力，不同生长阶段要提供不同营养水平的日粮。

3.4严格消毒

消毒要经常化，实行规范科学的消毒方法，配备多种消毒剂，有针对性地进行全面大消毒、局部小消毒、猪体消毒、空气消毒等。

3.5把好引种或补栏关

提倡自繁自养，实行全进全出。种猪精液在引进前须经疫病检测，补栏要从规范化、健康的猪场引进猪只，防止购入隐性感染猪。新引进的猪要报验、隔离观察、疫苗接种，努力阻止新的疫病传入。

3.6搞好猪病的免疫

做好各类疫苗的免疫注射。切合本场实际，慎重制定科学合理的免疫计划或免疫程序，规范免疫注射行为，免疫前后要及时进行必要的抗体滴度检测，确保猪群体的免疫质量。适时做好补免、紧急免疫。

3.7树立群防群治观念

发病猪只要隔离治疗，同群猪要特别“关照”，及时消灭场内已有的疫源，改变“病一只医一只”的陋习。果断淘汰无医治价值的发病猪只。病、死猪要及时无害化处理，严禁出售、食用。

3.8科学的药物预防

选择适当的预防药物，制定合理的用药方案。如在饲料中适当添加抗菌类药物、中药制剂、抗应激保健药物等，可增强猪群的抗病能力和抗应激能力，促进猪健康生长。

3.9做好疫病监测

配合当地畜牧兽医行政管理部门做好血清检测、流通监管等方面工作。特别在猪病高发或流行时期，自觉关注猪病流行新动向。如发现群体中可能存在的问题或隐患，采取必要的应对措施对全场猪群进行控制。

3.10驱虫、灭鼠、灭蝇等工作也很重要

参考文献

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猪蓝耳病疫苗预防探讨 篇12

1 猪蓝耳病疫苗预防存在的主要难点

1.1 效果相对较差

这里所指的效果较差的疫苗, 主要是指灭活疫苗。灭活疫苗主要是指将已经培养好的病毒进行加热处理或在其中加入相应的化学试剂等对其进行灭活处理, 然后将其投入具体使用, 让其发挥免疫功效, 确保接受免疫的机体内部形成对相应病毒有较强抵抗功效的抗体。但是, 在猪蓝耳病的预防工作中, 灭活疫苗的应用效果有时相对较差。首先, 受到猪蓝耳病灭活疫苗自身特点的限制, 就算接种灭活疫苗的猪体内形成了相应的细胞免疫, 抗体的自身水平也会较低, 很难达到预期的预防效果。其次, 猪蓝耳病灭活疫苗自身的抗体水平有时并不高, 这会导致猪体的机体对抗体过于依赖, 这样不仅无法达到预防效果, 更会给猪群带来其它类型的危害。最后, 在猪蓝耳病的灭活疫苗中存在矿物油佐剂成分, 该物质成分会导致猪群出现圆环病毒等, 造成猪群感染其它类型病毒。

1.2 毒株的相关影响

猪蓝耳病在我国猪养殖中并非起初就有, 而是到2006年才被相关专家确定的, 虽然猪蓝耳病的毒株原型为美洲型毒株, 但是却同时存在很多的基因亚型。这样一来, 猪蓝耳病的病毒变异就会更快, 且种类更为繁多, 导致相关人员很难对其进行科学预防。根据现有的相关实验结果可以看出, 猪蓝耳病的病毒疫苗只有在相应的有效期之内才会对猪蓝耳病形成较好的预防效果, 若是超出了相应的有效期, 出现变异的病毒就会躲过疫苗抗体对其的识别, 继续给感染猪蓝耳病的猪体带来危害。因此, 猪蓝耳病毒株的相关因素是该病无法被完全预防的主要因素, 也是导致猪蓝耳病较难得以根治的重要诱因之一。

1.3 保护时间过长

猪蓝耳病与其它类型的猪瘟病存在较大区别, 病猪在接受一定剂量的疫苗注射后, 疫苗并非可以在较短时间内发挥其自身作用。相反, 猪蓝耳病疫苗一般为弱毒疫苗, 相关人员也会选择相应的灭活疫苗, 这样一来, 就会造成疫苗的保护时间相对过长。猪蓝耳病的具体病毒入侵一般分为三个不同的阶段, 包括病毒的前期入侵、非特异性质以及特异性质的免疫, 这三个不同的反应阶段都会对猪蓝耳病的病毒产生明显的防疫效果。但是, 一般来讲, 猪群在接受猪蓝耳病疫苗的注射之后, 不会产生明显的非特异性质免疫, 这样就会使猪蓝耳病疫苗的作用不够明显, 猪群在接受猪蓝耳病疫苗之后的保护时间也会较长。

2 猪蓝耳病疫苗预防相关问题具体探讨

2.1 弱毒疫苗自身有效性

当猪蓝耳病刚刚传入我国的时候, 对于我国猪养殖而言是一场威胁极大的灾难。猪蓝耳病的发病速度很快、传染范围较广, 容易导致猪群出现死亡。此外, 猪蓝耳病自身存在的多基因压型导致猪蓝耳病中的某一类型单一病毒被及时杀灭, 导致我国的猪养殖事业发展受到极为严重的威胁。

在猪蓝耳病的疫苗研制和应用中, 弱毒疫苗的成功研发及使用对于猪蓝耳病的及时预防存在明显的意义, 可以有效对猪蓝耳病的扩散及肆虐等进行明显的抑制。虽然猪蓝耳病的弱毒疫苗药效不够高, 有时会给接受疫苗接种的猪群带来一定程度的副作用影响, 但是总体的预防效果还是可以得到保证的。与弱毒疫苗相比, 灭活疫苗虽然不会带来明显的不利影响, 但是预防效果无法得到较好保证, 因此, 相关人员需要在猪蓝耳病的具体预防中尽量选择弱毒疫苗。

2.2 疫苗预防的主要风险因素

猪在其生长过程中, 免疫力的高低是随着生长阶段产生相应变化的, 且对于外界环境的接受力也会存在明显不同, 而猪蓝耳病疫苗带有一定程度的特殊性质, 所以猪群在接种该疫苗的时候会存在相应的风险因素。根据相关实验的结果显示, 很多病猪在接受了猪蓝耳病弱毒疫苗接种之后, 病毒会从病猪的体内向外扩散, 导致其他免疫力不高的猪受到感染, 尤其是对于怀孕的母猪来讲, 最容易受到感染。若是怀孕母猪受到了相应的感染, 病毒就会出现很明显的二次作用反应, 导致病毒的毒性成分明显加强, 甚至会穿透母猪的胎盘, 给仔猪带来直接影响。但是, 对于商品猪的养殖来讲, 其生长环境相对来说具有单一性, 是与其它类型的猪分隔养殖的。所以, 猪蓝耳病弱毒疫苗对于商品猪的预防效果相对更为优越。对于母猪群的养殖而言, 在预防猪蓝耳病的时候, 若是选择灭活疫苗, 就会带来明显的风险因素, 且预防效果难以控制, 但是几乎不会给母猪群带来明显的不利影响。

2.3 免疫程序的确定

在猪蓝耳病疫苗预防工作中, 免疫程序的制定也是极为重要的一项工作。相关人员在对猪群的猪蓝耳病疫苗预防进行免疫程序指定时, 需要结合猪的具体发病情况。一般来讲, 猪蓝耳病疫苗的保护力需要在接受接种2周以上才会得以显现, 因此, 相关人员需要在猪群出现明显阶段发病的前3周左右开始让其接受免疫处理, 这样才能确保疫苗充分发挥其自身功效。与此同时, 相关人员一定要做好猪的养殖管理工作, 还要做好猪舍的消毒处理等, 在引进新的猪种的时候, 一定要将带有病毒的猪和已经发病的猪隔离在外, 以免其它猪受到严重影响。与此同时, 在猪蓝耳病的疫苗预防工作开展中, 相关人员还需要减少猪的必要应激反应等, 这也是疫苗预防的重要基础之一。在进行免疫程序确定的时候, 相关人员一定要按照相应的规范化流程进行操作, 以免免疫程序出现不合理之处。

3 结语

在猪蓝耳病的具体预防控制工作中, 疫苗预防仍未最为有效的方法之一, 目前, 市面上最常见的猪蓝耳病预防疫苗多为弱毒疫苗及灭活疫苗两种。猪蓝耳病的预防疫苗种类相对较多, 均是利用不同的毒株进行研发而成, 且在具体的应用中存在不同的免疫效果。由于猪蓝耳病的相关因素较为复杂, 所以不同毒株的免疫交叉保护效果也存在明显差异, 相关人员就需要根据猪感染猪蓝耳病的实际情况进行确定。在此背景之下, 相关人员首先需要把握猪蓝耳病疫苗预防存在的主要问题, 并以此为基础对相关问题进行分析, 确保猪蓝耳病的疫苗预防得到较好的效果。

参考文献

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