男性精液不液化不育症

男性精液不液化不育症（通用7篇）

男性精液不液化不育症 篇1

流行病学研究显示, 精液不液化已成为导致男性不孕不育主要原因之一;精液不液化是指男性射精后精液在22~25 ℃温度条件下仍处于半固体状态[1,2]。如何有效改善不孕不育男性精液不液化情况, 提高受孕率已成为医学界关注的热点之一。本次研究选取男性精液不液化不育症患者130例, 分别给予西药口服和前列安栓肛门填塞治疗, 比较两组患者临床疗效, 治疗前后精子密度和前向运动精子百分率等, 探讨前列安栓与常规西医药物治疗男性精液不液化不育症临床效果差异。

1 资料与方法

1.1 临床资料:选取我院2012年7月至2013年12月收治男性精液不液化不育症患者130例, 符合精液不液化诊断标准[3], 且女方检查无异常, 正常同居1年以上未避孕。入选患者以随机抽样法分为对照组 (65例) 和前列安栓组 (65例) ;对照组患者年龄23~40岁, 平均年龄为 (32.92±5.15) 岁, 婚龄1~8年, 平均婚龄为 (4.33±1.19) 年;前列安栓组患者年龄24~42岁, 平均年龄为 (33.05±5.18) 岁, 婚龄1~9年, 平均婚龄为 (4.38±1.22) 年。两组患者一般资料比较差异无统计学意义 (P>0.05) 。

1.2 治疗方法:对照组患者采用维生素E胶囊饭后口服, 100毫克/次, 1次/天;前列安栓组患者则采用前列安栓 (丽珠集团丽珠制药厂生产, 国药准字Z10980066) , 睡前2克/次, 1次/天;两组患者治疗时间均为4个月。

1.3 观察指标: (1) 精子密度; (2) 前向运动精子比例, 即[ (a级精子个数+b级精子个数) /总精子个数]×100.00%。

1.4 疗效判定标准[4]: (1) 显效, 患者妻子受孕或精液液化时间少于30 min; (2) 有效, 精液液化时间30~60 min; (3) 无效, 精液液化时间长于60 min。

1.5 统计学处理:数据录入分析软件分别采用Epidata3.08和SPSS17.0;统计学方法采用t检验和χ2检验;P<0.05判定为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 两组患者临床疗效比较:前列安栓组患者临床疗效 (95.38%) 显著高于对照组 (73.84%) (P<0.05) ;见表1。

2.2 两组患者治疗前后精子密度和前向运动精子百分率比较:两组患者治疗前后精子密度比较差异无统计学意义 (P>0.05) ;两组患者治疗后前向运动精子百分率较治疗前显著提高, 且前列安栓组患者治疗后前向运动精子百分率高于对照组 (P<0.05) ;见表2。

3 讨论

已有研究显示, 精液液化在精子参与受精过程中发挥重要作用;精子能够从阴道游动进入输卵管与卵子结合均依赖于此过程[5]。已有研究显示, 精液液化与前列腺液分泌液化因子关系密切, 而尿道旁腺分泌物亦可促进精液液化[6]。精液不液化情况下, 精子被束缚于网状长纤维精液中, 向前运动能力严重受限, 无法顺利完成受孕。

祖国传统医学将男性精液不液化不育症归于“淋证”、“精浊”范畴, 病机以湿热亏虚为主, 故治应清热利热, 养阴化浊为主, 同时重视对于可能伴发慢性前列腺炎治疗[7]。前列安栓主要中药成分为黄柏、虎杖、泽兰及栀子, 其中黄柏泻热燥湿, 虎杖清热活血, 泽兰利水祛瘀, 而栀子则滋阴散热;现代药理学研究显示, 黄柏提取物中所含小檗碱类生物碱可有效抑制多种病原菌生长, 降低炎性介质合成水平, 拮抗炎性细胞浸润, 对于缓解尿道阻力, 促进损伤前列腺精液液化酶分泌功能具有重要作用[8]。

本次研究结果中, 前列安栓组患者临床疗效 (95.38%) 显著高于对照组 (73.84%) (P<0.05) , 同时前列安栓治疗男性精液不液化不育症在促进受孕, 改善精液液化情况方面具有优势;而两组患者治疗后前向运动精子百分率较治疗前显著提高, 且前列安栓组患者治疗后前向运动精子百分率高于对照组 (P<0.05) , 则证实相较于西医药物, 前列安栓用于男性精液不液化不育症治疗有助于增加精子前向运动比例, 提高精子活动能力。

注:△与对照组相比, P<0.05

注:△与对照组相比, P<0.05;※与治疗前相比, P<0.05

综上所述, 前列安栓治疗男性精液不液化不育症可有效提高女性受孕率, 缩短精液液化时间, 并提高精子前向运动能力, 疗效优于常规西医药物治疗。

参考文献

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男性精液不液化不育症 篇2

1一般资料

本组100例, 全部为门诊病历。年龄21～42岁。其中21～30岁45例, 31～40岁31例, 40岁以上24例。婚龄最短1年8个月, 长者达14年。女方妇科检查无异常, 男方精液化验报告不液化>30 min。

2根据本病主症 (精不液化) 及证侯表现, 分以下四型

2.1 阴虚火旺型

症见性欲亢进或有遗精、早泄、健忘、潮热盗汗、心烦少寐、腰膝酸软、头晕耳鸣、舌红苔薄白或淡黄、脉弦细数等。

2.2 肾气不足型

症见精神疲惫、少气懒言、肢体倦怠、腰膝酸软、性欲减退、舌淡苔薄白、脉沉细。

2.3 肝经湿热型

症见两肋胀满, 时有肋下隐痞、烦躁易怒、腰酸、小便赤黄、涩痛、淋沥、舌红苔黄腻、脉弦数。

2.4 痰瘀互结型

症见身重、面色恍白、嗳气纳呆、失眠健忘、气短、舌红有瘀斑、苔薄白、脉沉涩。

3治疗方法

3.1 阴虚火旺型

宜滋阴清热。选用液化一号方加减生地、熟地、天花粉、知母、黄柏、赤芍、白芍、淡竹叶、寸冬、车前草、丹参、淫羊藿等加减。

3.2 肾气不足型

宜补肾益气。选用液化二号方加减生黄芪、女真子、旱莲草、丹参、鲜灵脾、乌药、苍术、 吴茱萸、 菟丝子、肉桂、沙苑子、香附子等加减。

3.3 肝经湿热型

宜疏肝清热除湿。选用液化三号方加减土茯苓、车前子、木通、白术、王不留行、、丹参、茜草、白毛根、萆薢、菖蒲、当归、蜈蚣、双花、泽泻等随症加减。

3.4 痰瘀互结型:

宜化痰祛瘀。选用液化四号方加减:桂枝、红花、丹参、川芎、当归、路路通、小茴香、牛膝、枳壳、浙贝母、郁金、地龙、柴胡、半夏、陈皮、滑石等随症加减。

4疗效判断

4.1 有效

精液常规化验报告:液化时间正常 ( ≤30 min) , 各项指标同时上升。临床症状自觉改善。

4.2 无效:

精液常规化验报告不液化 (>30 min) 。

4.3 治疗效果

本组患者100例根据辩证分型分别服各型液化汤, 均每日1剂, 用药时间为14 d到3个月, 平均47 d。有效75例, 其中阴虚火旺型24例, 肾气不足型18例, 肝经湿热型27例, 痰瘀互结型6例。无效25例。总有效率75%。

5讨论

89例不育男性精液检查分析 篇3

1 资料与方法

1.1 一般资料

随机选取2014年1月-2015年1月期间在我院接受精液检查的89例不育男性, 年龄23~50岁。入组标准: (1) 结婚后同居时间超过2年; (2) 配偶在生育方面属于健康状态; (3) 提取其精液标本前的3~7 d均已禁止性生活。

1.2 方法

(1) 以手淫法为主要方案提取病患精液, 将其放在无菌、清洁、干燥的标本瓶中, 立即予以检查。如果精液样本内白细胞超过5个/HP, 则需予以细菌培养。与此同时, 告知病患各项检查内容, 在无菌操作的情况下再次提取其精液标本, 并且进行详细记录。 (2) 液化检查程序:一般而言, 健康的男性射精以后, 精液会快速变成胶冻的凝块状, 并逐渐液化呈流动状, 且健康男性精液液化总时长不会超过半个小时。 (3) 细胞检查程序:生精细胞在大小以及形态方面呈现出不规则状, 如果男性精液没有染色, 予以显微镜观察, 可发现其精液和白细胞间无法直接区别, 予以Diff-Quik快速染色法染色后, 发现生精细胞呈现出阴性状, 同时镜检时其中性粒细胞会呈现出阳性状, 健康男性的细胞数量不会超过5个/HPF。 (4) 精子整体活动率程序:在检查男性精子整体活动率时, 由于存活的精子无法直接上染颜色, 所以需要观察伊红染料及精液间的反应情况, 同时于显微镜直视下对活动精子及总精子数量间的占有比进行计算。给予精液标本常规保温处理时, 通常需要将操作时间控制在2 h内。 (5) 精子形态:于玻片表面底价5~10μL精液, 查看精子头、精子尾以及精子体是否存在着异常情况。 (6) 精子活力:在对精子活力进行检查时, 需于其前向运动时予以充分保温, 再以四级分类标准为指标, 对机体精子活力进行观察。

1.3 统计学方法

本研究各项数据采用SPSS 19.0统计学软件进行分析, 一般资料采用±s表示, 计数资料采用χ2检验, 计量资料行t检验, 以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

研究表明, 有10例 (11.24%) 不育男性精液液化总时长超过半个小时;有66例 (74.16%) 不育男性精液超过5个/HPF;有59例 (66.29%) 不育男性精子整体活动率低于60%;有22例 (24.72%) 不育男性的异常精子比例超过20%;有50例 (56.18%) 不育男性整体精子活力低于50%。与此同时, 有59例 (66.29%) 不育男性精子内白细胞数量超过5个/HPF, 予以再次细菌培养以后, 发现有22例 (37.29%) 不育男性感染大肠杆菌, 有8例 (13.56%) 不育男性感染金黄色葡萄球菌, 有7例 (11.86%) 不育男性感染白色念珠菌, 有22例 (37.29%) 不育男性没有发现细菌生长。

3 讨论

精液检查已经成为当前研究不育男性病患的重要诊断手段, 却常常被临床科室忽视, 以至于男性不育精液检查科工作始终处于弱项, 不能充分重视, 导致其检查结果普遍存在失真等情况, 生精细胞往往会被视作白细胞, 因此误诊、误治等情况普遍存在[2]。精子本身属于男性群体中最为重要的一种生殖细胞, 通过睾丸的生精细胞进行分化以后, 即可衍生成为精子。精子在男性睾丸中发展至成熟阶段后, 输精管就会将其直接输出[3]。

精浆属于附属性腺所产生的分泌物中的一种混合液, 在提升精子活力、输送精子及给予精子提供大量营养等方面发挥重要作用。当男性排精时, 精浆会与精子直接混合, 并组合成为精液[4]。近几年, 临床上将男性精液检查视为诊断及治疗不育男性的重要手段, 同时还是评价不育男性治疗效果的重要指标。然而, 受地区差异、饮食差异及职业差异等客观因素的影响, 男性精子形态、精子功能都会不断发生变化, 所以加强精液检查尤其重要[5]。

在对不育男性进行评价时, 精液分析属于其首要方案, 通过观察分析结果, 发现不育男性诱因涉及精子整体活动效率、活力、总数、形态及液化等方面。本研究通过开展不育男性精液检查活动, 发现有10例不育男性精液液化总时长超过半个小时, 66例不育男性精液超过5个/HPF, 59例不育男性精子整体活动率低于60%, 有22例不育男性的异常精子比例超过20%, 50例不育男性整体精子活力低于50%。与此同时, 有59例不育男性精子内白细胞数量超过5个/HPF, 予以再次细菌培养以后, 发现有22例不育男性感染大肠杆菌, 8例不育男性感染金黄色葡萄球菌, 7例不育男性感染白色念珠菌, 22例不育男性没有发现细菌生长。

本研究以人工精液为主要分析对象, 在实验条件、技术条件及经验等方面存在许多限制性因素, 以至于分析指标出明显偏差。由此可见, 不育男性精液检查程序中, 检验医师要严格把握每一项检验程序和分析程序, 从而有效提升检验效率, 为临床诊治工作的顺利展开提供重要保证。

参考文献

[1]陈振文, 谷龙杰.精液分析标准化和精液质量评估—WHO《人类精液检查与处理实验室手册》 (第5版) 出版[J].中国计划生育学杂志, 2012, 20 (1) :58-62.

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男性精液不液化不育症 篇4

1 资料与方法

1.1 一般资料

选取本院2015年9月~2016年2月所收治的275例男性不育患者及162例正常生育的男性, 将其分为观察组及对照组, 并提取其精液作为本次研究对象。观察组:年龄23~44 (33.05±5.63) 岁, 不育年限1~15年。对照组:年龄25~42 (32.62±4.82) 岁。对照组男性均有子女, 且年龄在1周岁以内。两组年龄、病程等一般资料比较, 差异不明显 (P>0.05) , 具有可比性。

1.2 纳入标准与排除标准

纳入标准:两组患者均为已结婚男性, 夫妻性生活正常;观察组夫妻未采取避孕措施未孕1年以上, 排除因女方问题而导致婚后无子的病例。排除标准:不符合纳入标准者;有其他慢性肾病患者;过度酗酒者。

1.3方法

在采集两组男性精液标本前, 应通知患者禁欲3~5d, 并以手淫进行精液的收集, 之后将其置于一次性取精杯中, 在37℃恒温水浴箱中液化, 当精液完全液化之后便可进行常规检测和分析。本次研究采用北京伟力科技发展公司生产的WLJY-9000伟力精子质量检测系统进行分析。

1.4 判定标准

精子浓度≥15×106/ml, 前向运动精子百分率<32%, 则为弱精子症;精子浓度<15×106/ml则为少精子症;正常形态精子百分率<4%为畸形精子症;精液中无精子则为无精子症;精液超出1h仍未液化则为液化异常。

1.5 统计学方法

数据采用统计学软件SPSS 19.0进行数据处理和分析, 使用±s表示计量数据资料, 采用t检验, 使用 (%) 表示计数资料, 采用χ2检验, 以P<0.05表示差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 观察组精液检测结果

在本次研究中, 观察组患者中在精液常规分析参数上显示正常的有28例, 占总数10.18%, 异常者247例, 占总数89.82%, 其中患无精子症者47例, 占17.09%, 精液液化异常者32例, 占11.64%。

2.2 观察组与对照组精液参数对比

除47例无精子症患者外, 其余228例患者均与对照组进行比较, 此两组在精液量、PH值上无显著差异, 不具有统计学意义 (P>0.05) 。在精子浓度、前向运动精子百分率及正常形态精子百分率等指标上对比分析有统计学意义 (P<0.05) 。见附表。

3 讨论

在现阶段, 已有较多流行病学的调查研究显示, 人类社会中成年男性精液在质量上有明显的下滑趋势, 这与当前的环境污染及自然生态环境恶化有着密不可分的关系。受当今全球生态环境逐步恶化、社会生活中辐射与污染物质的增加以及现代人群不健康生活方式的影响, 多数男性在精液的质量上有所下降, 这也直接导致了社会上不孕症的多发, 并在近些年以来呈逐步攀升的趋势, 而这一情况在我国亦同样如此[4]。为有效缓解该现象, 提高男性精液质量, 减少不孕不育家庭的痛苦, 需要对精液进行全面分析, 以了解其质量, 并对不育患者的生育能力进行重新评估, 从而判断有关男性生殖系统的功能状态, 为临床诊断以及治疗提供强有力的实验数据依据[5]。而精液的常规分析作为对男性生育能力进行评价的一项重要检查, 其监测与分析结果的重要性不言而喻, 为此则必须要保证结果的准确有效, 对于检测指标中所涵盖的精子浓度、精子活力情况这两项内容, 直接影响到男性生育能力的评估, 因此必须要将其作为重点检测项目, 并确保其检测结果真实有效。精子浓度、前向运动精子百分率、正常形态精子百分率以及精液的液化时间异常均能够表明患者的不育情况, 通过对这些数据进行分析可以更加全面的了解到患者不育原因以及精子的异常情况[6]。经精液分析可知, 本次研究中的观察组在精液异常率上高达89.82%, 观察组的男性在精子浓度、前向运动精子百分率及正常形态精子百分率等各项检测项目的数据上则要远低于对照组, 差异具有统计学意义 (P<0.05) , 由此可知, 这便是导致男性患者不育的最主要原因。同时, 由于患者自身的内分泌系统紊乱、全身疾病及其并发症、生殖器官感染、部分外在环境因素 (农药污染过度、吸烟酗酒、遗传因素) 等均会导致患者精子数量和活力下降、存活率低, 致使其无法正常进入卵子内。有相关研究表明, 现代社会中有12.7%的成年男性存在着精液液化异常的问题, 而在本次研究中患有精液液化异常的男性共计32例, 占11.64%, 导致精液液化异常的因素较多, 常见的几项有输精管缺陷、前列腺感染、精囊腺病变等, 并且当精液粘稠度过高时亦可能会出现精液液化异常。使用计算机辅助精子质量检测系统对精液进行常规检测与分析, 可以获知传统检测中所无法了解到的动态参数及变量, 从而使精液的质量检测更加标准和规范, 在数据上也更加准确。

经本次研究可知, 成年男性不育患者在精液上主要表现为精子浓度、前向运动精子百分率及正常形态精子百分率异常, 在精液量及PH值上则与正常精液趋于一致。

参考文献

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男性精液不液化不育症 篇5

1 资料与方法

1.1 一般资料

2009年4月至2011年3月间我院不孕不育门诊共收治的男性不育患者中, 进行精液细菌培养和药敏试验检查的有228例。患者年龄27岁至45岁, 平均年龄 (36.2±10.2) 岁。

患者有2至9年的不育史, 性生活无异常, 未采取任何避孕措施, 且身体健康, 无其它疾病, 生殖器外观无异常, 配偶经妇科、B超、输卵管通畅试验等方面检查排除了不孕的可能。

1.2 检测方法[1]

标本采集方法:受试者禁欲3～7d后, 排尿后, 用碘伏对双手、阴茎及龟头进行清洗消毒, 采用手淫的方式获得精液并收集于洁净无菌的容器内, 粘贴标记以防混淆和差错, 置37℃的恒温水浴中至液化, 立即送检。

细菌分离培养及鉴定:用移液器吸取已经液化的精液样本0.1mL, 接种于羊血琼脂培养皿中, 采用三区划线进行分离, 置37℃恒温培养箱中连续培养24h后, 对菌落的形态进行观察后, 根据细菌菌属特征进行生化鉴定。

药物敏感试验:采用K-B纸片琼脂扩散法进行药敏试验。药敏纸片来源于中国食品药品检定研究院, 本试验选择的药物为:青霉素G、阿莫西林/克拉维酸、头孢唑林、头孢哌酮、红霉素、万古霉素、庆大霉素、左氧氟沙星、复方新诺明、利福平、环丙沙星。选择大肠埃希菌、铜绿假单胞菌和金黄色葡萄球菌作为标准菌株。

2 结果

2.1 进行精液细菌培养检查的有228例, 其中72份精液样本呈阴性, 156份阳性样本中共分离培养处208个菌株, 对菌株进行鉴定结果见表1。

我院收治的男性不育患者精液细菌培养结果显示:患者的细菌感染率为68.4%, 病原菌以金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌和草绿色链球菌为主, 分别占34.13%、33.17%和11.54%。

2.2 对检出菌进行药物敏感试验, 结果如下, 见表2。

检出菌进行药物敏感试验结果显示:绝大多数细菌对青霉素G有耐药性, 耐药率高达84.13%;对红霉素也有较强的耐药性, 耐药率达到了36.06%;对万古霉素和左氧氟沙星较敏感, 耐药率补足10%。

3 讨论

目前学者普遍认为, 细菌、真菌、支原体、衣原体、病毒等是导致男性不育的主要病原体。本实验以我院近两年收治的男性不育患者为实验对象, 对其精液进行细菌培养和药敏试验, 统计不育男性精液中细菌感染的情况, 并对病原菌的分布特点及其耐药性进行分析。实验结果显示患者精液的细菌感染率高达68.4%, 与前面的论述一致;病原菌中金黄色葡萄球菌和表皮葡萄球菌最多, 分别占34.13%和33.17%, 其次为草绿色链球菌, 占11.54%。检出菌进行药物敏感试验结果显示:绝大多数细菌对青霉素G有耐药性, 耐药率高达84.13%;对红霉素也有较强的耐药性, 耐药率达到了36.06%;对万古霉素和左氧氟沙星较敏感, 耐药率补足10%。由此可见:随着广谱、超广谱抗生素越来越广泛的应用, 病原菌的种类不断发生变迁, 因此细菌的耐药性逐渐增强, 内源性感染逐渐增多, 因此治疗前对致病菌的进行细菌培养和抗生素的药物敏感性试验有着重要的意义[2]。

本文的实验结果与相关文献中的记载有所出入。陈廷, 董海新等[1]在84份男性不育患者的精液中, 分离出5种细菌菌株共计35株, 分离率为41.7%。其中金黄色葡萄球菌最多, 占74.2%, 表皮葡萄球菌次之, 占17.1%, 链球菌, 肠球菌和普通变形杆菌各一例。药敏试验显示金黄色葡萄球菌与表皮葡萄球菌对万古霉素未见耐药性, 草绿色链球菌、粪肠球菌对头孢唑林、头孢哌酮未见耐药性。

唐恒锋, 李文郎等[3]对385例不育男性患者精液进行细菌培养结果革兰阳性菌占86.5%, 以表皮葡萄球葡菌、金黄色葡萄球菌、溶血葡萄球菌为主, 革兰阴性菌占13.5%, 以肠杆菌科细菌为主, 上述细菌对青霉素G及红霉素耐药, 对万古霉素、多西环素、利福平及左旋氧氟沙星较敏感。

张欣宗等[4]对75例供精者的精液进行细菌学分析, 分离细菌以表皮葡萄球菌、棒状杆菌、肠球菌、草绿色链球菌、微球菌、溶血葡萄球菌为主。

张志峰等[5]通过实验分析得出表皮葡萄球葡、屎肠球菌、金黄色葡萄球菌为主要病原菌, 上述细菌对阿莫西林/克拉维酸、庆大霉素、链霉素平均耐药率接近100%, 而对万古霉素、四环素敏感。

张银辉等[6]通过大量的细菌培养和药敏试验得出大肠杆菌、嗜水气单胞菌、催产克雷伯氏菌为主要优势菌, 药敏试验显示上述病原菌对环丙沙星、丁胺卡那霉素敏感, 头孢三嗪和泰能对其也有较强的抑菌作用。

因此可以看出如果仅凭经验对细菌感染的患者进行治疗, 可能会有一定的效果, 但极易出现因用药治疗无效后频繁更换其他抗菌谱广泛、高级的抗菌药物的情况, 不但延误了最佳治疗时机, 增加了患者的经济负担, 更为严重的是易引起菌群失调导致的二重感染以及细菌的耐药性。可见, 根据引起生殖系统感染的主要致病菌不同选择合适的抗菌药物, 势在必行。同时也要求我们广大医务工作者要重视治疗前的细菌学检查和药物敏感试验。

参考文献

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男性精液不液化不育症 篇6

1 资料与方法

1.1 一般资料

616例男性不育症患者, 年龄:20~46岁, 中位年龄29岁, 平均 (29.49±5.09) 岁, 数据不符合正态分布;病程:1~9年, 中位数3年, 平均 (3.27±2.18) , 数据不符合正态分布;精液白细胞:0.10~38.90×106/m L, 中位数0.30×106/m L, 平均 (0.98±3.40) ×106m L;精液p H值:6.50~8.20, 中位数7.40, 平均 (7.41±0.28) , 数据不符合正态分布;精液量:0.50~6.20m L, 中位数3.10m L, 平均 (2.91±1.10) m L, 数据不符合正态分布;精子浓度:0~184.36×106/m L, 中位数13.64×106/m L, 平均 (21.83±26.85) ×106/m L, 数据不符合正态分布;A级精子:0~52.73%, 中位数8.57%, 平均 (11.42±11.22) %, 数据不符合正态分布;前向运动精子:0~65.66%, 中位数16.66%, 平均 (18.06±14.98) %, 数据不符合正态分布;非前向运动精子:0~33.90%, 中位数4.70%, 平均 (6.32±6.68) %, 数据不符合正态分布;存活率:0~82.07%, 中位数23.62%, 平均 (24.56±20.22) %, 数据不符合正态分布;正常形态精子:0~30.00%, 中位数6.00%, 平均 (8.10±7.66) %, 数据不符合正态分布;精浆弹性蛋白酶:23.00~10150.00ng/m L, 中位数440.00, 平均 (1747.33±2661.88) ng/m L, 数据不符合正态分布;精浆酸性磷酸酶:7.60~371.80U/m L, 中位数65.30, 平均 (91.82±71.10) ng/m L, 数据不符合正态分布;精浆锌:0.49~3.41mmol/L, 中位数1.50mmol/L, 平均 (1.57±0.62) mmol/L, 数据不符合正态分布;果糖:0.13~4.36 g/L, 中位数1.67 g/L, 平均 (1.83±0.79) g/L, 数据不符合正态分布;α-糖苷酶:9.28~86.15U/m L, 中位数31.11U/m L, 平均 (33.38±13.83) U/m L, 数据不符合正态分布。

1.2 男性不育症诊断标准[2]

育龄夫妇, 同居1年以上, 性生活正常, 未采取避孕措施, 女方有受孕能力, 由于男方原因而导致女方不能怀孕者。

1.3 精液采集及检测方法

所有患者禁欲3~5d后来我中心取精室, 手淫取精液于干燥消毒量杯内, 置37℃水浴箱内, 待液化后, 由河南省中医院中西医结合生殖中心实验室采用WLJY-9000型伟力彩色精子质量检测系统检查, 检查于1h内完成。60min不液化者, 采用试剂处理后进行检测。前向运动精子 (PR) :精子主动地呈直线或沿一大圆周运动, 不管其速度如何, 参考值下限32%;非前向运动精子 (NP) :所有其他非前向运动的形式, 如以小圆周泳动, 尾部动力几乎不能驱使头部移动, 或者只能观察到尾部摆动;存活率:应用伊红-苯胺黑染色, 检测精子膜的完整性, 确定精子的存活率, 参考值下限为58%。

1.4 精液量检测[1]

患者取精于消毒量杯内, 由实验室专业人员测量, 参考值下限1.5m L。

1.5 精液p H值测定

使用测量范围在6.0-9.0的精密p H值试纸 (天津市金达化学试剂有限公司的精密p H试纸) 进行。正常液化的精液操作在30min时进行, 不液化的精液在60min内进行, 将一滴精液于p H试纸上均匀展开30s后, 浸湿区域的颜色均匀一致时观察结果, 参考值下限7.2。

1.6 精液液化检测[3]

所有患者禁欲3~7d后来我中心取精室, 手淫取精液于干燥消毒量杯内, 置37℃水浴箱内, 60min后仍未呈液态, 显微镜下观察有明显的凝胶状物质存在, 即诊为精液不液化。

1.7 精液白细胞检测[1]

用正甲苯胺过氧化物酶染色法行精液白细胞染色 (试剂盒购于深圳华康生物医学工程有限公司, 批号:20081201) 。参考值:<1×106/m L。

1.8 精子形态分析[1]

取10μL精液滴在载玻片上, 拉薄涂片, 用Diff-Quik染色, 按WHO精子形态分类方法计数200条精子, 依Kruger严格标准进行精子形态分析。参考值下限:4%。

1.9 精浆生化检测

精浆酸性磷酸酶、精浆锌、精浆果糖、精浆α-糖苷酶的检测, 采用化学比色法, 试剂盒 (批号:02021101) 购于南京欣迪生物药业工程有限公司, 严格按试剂说明书操作。参考值:精浆酸性磷酸酶48.8~208.6U/m L;精浆锌0.8~2.5mmol/L;精浆果糖0.87~3.95g/L, 将0.87~3.95g/L设为正常组, <0.87g/L设为异常组;精浆α-糖苷酶35.1~87.7 U/m L。

1.1 0 精浆弹性蛋白酶检测

用酶联免疫吸附法 (ELISA) 检测, 试剂盒 (批号2009020) 购于深圳华康生物医学工程有限公司, 酶标仪为Thermo生产, 型号为MK3, 按试剂说明书操作。参考值<290 ng/m L。

1.1 1 统计方法

在E x c e l上建立数据库, 数据用 (χ—±s) 描述, 统计分析在SPSS16.0上进行。首先对数据进行Explore分析, 符合正态分布者, 进行Pearson相关性分析及Independent-Samples T Tests检验;数据不符合正态分布者, 进行Spearman相关性分析及two-Independent-Samples Tests非参数检验。

2 结果

2.1 精浆果糖与精液参数的相关性分析

见表1。

2.2 精浆果糖正常组、异常组之间精液参数、精浆生化比较

见表2。

3 讨论

精浆果糖由血液葡萄糖在精囊腺经一系列酶促反应转变而成, 是精囊功能的特征性标记物, 同时也是精子能量代谢的重要来源, 经糖酵解和线粒体呼吸作用产生的ATP为精子代谢和活动供能[4]。果糖水平对精囊分泌功能状态有提示作用, 而精囊分泌物约占精液量的60%, 故果糖水平与精液量呈正相关[5,6]。目前研究[5,6]对于果糖水平与精子活力及活动率的关系意见不一, 有的认为果糖与精子活力、活动率呈负相关;有的则得出相反结论。

研究显示:精浆果糖与男性不育症患者精液参数、精浆生化、精浆弹性蛋白酶无明显相关性 (P>0.05) 。按精浆果糖水平分组比较:精液量、p H值、精子浓度及年龄有显著性差异 (P<0.05) ;精液白细胞、精液液化时间、A级精子百分率、前向运动精子百分率、非前向运动精子百分率、不动精子百分率、存活率、正常形态精子百分率、精浆弹性蛋白酶、精浆锌、精浆α-糖苷酶、精浆酸性磷酸酶无显著性差异 (P>0.05) 。

研究提示: (1) 精浆果糖和精子的活动能力关系不密切, 与文献报道相似[7]; (2) 随着年龄的增长, 精囊腺的分泌能力逐渐下降; (3) 男性不育症患者, 当精浆果糖明显降低时, 精液量、精液p H值、精子浓度也明显降低, 如果四者同时明显降低, 结合临床可诊断为射精管梗阻[8]。

参考文献

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男性精液不液化不育症 篇7

1 对象与方法

1.1 研究对象

2009年3月~2011年6月间在中南大学湘雅医院就诊的2 794例男性不育患者(已排除器质性疾病和女方不育因素)。受检者年龄为19~57岁,平均年龄为30.3±6.7岁。

1.2 标本收集

禁欲3~7 d,在实验室附近采用手淫取精法,收集完整精液于清洁、干燥的小瓶内,置37℃水浴箱内,每10 min观察一次,待其完全液化,取标本进行分析。

1.3 精液质量分析正常参考标准

(1)精液量2~6 m L;(2)精子密度等于或大于20×106m L;(3)精子活力:具有向前运动的精子(a级+b级)大于50%或a级大于25%;(4)p H7.2~8.0;(5)精子活率大于或等于50%;(6)液化时间:排精后在30 min内液化;(7)正常形态精子超过50%。同时符合上述7项指标为正常精液,反之为异常精液。

1.4 仪器和试剂

采用以色列欧霸SQA-V自动化精子质量分析系统检测精子密度、精子活力、精子活率等指标。其它精液参数按《WHO人类精液及精子-宫颈粘液相互作用实验室检验手册》[1]标准及《精子质量检测系统使用手册》进行检验。精子密度质控品采用以色列MES公司生产的两个已知浓度(45.0±6.3)×106/m L和(22.0±3.1)×106/m L的Qwik Check质控珠。

1.5 操作步骤

精液液化后,充分混匀,由熟练操作人员用SQA专用的一次性采样管吸取0.5 m L,加入自动检测孔进行分析。异常结果及Qwik Check质控珠均由工作人员在相差显微镜下进行重复计数。

1.6 统计学分析

应用SPSS13.0软件对数据进行统计学处理,计量资料采用均数±标准差(x±s)表示。

2 结果

2.1 2 794例男性不育患者精液参数

按照上述检验方法及参考指标对2 794例男性不育患者的精液进行常规分析,然后进行分类统计,其中精子密度、精子活动率等指标的极值(最高值和最低值)和平均值(x±s)结果见表1。

2 794例男性不育患者精液标本中,完全正常的精液356份,占12.74%,精液质量异常的2 438份,87.26%,具体检测结果见表2。

2.2 精液异常分类统计

按精液分析标准对2 438例精液异常结果进行分类统计(其中1人可出现2项或2项以上的异常结果),结果见表3。

3 讨论

据统计,育龄夫妇中不育症的发病率为10%~15%,其中单纯男性原因所致不育者可达15%以上[2]。引起男性不育的病因非常复杂,往往是多种致病因素交叉存在。男性不育的实验室检查尤为重要,精液常规检测是每一个不育不孕男性患者的必要检查项目,精液常规检测的质量是临床诊断最重要的一环。目前临床上精液常规检测的方法多数还是手工法,这种方法所得到的结果人为误差很大,并且与检测者个人的经验有关。为了使精液常规的检测更加标准和准确本院引进了SQA-V自动化精子质量分析仪,它能客观、快速、简便、安全地实施检测,为男性不育症的诊治提供客观准确的依据。

随着科技的飞速发展,全球污染问题日益严重,人类精子质量和数量都在悄然下降,致使男性不育的比例也正在逐年上升。据报道,近半个世纪以来在世界范围内,男性的精子数量已下降4~5成,在我国男性精液质量亦呈下降趋势[3]。本文资料显示,本地区不育男性精液质量异常率较高,其中精子的活力下降、活率异常和精子密度降低是影响本地区男性生育能力的最主要因素。畸形率过高、精液量过少、精液液化不良也是引起本地区男子不育的重要原因。在2 438例异常精液中精子活力低的样本占65.71%,精子存活率低的样本占39.38%,引起精子活力、活率异常的因素主要是内分泌因素及全身性疾病并发症和生殖道感染等。某些环境因素如农药污染、过度饮酒、吸烟、遗传因素等也会对其产生影响[4,5]。精子数量减少主要表现为精液量过少和(或)精子密度降低。精液量少于2 m L的样本有600例,占24.61%,精子密度<20×106/m L者779例,占31.91%。研究中还发现有64例病例在反复多次送检中均未检测到精子,无精子症有两种原因,一种是睾丸生精细胞萎缩退化,不能产生精子;另一类是睾丸能产生精子,由于输精管道阻塞,或先天性双侧输精管缺如[6],使精子不能排出体外。本资料畸形精子症占异常精液总量的25.31%与陈廷、杨金玲等[7]的报道相近,引起精子畸形的原因有感染、损伤、睾丸应激反应、内分泌紊乱、化学药物及遗传因素等多种原因。精液液化不良样本占20.59%,精液液化不良可使精子活动受限制从而导致不育,精液的液化主要与前列腺分泌的液化因子有关,这些因子包括蛋白酶系统和微量元素,而任何影响液化因子产生的因素都可以造成精液液化异常。p H值异常的样本占2.30%,精液的p H值一般为7.2~8.0,精液p H>8.0,常见于急性感染,应该怀疑前列腺炎症而导致酸分泌物的减少,如枸橼酸;精液p H<7.0,多见于少精或无精症,常反映输精管道阻塞、先天性精囊发育不全或附睾病变。

由于精液分析受多种因素影响[8],要达到精确地预测或判断男性个体精液标本的生育力这个目标比较困难。但是当精液分析出现无精症、少精症、精子密度过低等较明确结果时,可以直接推断男性生殖系统及相关内分泌器官的功能状态,为临床上男性不育的诊断和治疗提供重要的实验依据[9]。本研究通过对男性不育患者精液检查结果的分析,探讨本地区不育男性精液现状,希望能对不孕不育临床诊断提供指导作用。

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