检验标本采集的相关注意事项

检验标本采集的相关注意事项（精选8篇）

检验标本采集的相关注意事项 篇1

标本采集的相关注意事项

1、病人的准备

做血液检验项目的病人，一般要求采血前禁食10~14小时，采血的前一天避免吃高脂肪、高蛋白类食物，避免饮酒。否则，会引起血脂及某些血清酶结果升高，甚至血清出现混浊，影响整个检验结果。

2、采血时间

血液生化检验一般要求早晨空腹安静时采血。因为体内的各种化学成份受许多因素调节：如饮食后大量葡萄糖及脂类物质吸收入血，使血糖和血脂上升，游离脂肪酸及无机磷降低；运动后会使LA、丙酮酸、LDH、ALT、AST、CK等升高，GLU降低；昼夜变化大的成份有皮质醇、血清铁、胆红素等；日间变化大的主要是代谢废物如Urea、UA等；大量饮水可致血液稀释等等。但对重症昏迷或急症病例，可随时采血送检GLU、K+、Na+、Ca2+、AMS、血气分析等项目。但在输液时采血应避免送检项目受输液成份的影响，如输液中补钾、补糖、补硷时送检，对血K+、血GLU、CO2-CP等项目均有影响。

3、采血部位

成人一般取肘部静脉，肥胖者可用腕背静脉；婴儿常用颈部静脉、股动脉或前囟静脉窦；刚出生的婴儿可收集脐带血；尸体解剖者取心脏血；血气分析一般采动脉血；输液病人采血应避免在输液的同一侧上肢或下肢采血，烧伤患者采血应避免穿剌炎症或水肿部，以免影响结果。

4、采血操作及送检的注意事项

4.1、采血器械：采血用的注射器、试管必须干燥清洁。注射器及针头不宜用酒精消毒。目前我院主要采用一次性负压采血试管。

4.2、采血操作：必须按无菌操作，采血部位皮肤必须干燥，止血带不可缚扎过久。

4.3、防止分解及自身变化：采血后应尽快送检。因血液中有些化学成份于离体后极易分解，使其含量改变，如血糖及酶类测定，时间过久，血细胞酵解可使血糖下降，酶活力变化等。有些化学成份在细胞内外相差悬株，离体时间过长，细胞内外浓度会发生变化，影响测定结果。如肌酸激酶、乳酸脱氢酶、电解质等。4.4、防止污染：有些检查项目要求极严格，其采血器具及标本容器必须经过化学清洁。如血氨、铜、锌、铁等项目，因其含量极低，稍有污染即影响结果。作淀粉酶测定时，要防止唾液污染，因唾液中含有大量的淀粉酶，污染后会引起假性淀粉酶升高。

4.5、防止溶血：作各类生化检验，要防止血细胞破裂溶血，因溶血引起细胞内外浓度改变，可使钾、胆红素、氯化物、无机磷、ALT、AST、LDH等升高，钠、钙、AKP等降低，溶血对某些实验的反应过程干扰：如血红蛋白可直接抑制脂肪酶的活性，使脂肪酶降低。溶血可影响呈色反应终点为红色的实验，如酶法测定血糖、胆固醇、甘油三酯、胆红素的重氮反应、尿素的二乙酰肟法等。

5、抗凝剂的选择

生化检验大部份项目都采用血清，但有些项目需用血浆或全血，采集的血液必须加入抗凝剂。抗凝剂的种类较多，如选择不当，亦会影响检验结果的准确性。下面介绍几种生化检验常用的抗凝剂及其用途：

5.1、肝素：常用于生化项目等的测定。特别适合于全自动生化分析仪。5.2、枸橼酸钠：主要用凝血机制测定（1：9），血沉测定（1：4）。5.3、草酸钾：常用于尿素、肌酐、纤维蛋白原等测定，不能用钾、钙等测定，对LDH、丙酮酸激酶、AKP和淀粉酶有抑制作用。

5.4、二乙胺四乙酸钠盐（EDTA-K2）：主要用于血常规测定，不能用于测定电解质。

标本采集及注意事项

随着检验方法的日益完善，高精密自动化仪器的大量使用，以及检验的科学化管理和检验工作人员技术水平不断提高，检测过程中的影响因素和干扰因素明显降低，介分析前的各类影响或干扰因素相对增多。现代检验医学对检测标本的留取与收集提出较高的要求，而广大就诊患者也必需了解留取标本的基本知识，遵照医嘱，配合检验人员，以使检验结果更准确准确可靠。门诊及住院部常见的检验标本一般包括血液(指静脉血)、尿、粪便、脑脊液、胸水、腹水、前列腺液、精液、阴道分泌物等，这些标本收集的时间、方法和保存都有一定的要求。

一、血液标本

静脉血 尽量避免生理因素的影响，有些生理因素，如吸烟、进食、运动、情绪波动、妊娠、体位等均可影响血液中某些成分的变化，有些甚至还有昼夜变化。采集血液标本的条件应尽量一致为宜，如无法避免，应在标本说明上注明该因素。本院绝大部分标本均采用抗凝静脉血血浆，一般以清晨空腹血标本为宜，有些(如CK等)受运动等因素影响较大。抽血时避免溶血的发生也十分重要，尤其涉及K＋，LDH等的测定。切忌在输液的同侧静脉抽血做各项检验。

二、尿液标本

同血标本一样，尿液标本受饮食、运动、药物量等因素的影响也较大，特别是饮食的影响，故一般来说晨尿优于随机尿。晨尿是指清晨起床后的第一次尿标本，较浓缩和酸化，有形成分(如血细胞，上皮细胞，管形)相对集中便于观察。随机尿即随意一次尿，留取方便，但受饮食、运动、药物影响较甚，易于出现假阳性和假阴性结果，如饮食性蛋白尿，饮食性糖尿，维生素C干扰潜血结果等。12h尿细胞计数，即Addis(晚8时排空膀胱后留取至次日8时的所有尿液)，因时间较长，细菌易繁殖，须加入防腐剂如甲醛。

24h尿(第一天晨8时排空膀胱后留取至次日晨8时的所有尿液)中化学物质的定量，包括蛋白，糖，Ca2十等，检测不同的物质，选择不同的防腐剂。清洁中段尿多用于尿细菌培养，要求无菌，冲洗外明后留取标本。所有尿标本的收集都应足量，最少12m1，最好50ml，定时尿须全部收集，对女性患者应避免阴道分泌物、经血污染尿标本。

三、粪便标本

粪便标本的检测对判断消化系统疾病有重要参考价值。采集时要求用干净的竹签选取含有粘液、脓血等异常病变成分的粪便，对外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材。找寄生虫虫体及作虫卵计数应收集24小时粪便。查痢疾阿米巴滋养体应于排便后立即检查，从有脓血和稀软处取材，保温送检。隐血试验(化学法)，试验前3日禁食肉类及含动物血食物并禁服铁剂，维生素C等。所有粪便标本采集后应尽快检查，以防止有形成分受消化酶及pH的破坏。

四、脑脊液（CSF）标本

CSF标本采集后立即送检，放置过久将影响检验结果：如细胞变性，破坏，导致计数和分类不准，有些化学物质如GLU等将分解含量减少，细菌发生自溶影响其检出率。CSF抽取后一般分装三个无菌管，第一管作细菌培养，第二管作化学分析和免疫学检查，第三管作一般性状及显微镜检查，三管顺序不宜颠倒。因标本采集较难，全部送检和检测过程应注意安全。

五、胸腹水标本

与CSF标本一样，采集后的标本注意安全，及时送检。一般也分装三管，一管作常规细胞学检查，一管生化检查，一管细菌培养，顺序以与CSF相同为宜。

六、前列腺液标本

前列腺液标本由前列腺按摩后采集，液量少时直接滴在载玻片上及时送检，须注意防止标本蒸干，量多时收集在洁净干燥的试管中。若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液沉渣。

七、精液标本

精液标本采集前应禁欲3～7天，排净尿液后可用手淫法或其他方法将精液直接排入干净的容器中，保温并及时送检。由于精子生成日间变动较大，一般应检查2～3次(每次间隔1～2周)方可做出诊断。

八、阴道分秘物标本

阴道标本采集前24小时应禁止房事、盆浴、明道检查、明道灌洗及局部上药等．取材所用器械需要清洁。一般用盐水浸湿棉拭子自阴道或阴道弯后部、宫颈管口取材，制生理盐水涂片后观察分泌物标本，经期的女性患者不宜检查阴道分泌物标本。

九、痰液标本

痰液的常规检查或培养，应于清晨漱口后，尽量咳出深部的痰液，放于洁清的不吸水的容器内，尽快送检。

方便患者的服务

1.为外地病人提供邮寄检验报告单服务。

2.于门诊或住院部检验科内，为广大患者提供有关检验咨询、检验指

南、取检验结果以及对检验结果的解释。

3.接受有关检验常识的咨询、检验结果的查询、检验费用的咨询。

咨询电话：3072464 3074147 3074074 3072473 3074149 4.60岁以上的老人或急、重病人来检验免排队，优先检查。5.为病人提供卫生手纸。6.对抽血晕针的病人，免费提供葡萄糖水及其它相应的急救处理。

检验标本采集的相关注意事项 篇2

1采血时间

血液放置时间过长会影响许多化验结果[2]。现总结如下:①对血清电解质浓度测定值的影响:血清钾在放置1 h后与即刻比较明显升高, 差异有显著意义;血清氯放置5 h后与即刻比较明显下降, 差异有显著意义;②对血糖测定结果的影响:经比对实验, 显示静脉采血后, 血块凝固如不及时离心分离血清, 血清葡萄糖因血细胞的糖酵解每小时会降低7, 而经过分离提取的无溶血的血清无细菌污染, 25℃下血糖可稳定8 h, 4℃时稳定72 h;③对心肌酶谱的影响:肌酸肌酶活性随时间延长而不断下降, 乳酸脱氢酶由于红细胞膜的通透性改变, 血清中该酶活力不断上升。

2溶血

溶血对检验结果的影响多是由于红细胞破裂导致红细胞内各种物质释放人血清 (或血浆) 从而影响血清 (或血浆) 中原有各物质的浓度测定[3]。溶血分为体外溶血和体内溶血, 体外溶血可有物理因素 (如机械性破坏、冰冻) 、化学因素 (如血样接触活性剂) 和代谢性因素 (如遗传性疾病引起的血细胞脆性增加) 引起, 体内溶血则可有物理因素 (如人工心脏瓣膜或大血管手术后) 、生物因素 (如疟疾) 和药物毒性反应、配血不合引起的输血反应等因素引起。然而细胞内液中某些物质如LDH、ALT、ALP、AST、K+等的含量是细胞外液中浓度的22～160倍, 只要轻微溶血就会造成检验结果明显的变化, 另外, 血红蛋白可干扰胆固醇的酶法测定, 体外溶血可通过样品制备技术的标准化加以克服, 在采血过程中严格按照操作技术规范执行, 采血器具应保持清洁和干净, 注射器针头不能用酒精消毒, 因酒精可致溶血;止血带不宜扎得过紧过久, 进针出现回血后注射器活塞不宜过快拔出;血液注入试管不宜过快, 以免血泡过多引起血细胞破裂;血液标本采取后尽可能早的使血清自然分离出来, 一般应于采血后室温放置30～60 min内分离血清;标本离心前应自行凝集, 不用器物等剥离血块;标本离心控制在1000～1200 r/min, 离心5～10 min;血液不可存放于冰箱冷冻室, 避免融化后引起溶血;血液放置时间不宜过长, 防止消毒液或其他物质滴入标本;在条件允许的情况下, 溶血标本应要求重新采集, 以便提高检验结果的准确性。另外, 目前各大医院都逐渐应用真空管进行采血, 这也尽可能地减少了标本溶血的机会。

3患者抽血时体位的变化

体位从立位到卧位时, Hb下降4%, HCT下降6%, K+下降1%, Ca下降4%, ALT下降7%, AST下降9%, 碱性磷酸酶下降9%, IgG下降7%, IgA下降7%, IgM下降5%, 三酰甘油 (TG) 下降6%。

4药物

药物或药物的代谢产物可能直接参与生化反应, 或激活或抑制检测反应。如VitC可使血中Cr、UA、GLu等升高;使CH、TG等减低。多糖、高分子类药物还有可能影响到血型鉴定的准确性, 右旋糖苷使血细胞产生假性凝集。

5抽血量不准确

如凝血试验测定, 按要求抗凝剂与血液比例为1:9, 总量为2.0 ml, 但实际工作中, 很多标本不合格, 主要是抗凝剂与血液比例不符合要求, 使结果波动很大。如抽血量多时, APTT结果偏低, 抽血量少时使结果增高。

6标本送检

有些标本采集后应立即送检, 注意防止标本外溢蒸发和污染, 如血气分析等, 取血后应该在30 min内测定[5]。目前最大的问题是GLU, 取血后室温放置, 由于糖酵解作用, 每小时可降低6%～11%。CK、BIL、URO、OB均可因分解或失活而明显降低, 而血清中的K+、Cl-等均可因细胞内外的转移代谢显著增高。有时对不同的测定方法干扰方向可能相反, 如TG抽提法随放置时间结果偏低, 而酶法则增高, 前者因TG分解所致, 后者是由于磷酸分解产生甘油所致。

分析前的质量控制, 不仅是技术问题, 而更多的是管理问题。因此医院应该由质控科带头, 将分析前质量控制纳入到医院整个管理体系之中。医师要明确患者的病理变化、药物、患者的习惯、饮食等对检验结果的影响, 并对结果作出合理解释。护理人员要严格执行标本的采集、保存、运送过程的各项规章制度, 要有高度的责任心, 要在合适时间、合适的部位应用合适的方法对患者负责、对采集的标本负责, 以保证标本的合格。检验人员要严格查对制度, 正确选择合格标本的前期处理工作。在日常生活中, 医、技、护、患间应该互相沟通、互相理解、互通信息、积极配合, 以确保标本合格, 检验结果准确。

参考文献

[1]朱强.临床生化检验的标本采集处理及质量控制.中外医疗, 2008, (13) :147.

[2]沈晓如.血标本放置时间对血液化验结果的影响.中华护理杂志, 2003, 38 (3) :207-208.

[3]张红艳.标本溶血影响检验结果分析.中国现代药物应用, 2009, (05) .

[4]邱谷.临床生化分析过程之外的质量控制.现代检验医学杂志, 2002, 10 (02) :44-45.

检验标本采集的相关注意事项 篇3

【关键词】 处理；采集；标本；临床检验

文章编号：1004-7484（2013）-12-7751-01

把准确可靠的实验结果提供给临床作为诊断依据，这就是临床检验的目的所在。临床医生能否正确的判断疾病和确定治疗方案将直接受到检验结果的正确程度的影响。

1 临床检验标本受采集时间的影响

餐饮前采集：饮食影响某些血液成分的因素较大。晨起空腹采血做血糖效果最好。24小时不能吃高脂肪饮食，并且禁食12小时，头天晚上不许大量饮酒，进行空腹采血，这是血脂化验采血前的要求；48小时不允许饮茶和咖啡，吃水果，尤其是禁止吃茄子和香蕉，并且在抽血前需要静卧1小时，这是儿茶酚胺试验前的要求。病人连续2日不能吃肌酐，而且要求每天摄入少于40g的蛋白质量，不运行吃肉类食物，这是采集内生肌酐清除率标本血样所需要做的准备；吃的食物如果含有较高的蛋白或高核酸，就会增高血液中的尿素或尿酸含量；而营养摄入较少，就会降低血中总胆固醇浓度。在一般情况下往往会根据治疗的需要，随时采集急危重病人的血样，但在做检验结果分析时，需要把饮食影响因素排除。

特定时间采集：晨起首次排出的中段尿，这是尿液标本的要求，因为它具有较稳定的各种成分，较低的pH值，易于对有形成分的完整保持，便于对阳性结果的检出。肥达氏反应凝集素呈现规律性，抽血需5-7日1次，依次增高效价，有利于诊断伤寒。

采集标本最佳时期：在用药以前，采集细菌培养或找病原体的血样是最好的；通常情况下，清晨空腹采集血液生化检查的血样，但有些情况例外；心肌梗死的患者，在发病2-4小时前采集做酶学检查的血样最佳，在这一时间内，CK开始增高。

2 临床检验标本采集方法的影响

2.1 采集尿液标本的要求 清洁干燥是对收集尿标本的容器要求，最好是一次性的。尿标本绝对避免人体其他的排泄物的混入。收集的尿标本，必须及时送检，这是为了防止化学成分分解和细菌作用。如果加入防腐剂，保存效果会更好。采用导尿术，或者患者在清洗外阴后，用灭菌的容器收集中段尿，这是细菌学检查标本的检验要求。

2.2 采集粪便标本的要求 需要新鲜，含有黏液和脓血等，如果在外观上没有异常，则需要进行多处取材，这是粪便检验的要求。盛器必须洁净，最好带有一次性的。采集后的标本需要在1小时内完成各种检查，防止由于PH和消化酶的作用，使有形成分分解。

2.3 采集脑脊液的要求 防止混入和凝固血液，这是脑脊液标本的要求。

2.4 采集浆膜腔积液的要求 当浆膜发生病变时，就会在浆膜腔内积聚增多的浆膜腔积液，称为浆膜腔积液。而为了对浆膜腔积液的性质和病因进行掌握，需要对其进行检测。

3 输液及药物对标本检验结果的影响

患者在输液时不应该取血。葡萄糖氧化酶法测定血糖：病人在把维生素C大量输入后，维生素C和色原物质都会与过氧化氢结合，导致发生抑制反应，降低血糖值；测定结果出现负偏差，也应该考虑到谷胱甘肽和左旋多巴的因素，因为这两个因素具有引发负偏差的功能；如果在病人输液过程中需要进行急救检验，如在输入葡萄糖和氯化钾的状况下，采集血样进行血糖和血钾测量，假性异常就会出现。在测定双缩脲法蛋白质时，右旋糖酐可造成测定管混浊，时结果受到影响。运用碱性苦味酸法肌酐对血中蛋白质和维生素C以及葡萄糖进行测定，则会由于测定的干扰，产生偏高的结果，结果异常的情况，还可考虑磺胺类和庆大霉素以及头孢菌素的因素，因为它们具有引发功能。运用磷钨酸法和尿酸对维生素C和葡萄糖进行测定，会造成假性偏高的结果，而糖皮质激素和双香豆素则会造成假性降低的结果。用尿素酶法尿素氮测定，由于青霉素对尿素酶具有抑制作用，会造成较低的结果，磺胺类则会增高结果。胆红素测定，增高结果的因素包括水杨酸类和红霉素，以及利福平和消炎痛等。在淀粉酶测定中，增高结果的因素包括糖皮质激素町和杜冷丁，以及吗啡和利尿药。

4 检验标本的存放、传送对检验结果的影响

立即送检这是对血标本采集的要求，到如果具有特殊情况，送检不及时，需要4摄氏度冰箱中暂放。标本放置时间太长，会由于放射造影剂和二氧化碳结合力以及γ-GT右旋糖酐的影响作用，造成增高尿比密的结果；久置，会造成释出红细胞内磷酸酯，血清中磷酸酶就会与其进行水解，升高血磷。标本放置时间长了，红细胞内氯、血浆中的二氧化碳就会变化，造成偏高的结果。在室温放置血清，碱性磷酸酶的活性就会出现轻度升高的情况。

5 结 论

综上所述，要对采集及处理标本的各种影响检验结果的因素进行正确认识。检验人员和医护人员以及患者的共同密切配合，是确保规范化采集标本的前提。

参考文献

[1] 张桂婵.药物对临床医学检验结果的影响[J].检验医学与临床，2013（07）.

[2] 任秀慧.临床检验分析前的影响因素与质量控制措施[J].中国保健营养，2012（12）.

[3] 张丛书.临床检验分析前的影响因素和质量控制[J].检验医学与临床，2010（19）.

[4] 侯進军，史文斌.检验科不合格标本拒收原因分析及对策[J].中国厂矿医学，2009（06）.

临床检验标本采集规范 篇4

一

血常规检验标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

二

红细胞沉降率（血沉、ESR）检验标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、黑色帽）。2 注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂:全血=0.4:1.6）。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡。C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

三

凝血检测（PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体）标本 静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L；抗凝剂:全血=0.2:1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽）。注意事项：

A 单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可有凝块。

C 采血后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。D 空腹采血（餐后脂血会影响检验结果）。

四

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K（EDTA-K22H2O）1.5~2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、蓝色帽）采血。

.2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血，便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管（肝素钠、绿色帽）2 注意事项：

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次，不可用强力震荡，以免造成溶血。

六

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿（安静状态下留取清晨第一次尿）。2 门急诊病人可留取随机尿，但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中，不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检（为保证结果准确，必须在2h内完成检测）。

七

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数：甲醛（40%），5ml/L尿液；3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为（5：30-8：30）和（20：00-次日8：00）。B 尿蛋白或尿糖定量：甲苯，5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等：浓盐酸，10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验：试验日正常进餐，上午8点排尿弃去，没隔2h留尿一次，至晚上8点共六次标本；晚8点至次晨8点为夜尿，收集于一个容器中，分别标记时间后送检。

八

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g，必要时可肛试子取出，但需注明。2 样品置于洁净容器中，最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时，应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

九

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量：常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml；细菌学检查用无菌管采集标本，结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检，否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA抗凝，但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查（肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管，操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检，2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验（乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等）和化学发光检验（各种激素、肿瘤标志物等）留取不抗凝血（红色帽、真空负压管），采血量视检查项目多少而定，一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本，应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时，须注明原因，并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理：通常留取晨起第一次尿液，及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检时，标本应置冰箱保存，并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时，应于发病2周左右采集标本；怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下：

A 中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水

冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法：用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中；长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法：膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间：腹泻患者处于急性期，尽量在用药前采集粪便；怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便；怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法：一般患者，取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml，盛无菌容器内送检；难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，可用直肠试子采集标本，再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法：晨痰为佳；先嗽口，清洁牙齿和口腔；再用力咳出呼吸道深部的痰；痰量不得少于1ml；咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将试子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法：由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8~10ml（儿童1~4ml）；骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时，可在48h内分别于下次抗生素使用前，多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml，立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集，标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固，可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法：抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml，置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前，先对病灶周围消毒，然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物：清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物，或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物，置无菌试管中送检。

C 前列腺液：清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中，立即送检。

D 精液：受检者应5天以上未派精，清洗尿道后用手淫或体外排精法，射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物：灭菌生理盐水清洗患处，用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应采集血样送做血培养。

⑿

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集：皮癣者常规消毒皮肤，从皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿中送检；皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织；毛发则采集其根部折断处，至少5~6根送检；指（趾）甲：消毒指（趾）甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5~6片，置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集：

血液：无菌采血8~10ml，注入血培养瓶中，立即送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8h。

脑脊液：采样量不少于3ml，分别注入两支无菌试管中送检（一支做真菌培养和墨汁染色，一支做普通培养）。

呼吸道及泌尿生殖道标本：采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集：严格执行无菌操作，避免标本污染和与空气接触；用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液；抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。

第二章儿科常用检验标本采集技术 篇5

第一节 血标本采集技术

血标本检验是判断体内各种功能及异常变化的最重要指标之一，是临床最常用的检验项目。血标本采集技术是护理人员掌握的基本技术操作之一。本节主要介绍经外周静脉、颈外静脉、股静脉及桡动脉采集血标本的技术。

一、外周静脉采血技术

外周静脉采血技术是指通过外周静脉留取血液标本的方法。本节以蝶翼真空采血针静脉采血法为例。【目的】

1.检查血液中血球、血浆、血型、抗原、抗体及血液中各种化学成分等变化，作为协助疾病诊断、治疗的参考或依据。

2.判定患儿病情进展的程度。

3.检查血清中药物血浓度，作为调整药物剂量的参考。【评估】

1.患儿局部皮肤及血管情况。

2.是否按照要求进行了采血前的准备，如是否空腹等。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：手消毒液、锐器盒、注射盘、无菌棉球、胶贴、污物罐、蝶翼真空采血针（或标准双向针和持针器）、皮肤消毒液、无菌棉签、试管（依检验项目而定）、垫巾和止血带、试管架，见图2-1。

图2-1静脉采血用物

3.环境准备：卧床或座椅和适合台面，良好的采光，适宜的温度，保护隐私的围帘或屏风。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁或将患儿转移至操作台旁。见图2-2。

图2-2 核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释静脉采血的目的及过程，取得配合。

图2-3 辨识患儿

【实施】 1.协助患儿取舒适体位，在穿刺侧肢体下放垫巾、止血带。暴露采血部位：贵要静脉、肘正中静脉或头静脉，选择明显的静脉作为穿刺血管。见图2-4

图2-4 选定穿刺血管

2.使用皮肤消毒液以穿刺点为中心消毒穿刺部位，范围5cmx5cm（新生儿3cm～3cm）。在穿刺点上5cm（新生儿2cm～3cm）左右处扎止血带，嘱患儿握拳，使静脉充盈显露。见图2-5

图2-5 扎止血带

3.打开真空采血针包装袋，取出采血针，针头斜面朝上。见图2-6，绷紧皮肤，呈15度～30度进针穿刺。见图2-7

图2-6 取出采血针 图2-7 进针穿刺

2）静脉穿刺成功后，用胶贴固定蝶翼，采血针一端与真空采血管相连，松开止血带，待管内液面停止变化后，将管退出，换上新的采血管。见图2-8

图2-8连接采血管采血

4.采血完毕，嘱患儿松拳，用无菌棉签或棉球按压穿刺点，拔出针头，嘱患儿或患儿家长行三指按压片刻直至不出血为止。见图2-9

图2-9 按压穿刺点

5.将针头放进锐器盒。血标本置于试管架，待送检。见图2-10。

图2-10 血标本置于试管架 6.再次核对标本信息，确认采血时间。

7.协助患儿取舒适体位，整理床单位。清理用物，洗手。【评价】

1．操作正确，符合“一针、一管、一消毒”。2.患儿痛感小，无不适反应。3.穿刺点按压正确，无出血。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。2.提示患儿、家长注意保持穿刺部位清洁，以免引起局部感染。【注意事项】

1.严禁在静脉输液、输血的一侧手臂采血。

2.使用标准双向针穿刺，当真空采血管插入双向针时，要固定好持针器，防止针头移动而刺破血管壁。

3.同时抽取几个项目的血标本，一般应先注入血培养管，再注入抗凝管，最后注入干燥管。

4.用抗凝管收集血标本后，立即将管子轻轻倒置8次，使血液与抗凝剂充分混匀。

5.注意止血带结扎控制在1分钟内，时间过长可引起误差。

6.留取血培养标本最好在患儿发热期间及抗菌治疗前采血，以正在发冷发热前半个小时或停用抗生素24小时后。皮肤消毒应先用碘酊，再用75%酒精脱碘。

7.儿童血培养留取血量应不少于2ml。向血培养瓶中注入血标本时先用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，用无菌干棉签清除残余液体，之后更换无菌针头，将适量的血液注入培养瓶中，摇匀。采集完成后，送检时间不能超过2小时。如无法及时送检，需室温（20℃～25℃）保存，切忌冷藏。

二、颈外静脉采血技术

此采血技术是通过行颈外静脉穿刺抽取静脉血标本的方法。适用于婴幼儿或肥胖儿童。

【目的】

1.为婴儿诊断、手术前准备、争取抢救时机采集静脉血标本。2.用于经四肢静脉采血困难的婴幼儿。【评估】 1.评估患儿局部皮肤及血管情况。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：锐器盒、洗手液、治疗盘、无菌棉球、胶贴、污物罐、一次性注射器、皮肤消毒液、无菌棉签、一次性垫巾、真空采血管、检验医嘱单、检验单和标签。见图2-11。

图2-11 颈外静脉采血用物

3.环境准备：关闭病室门窗，必要时屏风遮挡，或将患儿携至穿刺室，请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁。见图2-12

图2-12 核对信息

5.辨识患儿，并向患儿家长解释经颈外静脉留取血标本的目的及过程，取得患儿及家长配合。

【实施】 1.协助患儿去枕平卧位，头偏向对侧，肩下垫薄枕，使头低肩高，充分暴露颈外静脉，下方放置垫巾。助手站在患儿头端，双手固定患儿头部，配合程度较差的患儿由另一助手站在患儿足端，用双手、前臂及肘部约束患儿躯干及上肢。见图2-13

图2-13 显露颈外静脉

2.操作者站在患儿头端，选择下颌角和锁骨上缘中点联线上1/3为穿刺点。以穿刺点为中心消毒穿刺部位皮肤，直径5～6cm，待干。

3.助手以手指按在颈静脉三角处，使静脉充盈。操作者取出一次性注射器，左手拇指绷紧穿刺点上方皮肤，右手持针，针头与皮肤呈45°进入皮下，沿血管方向插入静脉，见有暗红色回血后固定，抽取所需血量。

4.以干棉球按压穿刺点，拔出针头，指导助手或患儿家长三指法按压棉球5～10min，直至无出血为止。

5.将血标本注入真空采血管内，注射器按废弃物处理原则处理。血标本置于试管架，待送检。

6.协助患儿取舒适体位，整理床单位。清理用物，洗手。

7.及时送检标本并记录。记录血标本留取时间，如有需要并记录血量、采血部位等。

【评价】

1.患儿穿刺部位按压正确，无出血、血肿。2.患儿生命体征平稳，无不适。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。2.告知患儿、家长保持穿刺部位清洁，以免引起局部感染。【注意事项】

1.穿刺过程中应密切观察患儿面色、呼吸情况，发现异常立即停止穿刺并做相应的处理。

2.操作动作要迅速，以免患儿头部下垂时间太长，影响头部血液回流。3.抽血完毕应压迫穿刺部位，立即扶患儿坐起，减轻头部静脉压，以防出现血肿。

4.穿刺后观察局部有无活动性出血。

5.若抽出血液为鲜红色，回血压力高，则提示刺入动脉，应立即拔出针头，用无菌干棉球紧压穿刺处10～15min，直至无出血为止。

6.按压针眼时切忌一压一松，按压力度要适宜。

三、股静脉采血技术

此采血技术是通过行股静脉穿刺留取静脉血标本的方法，一般用于小婴儿及经外周静脉采血困难的婴幼儿。

【目的】

同颈外静脉采血技术。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿局部皮肤及血管情况。

3.评估患儿及家长的配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备:锐器盒、洗手液、治疗盘、无菌棉球、胶贴、污物罐

一次性注射器、皮肤消毒液、无菌棉签、一次性垫巾、真空采血管、检验医嘱单、检验单和标签。

3.环境准备：关闭病室门窗，必要时屏风遮挡，或将患儿携至穿刺室，请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁。见图2-14。，图2-14 核对信息

5.辨识患儿，向患儿家长解释经股静脉留取血标本的目的及过程，取得患儿家长配合。

【实施】

1.清洁穿刺部位皮肤。脱去患儿裤子，清洁双侧腹股沟区域的皮肤，用尿布包裹好会阴部。

2.协助患儿取仰卧位，垫高穿刺侧臀部，大腿稍外展、外旋，膝关节屈曲为直角（膝盖转向外侧，腘窝向内），呈蛙状，暴露穿刺部位，下方放置垫巾。3.助手站在患儿头端，用双肘及前臂约束患儿躯干及上肢，两手分别固定患儿两腿。

4.操作者站在患儿足端，用左手示指触摸穿刺部位动脉的搏动，确定感觉搏动最明显处为穿刺点。见图2-15

图2-15触摸股动脉搏动

5.以穿刺点为中心消毒穿刺部位皮肤，直径5～6cm，待干。取出一次性注射器，消毒操作者左手示指、中指（或戴无菌手套），在穿刺部位触摸股动脉搏动点后手指固定不动。见图2-16

图2-16 指示股静脉进针点

6.右手持注射器，腕部靠在患儿大腿上作为支点，使针头与皮肤呈直角，自股动脉搏动点内侧0.3～0.5cm处刺入；或在腹股沟下1～3cm处与腿轴平行方向呈45℃斜面刺入皮肤，向股动脉搏动点内侧进针。见图2-17

图2-17 股动脉搏动点内侧进针

7.逐渐向上提针或向后退针，边提针/退针边抽吸，见有暗红色回血后立即停止提针/退针，固定，抽取所需血量。见图2-18。

图2-18 见血固定针 8.以无菌棉球按压穿刺点，拔出针头，三指法按压棉球5min～10min，移开棉球判断无出血后再保持穿刺下肢曲髋位5min。

8.将血液注入真空采血管内，注射器按废弃物处理原则处理。血标本置于试管架，待送检。

9.协助患儿取舒适体位，整理床单位，洗手。

10.及时送检标本并记录。记录血标本留取时间，如有需要并记录血量、采血部位等。

【评价】

1.患儿穿刺部位无出血、血肿。2.患儿生命体征平稳，无不适。【健康教育】

1.指导患儿、家长正确按压穿刺部位，以免造成出血或血肿。

2.告知患儿、家长不要给患儿使用不清洁的尿裤，以免引起穿刺部位的感染。【注意事项】

1.腹股沟有伤口，穿刺处皮肤糜烂或感染时禁止穿刺。有肾病综合征及出血倾向或凝血功能障碍的患儿禁用此穿刺。

2.直刺法要根据脂肪薄厚注意进针的深浅度；斜刺法针头不要刺入太深，以免伤及髋关节或腹腔内组织。穿刺时密切观察患儿的意识、面色、生命体征等变化，如有异常立即停止操作。

3.穿刺后观察局部有无活动性出血，针眼处用无菌棉球覆盖24小时，以防被大小便污染。

4.若抽出血液为鲜红色，回血压力高，则提示刺入股动脉，应立即拔出针头，用无菌干棉球紧压穿刺处10～15min，直至无出血为止。

5.拔针后按压时切忌一压一松，按压力度要适宜，勿造成下肢青紫。

四、桡动脉采血技术

桡动脉采血是通过穿刺桡动脉留取动脉血标本的一种方法。【目的】

1.了解体内酸碱平衡及缺氧程度，以指导治疗。2.用于各种疾病、创伤、手术、呼吸衰竭、心肺复苏后等患儿的监测。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。

2.评估患儿桡动脉局部皮肤及血管情况。

3.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：治疗盘：无菌棉球、胶贴、一次性动脉采血针、皮肤消毒液、棉签、污物罐、检验医嘱单、检验单和标签、锐器盒、手消毒液。见图2-23。

图2-23用物准备

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，携用物至患儿床旁或将患儿转移至操作台旁。见图2-24

图2-24核对信息

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取动脉血标本的目的及过程，取得配合。【实施】 1.协助患儿取舒适姿势，暴露采血部位。在穿刺部位肢体下放置垫巾，患儿手心向上，手腕伸直，触摸动脉搏动最强处为进针点。见图2-25

图2-25 触摸桡动脉搏动

3.取出采血针、针帽备用。

4.以穿刺点为中心消毒穿刺部位，直径5～6cm，消毒操作者左手示指及中指（或戴无菌手套）。见图2-26

图2-26 消毒穿刺部位、操作者手指

5.取动脉采血针，针尖斜面向上，左手示指及中指扪及动脉搏动并固定，右手持针从左手示指及中指之间垂直进针或沿动脉走向与皮肤呈45°进针。针头刺入动脉，血液即可自行进入采血针内。见图2-27

图2-27 取桡动脉血手法

6.取得足够血量后，以干棉球按压穿刺点，迅速拔出针头，使用三指按压穿刺部位5min，直至无出血为止。7.将针头刺入橡皮塞，两手搓动注射器针栓若干下，粘贴标签于采血针上，标本立即送检。见图2-28

图2-28搓动注射器

8.协助患儿取舒适体位，整理床单位及用物。9.洗手，记录采血时间和部位。【评价】

1.采集标本符合检验规定。2.患儿无不适。

3.桡动脉穿刺处无渗血、血肿。【健康教育】

2.指导患儿、家长正确按压穿刺部位。密切观察穿刺处有无渗血、血肿，发现异常及时通知护理人员。

3.使用股动脉采血后，告知患儿家长禁止给患儿使用不清洁的尿裤，以免造成穿刺部位的感染。

【注意事项】

1.采血时，严密隔绝空气，一旦气泡进入血液标本内应立即排除，以免影响结果。

2.采血后立即送检，如不能立即送检，应放置于4℃冰箱内保存，但最长不能超过2h。

3.氧疗患儿在采集动脉血标本后，应在检验申请单上注明吸氧浓度。4.机械通气患儿应记录通气模式、氧浓度、呼吸频率、潮气量等参数。5.凝血功能异常的患儿采血后应延长压迫穿刺部位时间，以防出血。

第二节 其它检验标本采集技术

本节主要介绍痰液标本、尿液标本、粪便标本、咽拭培养标本采集技术。

一、痰液标本采集技术

痰液标本采集是指将患儿的痰液标本收集放入无菌集痰器内进行细菌培养的方法。

【目的】

1.检验痰液性质、颜色、细菌种类等。2.协助诊断疾病，为治疗或用药提供依据。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：痰培养瓶（灭菌集痰器），检验医嘱单，检验单和标签，负压吸引器，一次性吸痰管，漱口液200ml，洗手液。

3.环境准备：关闭门窗，必要时屏风遮挡、请无关人员回避。

4.核对医嘱和检验单信息，根据检验项目选择正确的试管，试管贴标签，携用物至患儿床旁。

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取痰液标本的目的及过程，取得配合。见图2-29。

图2-29 辨识患儿

【实施】 1.收集痰液（1）可自行留痰者

1）清晨醒来未进食前，先用漱口液漱口，再用清水漱口。2）咳痰前先做数次深呼吸，再于呼气时对着痰瓶咳出第一口痰。3）将痰瓶盖好。见图2-30

图2-30 咳痰于培养瓶

（2）患儿无法自咳，或无法合作者 1）协助采取适当卧位，予患儿背部拍击。2）依无菌技术，按吸痰法吸出痰液入无菌集痰器。3）关闭负压吸引器，封闭吸痰管。见图2-31

图2-31吸痰液入无菌集痰器

2.再次核对标本信息，确认采集时间。4.脱手套，洗手，整理床单位及处理用物。

5.及时送检标本，洗手，记录痰标本留取时间痰液的颜色、性质、量等。【评价】

1.痰液标本留取方法正确。2.患儿无不适。【健康教育】

1.教会患儿及家长有效排痰方法。

2.指导痰菌阳性患儿家长正确处理患儿痰液的方法。【注意事项】

1.口鼻腔受损、严重咯血、有严重出血性疾病（如白血病）、进食1小时之内的患儿禁忌进行痰液标本采集。

2.使用负压吸引器留取痰标本时吸取深部痰液，吸痰后视情况予口腔护理。3.痰标本常温2小时内送至检验部门。

二、尿液标本采集技术

尿液标本的采集是指通过集尿袋或其他用具收集尿液标本检验的方法。【目的】

1.检验尿液性质、颜色、气味等。2.明确诊断、协助治疗。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。

3.中段尿标本采集时评估患儿膀胱是否充盈，是否有尿意。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。2.用物准备

（1）常规准备：尿杯，尿管，检验医嘱单，检验单和标签，污物罐，手消毒液。

（2）新生儿及小婴儿需准备：一次性尿袋、清洁手套。（3）中段尿标本采集时需准备：尿液培养管。

（4）特殊留取尿标本：治疗盘，无菌棉球，镊子，0.3%醋酸氯已氨（洗必泰），75%酒精，无菌手套，弯盘，无菌容器，10ml注射器，一次性导尿管，温水（41～43℃），小橡胶中单或一次性尿垫。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，尿管贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-32

图2-32 留尿标本用物

5.辨识患儿，并向患儿和家长解释留取尿液标本的目的及过程，取得配合。见图2-33。

图2-33 辨识患儿

【实施】

1..协助患儿留取尿标本。2..戴手套，收集尿检验标本。（1）常规检查

1）婴幼儿或排尿不能自理者：使用一次性尿袋，清洁患儿会阴部，撕去塑料袋上的不干胶纸，将圆孔对准会阴部贴紧以免尿液漏出，塑料袋放平，勿折叠，松穿尿布。有尿后，先取下塑料袋置于尿杯中，放一旁。清洁患儿会阴部及臀部，为患儿穿好尿裤，整理衣物及床单位，然后将适量尿液置入试管。

2）年长儿 ①可下床活动者，给予尿杯，到厕所排尿，留取中段尿液，约尿杯的1/3量。

②患儿若行动不便，给予遮挡，协助在床上使用便盆或尿壶，并留取足量尿液于试管中。

③若为留置导尿的患儿，先放空集尿袋，再以管夹夹住尿管约15min～30min后，安尔碘消毒尿袋出口处2次，松开夹子留尿于试管内。

3.再次核对标本信息，确认采集时间。4.脱手套，洗手，整理患儿床单位及处理用物。

5.尿管放置于试管架内，见图2-34，并及时送检尿标本，洗手，记录留取尿标本时间尿液颜色、性质、气味等。

图2-34尿标本放置于试管架 【评价】

1.所采集标本符合检验规定。2.患儿无不适。

3.留置导尿管收集尿液时方法正确，符合无菌操作原则。【健康教育】

1.指导患儿、家长留置导尿管期间，注意会阴部的清洁，防止泌尿系感染。2.指导患儿、家长发现尿液异常及时通知医护人员。【注意事项】

1.婴幼儿或排尿不能自理者使用一次性尿袋时要经常巡视，观察有无尿液。收集过程中应避免粪便污染。2.尿常规标本留尿后2小时内送检，不能立即送检的标本应放在2℃～8℃冰箱保存，但不得超过6小时：其他尿标本，留取后当天送检。

3.尿常规标本不少于5ml，对于留尿困难的患儿不少于3ml，生化项目标本不少于2ml；晨尿为浓缩尿，细胞和管型型态完整，较适合住院患儿和肾脏科患儿的动态观察。

三、粪便标本采集技术

粪便标本采集是指采集患儿一定量的粪便入标本盒内，用于检验粪便性质、颜色、混合物的方法。

【目的】

1.检验粪便性质、颜色、混合物、寄生虫卵、致病菌等。2.协助诊断。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：标本容器（视需要而定）、检验医嘱单、检验单和标签、棉签、清洁便盆、清洁手套、污物罐、手消毒液。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，便盒贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-35。

图2-35 核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释留取粪便标本的目的及过程，取得配合。见图2-36。

图2-36辨识患儿

【实施】

1.戴手套，采集标本。

（1）粪常规检查：取少量新鲜粪便标本3g～5g(蚕豆大小)放于塑料容器内加盖。（2）粪便培养

1）自然排便采集标本时，取有脓血、黏液、组织碎片部分的粪便花生米大小量，直接装入运送培养基中送检。

2）液体粪便则取絮状物，一般取1ml～3ml，直接装入运送培养基中送检。3）直肠拭子采集粪便标本：以肥皂、水和75%酒精将肛门周围洗净，用经无菌氯化钠湿润的棉拭子插入肛门超越肛门括约肌2 cm～3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉拭子置入运送培养基中送检。（3）寄生虫检查

1）寄生虫卵检查：采取不同部位的标本，尽量采血及黏液部分。2）阿米巴原虫检查：用温便盆给患儿留取粪便标本，连同便盆及时送检。（4）隐血标本：使用清洁容器同粪常规留取法留取标本。2.再次核对标本信息，确认采集时间。

3.脱手套，洗手，协助患儿取舒适体位，整理床单位及处理用物。4.及时送检标本，洗手，记录粪便标本留取时间，粪便性状、颜色、气味等。

【评价】

1．所采集标本符合检验规定。2．患儿无不适。

3．直肠拭子采集粪便标本时方法正确，深度适宜。【健康教育】

1．指导腹泻患儿、家长正确进行肛周皮肤护理。2．指导患儿、家长发现大便异常及时通知医护人员。

3.对于粪便隐血检查的患儿，嘱患儿检查前3天禁食肉类，动物肝脏，大量叶绿素等食物及含铁剂药物。

【注意事项】

1.粪常规标本采集时如腹泻者应采取脓血或黏液部分，如为水样便应盛于容器中送检。标本应避免混有尿液、消毒液及污水等各种物质，以免破坏有形成分。

2.服驱虫药或做血吸虫卵变化检查，应留取全部粪便，及时送检。3.阿米巴原虫在低温下失去活动力，不易查到，因此收集前应事先与检验室联络，将粪便盆用热水加温。

4.一般粪便标本应在留取2小时内送检，检查溶组织阿米巴病原体标本应立即保温送检。粪便培养标本及直肠拭子室温1小时内送检。高度怀疑霍乱弧菌感染的标本室温1小时内送检，送检必须符合特殊标本的安全要求。

四、咽拭培养标本采集技术

咽拭培养标本采集是用无菌长棉签采取双侧咽扁桃体及咽后壁分泌物，插入培养管内进行培养的方法。

【目的】

1.由咽部或扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离。2.协助诊断或治疗。【评估】

1.评估患儿病情、年龄等。2.评估患儿配合程度。【计划】

1.护士准备：着装整洁，洗手，戴口罩。

2.用物准备：咽拭培养管，检验医嘱单，检验单和标签，压舌板，手电筒，温开水，清洁手套，手消毒液。

3.环境准备：关闭门窗，调室温，必要时屏风遮挡，请无关人员回避。4.核对医嘱和检验单信息，试管贴标签，携用物至患儿床旁。见图2-37。

图2-37核对信息

5.辨识患儿，向患儿和家长解释留取咽拭培养标本的目的及过程，取得同意和配合。见图2-38。

图2-38辨识患儿

【实施】

1.留取标本 指导患儿用温开水反复漱口，并嘱咐患儿张嘴发“啊”的音(如小婴儿或不配合的患儿，操作者可用左手用压舌板压住患儿舌头)，右手以无菌长棉签采取双侧咽扁桃体及咽后壁分泌物，插入培养管内。见图2-39。

图2-39 采咽拭培养

3.再次核对标本信息，确认采集时间。

4.脱手套，洗手，协助患儿取舒适体位，整理床单位及处理用物。5.及时送检标本，洗手记录咽拭标本留取时间，分泌物的颜色、性质等。【评价】

1.患儿无不适主诉。

2.采集标本时方法正确，深度适宜。【健康教育】

1.指导患儿、家长行咽拭培养标本采集后多饮水，忌食辛辣刺激食物，注意休息。

2.遇流行性疾病爆发时指导患儿、家长有效隔离，降低感染风险。【注意事项】

1.咽拭培养不能用于会厌发炎的患儿。

2.无菌长棉签避免碰到口腔其他部位及试管外口，必要时由助手协助持手电筒，尽可能地增加采集量。

3.正确盖好咽拭培养管，防止泄漏或容器外部留有残留物。4.咽拭培养标本常温2小时内送检。

第三节

儿科常见标本采集的护理配合

本节主要介绍骨髓标本采集及脑脊液标本采集的护理配合。

一、骨髓标本采集的护理配合

骨髓是人体的造血组织，位于身体的许多骨骼内。骨髓标本的采集是通过骨髓穿刺来采取骨髓液的方法，需要医护配合完成。【目的】

1.观察骨髓内细胞形态及分类，以协助各种血液病的诊断、鉴别诊断及治疗随访。

2.发热、怀疑败血症或某些传染病的诊断与鉴别诊断，可作骨髓培养，骨髓涂片找寄生虫等。

3.通过治疗后采集的骨髓，观察某些疾病的疗效。【评估】

1.评估患儿的意识状态及合作能力。

2.评估穿刺部位皮肤有无破溃、瘢痕、硬结。3.评估病室环境是否安全、安静。【计划】

1.护士准备：衣帽整洁，洗手,戴口罩。

2.用物准备：根据小儿的年龄，备齐物品：清洁盘、骨髓穿刺包、2%碘酒和75%酒精、5ml和10ml灭菌注射器、无菌手套、2%普鲁卡因、清洁干燥玻片、推片，如做骨髓培养，另需20ml灭菌注射器、含培养基的细菌培养瓶、酒精灯、火柴。见图2—40.图2—40用物准备

3.环境准备：关闭门窗，调节室温22℃—24℃，明亮、安静、清洁，通知无关人员不要随意进入。

4.核对医嘱，携用物至治疗室。

5.辨识患儿，向患儿及家长解释骨髓穿刺的目的及过程，取得同意和配合。

【实施】 1.协助患者摆好体位，选择穿刺部位，用记号笔在皮肤表面做好记号，常用部位是髂后上棘。见图2—41。

图2—41 标记骨穿部位

2.常规消毒皮肤，戴无菌手套、铺消毒洞巾，用注射器抽吸2%普鲁卡因,由医生作局部麻醉直至骨膜。见图2—42

图2—42配合取出注射器

3．穿刺中，密切观察患儿的生命体征，并询问有无不适主诉。4.协助留取骨髓涂片、送检。见图2—43。

图2—43 骨髓涂片 5.术毕拔除针头，局部按压无菌敷料覆盖。见图2—44

图2—44覆盖、按压

6.协助患儿恢复舒适体位，记录患儿生命体征及伤口情况。【评价】 1.穿刺点无菌敷料无渗血、渗液。2.患儿伤口无疼痛。【健康教育】

1.告知患儿术后卧床休息20～30分钟，3天内勿洗浴，保持穿刺点部位清洁、干燥。

2.告知患儿穿刺点避免挤压。3.告知患儿注意保暖，避免受凉 【注意事项】

1.血友病患儿禁行骨穿。

2.穿刺点应避开局部有炎症或畸形的部位。

3.穿刺点无菌敷料如有污染、潮湿应立即换药，穿刺点结痂后可去除敷料。

二．脑脊液标本采集的护理配合

脑脊液标本采集是通过腰椎间隙穿刺抽取脑脊液的方法，是儿科临床常用的检查方法之一，对神经系统疾病的诊断和治疗有重要价值。【目的】

测定脑脊液压力，动力学检查及脑脊液常规、生化、细胞学、免疫学和细菌学等检查。【评估】

1.评估患儿病情、年龄。

2.评估患儿准备穿刺的局部皮肤有无炎症、皮下感染灶

3、评估患儿意识状态及合作能力。3.评估环境是否安全、安静，急救器材、药品是否到位。【计划】

1.护士准备：衣帽整洁，洗手,戴口罩。

2.用物准备 根据患儿的年龄、穿刺的目的，治疗盘内备：2%碘酒、75%酒精、无菌棉球、纱布、1%～2%普鲁卡因、5ml和10ml灭菌注射器、无菌腰椎穿刺包、测压管、无菌手套、贴膜、火柴、清洁试管，需培养时备培养管、酒精灯。见图2—45

图2—45用物准备

2.环境准备：室温调节至22℃—24℃，光线明亮、清洁、安静，摆放物品于恰当的位置。

4.核对医嘱。

5.辨识患儿，向患儿及家属解释腰椎穿刺的目的及过程，取得同意 【实施】

1.协助患儿弯腰取侧卧位，并靠近医生一侧的床沿，双手抱膝，双膝向胸部屈曲，头向前屈，抱成弓形，脊柱与床面保持平行，骨盆与床面要保 持垂直，以增大腰椎间隙利于穿刺。见图2—46。

图2—46 摆放腰穿体位

2.以骼后上棘连线与后正中线的交会处为穿刺点，一般取第3～4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。

3.协助医师常规消毒皮肤，戴无菌手套、铺消毒洞巾，局部麻醉。4.穿刺中，密切观察患儿的生命体征，并询问有无不适主诉。

5.协助测量压力数值。收集脑脊液2ml～5ml送检；如作培养时，无菌操作法留标本。

6.术毕拔除针头，局部按压、无菌敷料覆盖。7.以平车送患儿回病房, 保持平卧位休息。

8.整理物品,记录标本留取的时间，穿刺点局部情况及患儿主诉。【评价】

1.穿刺点无菌敷料无渗血、渗液。2.患儿伤口无疼痛。【健康教育】

1.告知患儿和家长术后平卧4小时～6小时，以免引起术后低颅压头痛。2.指导家长观察穿刺点有无渗血、渗液，敷料情况，发现异常，告知医护人员。

【注意事项】

1.严格无菌操作，术后如果出现头痛且有体温升高者，应排除脑膜炎发生。2.放脑脊液时勿过快，防止脑疝。

血常规标本采集方法及注意事项 篇6

一、方法：

1、患者坐位或卧位，消毒穿刺皮肤后，扎上压脉带，嘱患者握紧拳头，暴露静脉。操作者以左手拇指固定静脉穿刺部位的下端，右手持注射器，针头斜面和针筒刻度向上，先以约与皮肤呈30度角的位臵迅速刺破皮肤，然后适当降低角度穿破静脉壁进入静脉腔中，见回血后，解开压脉带，将针头顺势深入少许，以免采血时针头滑出，但不可用力深刺，以免穿破静脉造成血肿。用右手手指将针头固定，左手缓缓抽动注射器内芯至所需血量，嘱患者松拳，用无菌干棉球压住伤口，拔出针头。取下针头后，将血液沿试管壁缓缓注入事先准备好的抗凝管中，轻轻混匀防止凝固。

2、真空采血法，又称负压采血法，其优点为：封闭式运转方便；能完好保持血标本的原始形状；可避免对医护人员的感染和病人血标本间的交叉感染；可减少溶血现象；采血量准确。

二、注意事项：

1、如患者进针时或采血后发生眩晕，应立即拔出针头，让其平卧休息，必要时可给患者嗅吸芳香氨酊、针刺（或拇指压掐）人中和合谷、静脉注射葡萄糖或口服糖水。如有其他情况，应立即找医生共同处理。

2、防止标本溶血，造成溶血的原因有：压脉带使用时间太长，淤血过久；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头；用力推出产生大量气泡；混匀时用力振荡等。

3、避免淤血和浓缩：压脉带压迫时间最好不超过1分钟。

4、抽血时只能向外抽，不能像静脉内推，避免空气注入形成气栓，造成严重后果。

5、抗凝管选择：血液分析应选择紫色抗凝管（如图），采血量应与抗凝管上的标识采血量一致，过多或过少血量将导致血液分析参数不准确。

6、充分混匀避免凝块产生：正确方法是血液注入抗凝管后立即轻轻颠倒混匀1分钟左右，混匀不充分将导致血液凝固或产生微小凝块，无法进行血液分析。

7、及时贴试管标签：混匀后将试管上的双联试管标签撕下一张贴到化验单右上角，防止标本混淆，（错误做法：将化验单号贴到试管上，会损害血液分析仪进样部件）。

检验标本采集的相关注意事项 篇7

1 标本采集前

1.1 标本采集人员的准备

标本采集人员要了解检验目的、对标本及病人的要求;了解影响检验结果的因素, 如采样量不足或错误、溶血、抗凝标本出现凝固、脂血、标本污染 (多指做细菌培养的标本) 、申请单与标本标签不一致、容器破损等, 应尽量避免不当操作。

1.2 病人准备

1.2.1 饮食与空腹

大多数检验, 尤其是血液生化检验, 饮食及其结构对检验结果有一定影响。常规住院病人静脉血标本应在晨间起床前抽取。采血前应空腹12 h以上。据报道[2], 标准餐后甘油三酯增加50%, 天门冬氨酸氨基转移酶增加20%, 胆红素、无机磷、钙、钠和胆固醇增加5%左右。饮食结构不同, 血液生化检验结果也不同, 如高脂饮食后即使空腹12 h以上, 也会对甘油三酯有很大影响, 有的甚至可达正常状态的10倍;同时, 高蛋白饮食会使氮、尿酸和尿素值大幅升高;饮酒可使甘油三酯、高密度脂蛋白、胆固醇升高[3]。减少这一因素影响最有效的办法是空腹采血, 但是并非空腹时间越长越好, 空腹时间过长, 病人处于饥饿状态过久, 会使血糖、蛋白质降低, 胆红素升高。

1.2.2 情绪与运动

人在精神紧张时肾上腺素分泌增加, 血清胆固醇、血糖、红细胞等都会增高。在恐惧、发怒、疼痛的刺激与应激状态下, 血中的儿茶酚胺均显著上升[4]。运动可以加速血液循环, 使体液分布发生改变;同时由于出汗和呼吸加快也会导致体液的分布发生改变。因为剧烈运动后血糖、钾、钠、钙、白蛋白、尿酸、尿素、胆红素、无机磷等值均升高1倍以上。因此, 标本采集前应避免剧烈运动和情绪紧张, 待病人情绪稳定, 休息30min后再采集为宜。

1.2.3 选择合适的容器

标本采集前, 根据检验目的选择合适的容器, 并标明病人姓名、科室、床号、住院号。采血用试管分普通管、抗凝管两大类。抗凝管又根据管内抗凝剂的不同分为草酸钾管、草酸钠管、枸橼酸钠管、乙二胺四乙酸二钾盐或二钠盐 (EDTA-K2或DETA-Na2) 管和肝素管等。现在大多医院使用的是真空采血管, 抗凝剂的用量与采集血液量都有严格要求。如血常规, 采血量过少, 则EDTA浓度过高, 可导致中性粒细胞肿胀, 分叶核消失, 使血细胞自动分析仪产生分类计数误差;血量过多则达不到很好的抗凝效果, 产生凝集。凝血功能检查时要求血液与枸橼酸钠严格按9∶1的比例抽取。在血培养时, 采血量的多少直接关系到培养阳性率的高低, 一般应在5～10ml。一次采集几个标本应按以下顺序:血培养瓶—无添加剂管 (红色) —含枸橼酸盐管 (蓝色) —含肝素管 (绿色) —含EDTA管 (紫色) —含氟化钠管 (灰色) —含双草酸盐管 (黑色) 。

2 标本采集

2.1 采集时间

理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00, 血培养标本应在发热初期或发热高峰期采集。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血, 对已用药而不能终止的病人, 也应在下次用药之前采血。复检标本采集时间应尽量与上次采集时间相同。采血时间应尽量标准化及规范化, 一般而言, 肌内注射、静脉内给药、口服给药分别在给药后1～2h、15～30min、1～5h内采血, 压脉带捆扎时间不应超过1min, 否则会使血凝成分发生改变。

2.2 血液检验标本采集

(1) 采血部位通常选择无名指、肘前静脉, 婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。凡用血量较少的检查, 一般从手指取血, 成人以左手无名指为宜, 婴儿可从拇指或足跟部采血, 一般不主张采用耳垂血, 因为耳垂部的毛细血管循环较手指差, 受外界气温影响较大, 采血条件不及手指恒定, 且其白细胞、红细胞、血红蛋白含量等数值均高于手指血及静脉血。禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。 (2) 采血量视检查项目多少而定, 通常为4.0～5.0ml。 (3) 如果检测项目不是很多, 生化和免疫也可以采用同一管血。 (4) 多项检测同时采血时应按下列顺序采血:血培养管—无添加剂管—凝血管—有添加剂管 (顺序为:橼酸盐管、肝素管、EDTA管、草酸盐/氟化钠管) 。 (5) 不论是抗凝血还是非抗凝血, 为了缩短血清或血浆与血细胞的接触时间, 避免因此影响结果的准确性, 在血液标本收集后, 必须尽可能早地将血清或血浆从全血中分离出来。血标本采集后应尽快送检, 最好不超过2h。血沉应于2h内测定完毕, 否则血沉减慢。心肌损伤标志物检验要求总周转时间小于1h。血气分析、细菌培养标本等应该在30min内测定。血糖测定应于半小时内送检, 因为采血后室温放置, 由于糖酵解作用, 每小时血糖可降低0.05mmol/L, 夏季采血后血糖将以每小时7%～10%的速度分解, 标本留置时间过久易影响血糖检验结果[5]。运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染 (标本管要有盖) , 有特殊要求的标本要按特殊要求运送 (如血气分析标本应严格密封, 与外界空气隔绝;测定维生素A、胆红素等标本, 应避免暴露于光线下, 用黑纸或铝箔保护标本) 。

3 实验室接受标本后的注意事项

3.1 操作规范

在采集静脉血时, 要根椐检验项目选择相应的抗凝管, 操作时不可用力振摇, 以免造成标本溶血;不需抗凝血液标本注入清洁的试管内, 不可摇荡, 使其自然凝固;采末梢血时, 不能挤压, 严防组织液混入, 刚抽出的血液要稳定一会儿再做, 一般15～30 min后做结果较稳定[6]。采血管放置:应管口 (盖管塞) 向上, 保持垂直立位放置, 采血管必须封口 (管塞移去后会使血pH改变, 影响结果, 使pH、Ca2+增高, 酸性磷酸酶减低) ;封口可以避免污染、蒸发、喷溅和溢出等。

3.2 血标本储存

采血后应立即送检, 在尽可能短的时间内测定, 如需存放, 应置于4℃冰箱内, 放置时间不超过1h, 存放时间过长会造成pH下降, 如在37℃时每10min下降0.01, 25℃时每10min下降0.005, 4℃环境中, 在1小时内变化不大。

3.3 保留标本

保留病人标本以备检查是国际惯例, 是实验室对标本负责的具体表现, 也是解决医患纠纷有效的自我保护措施。如有对生物化学及临床检测报告提出异议时, 可随时进行重复检验。某些特殊标本可在冰冻状态下长期保存。

影响检验结果的因素是多方面的, 标本采集过程以及采集标本时病人生理、病理状态及使用的药物均会影响结果的准确性。为此, 检验科在检验报告单上应用醍目字体提示:“此结果只对所检测样本负责, 如有疑问, 请在报告发出24 h内与本科室联系。”

参考文献

[1]熊立凡, 刘成玉.临床检验基础[M].第4版.北京:人民卫生出版社, 2008.

[2]丛玉隆.临床实验室分析前质量管理及对策[J].中华医学检验杂志, 2004, 27 (8) :483~487.

[3]马斌国.现代临床检验质量保证[M].太原:山西科学技术出版社, 2001.

[4]廖远泉, 张玉华, 廖晖晖, 等.标本留取在临床化学试验前质量保证中的影响因素[J].临床输血与检验, 2002, 4 (4) :71.

[5]朱媛媛.加强医院临床科室与实验室之间信息交流, 保证分析前质量[J].临床检验及实验室设备, 2007, 9 (2) :41~42.

检验标本采集的相关注意事项 篇8

关键词：血液标本；生化检验 ；标本采集时机；标本溶血 ； 影响

【中图分类号】R331.1 【文献标识码】A 【文章编号】1672-8602（2015）06-0450-02

在临床检验工作中，利用交叉配血、血液培养、生化检验以及常规检查的呢过手段将采集到的血液标本在临床诊断以及治疗工作中予以充分利用，目前血液检验已经成为对治疗方案进行完善，为快速诊断提供可靠参考依据的主要措施[1]。然而在检验工作中我们发现，血液标本的采集时机、采集方式、标本溶血以及送检时间等因素均会对血液标本生化检验结果产生一定程度的影响，进而影响到生化检验结果的准确性，最终影响诊断和治疗[2]。本次研究中出于对血液标本采集对生化检验结果的影响进行分析探讨，为今后的临床检验工作提供可靠的参考依据的目的，对我院收集到的320份不同采血时机、溶血标本以及送检时间的血液标本的生化检验结果进行了统计分析，现汇报结果如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料

研究中资料来源于我院收治的临床患者血液标本，抽取其中的320份作为研究对象，包括有男176份，女144份，年龄18-72岁，平均（35.8±14.3）岁。所有受试者均自愿接受临床检查，并签署了知情同意书。

1.2 方法

1.2.1 研究方法

将上述统计的血液标本320份进行生化检验，并对不同血液标本的采集时间、溶血标本、标本送检时间等对生化检验结果的影响进行统计分析。

1.2.2 检验方法

所需仪器为我院现有全自动生化分析仪，本组320份受检标本中，按照采血时机、溶血标本以及送检时间分成：晨起空腹静脉采血组和其他时间采血组，各含有标本160份；在160份晨起空腹静脉血中分别包含溶血标本组和非溶血标本组，每组80份；80份晨起空腹静脉血标本中包括有常规送检标本和1小时后送检标本，每组40份。

1.3 数据处理

研究中相关计量资料采用均数加减标准差（ ±s）形式表示，对比中采取t检验，计数资料的对比则是采取Χ2检验，在P<0.05时，视为差异存在统计学意义。

2 结果

2.1 不同采血时机对生化检验结果的影响

经统计发现，晨起空腹血标本生化检验结果较其他时间段的检验结果均发生显著升高（P<0.05）。但是，随着采集时患者空腹时间的眼馋，采集对象会出现低血糖状态，空腹时间超过24小时，则会使检验结果发生异常。

2.2 标本溶血对生化检验结果的影响

经统计发现，溶血标本的生化检验结果与正常标本比较存在显著差异（P<0.05），详见表1。

2.3 标本不同送检时间对生化检验结果的影响

经统计发现，标本采集后1小時后送检与规范送检标本的生化检验结果存在明显差异（P<0.05）。详见表2。

3 讨论

目前临床上生化检验已经成为临床疾病诊断和治疗的一种常规检查手段，因此生化检验结果的准确性将会对医生判断产生直接的影响，若是生化检验结果出现问题，则很容易导致误诊、漏诊等现象发生，甚至会延误治疗时机[3]。因此保证生化检验结果的准确性意义重大。血液标本生化检验的过程中存在诸多危险因素。曾有研究指出[4]，血液标本采集时机、采血部位、送检时间以及标本质量等均会生化检验结果产生一定程度的影响。本次研究中出于对血液标本采集对生化检验结果的影响进行分析探讨，为今后的临床检验工作提供可靠的参考依据的目的，对我院收集到的320份不同采血时机、溶血标本以及送检时间的血液标本的生化检验结果进行了统计分析，结果发现，晨起空腹血标本生化检验结果较其他时间段的检验结果均发生显著升高；溶血标本的生化检验结果与正常标本比较存在明显差异；标本采集后1小时后送检与规范送检标本的生化检验结果存在明显差异。这一结果与相关文献[5-6]报道结果相似，由此证实血液标本的采集时机、标本溶血以及送检时间的差异均会对生化检验结果产生影响，在今后的临床检验工作中应对其给予足够的重视。

参考文献

[1] 龚建武.血液标本采集对生化检验结果的影响研究[J].现代中西医结合杂志，2011，（04）：177-180.

[2] 赵阳松. 浅议如何规范血液标本的采集[J].吉林医学，2009，（10）：147-1451.

[3] 王勇，叶路.血液标本检验前应注意的几个问题[J].检验医学与临床，2010，（19）：177-179.

[4] 郑剑.血液标本采集对生化检验结果的影响探讨[J].中外医疗，2011，（02）：163-166.

[5] 廖远泉，张玉华，廖晖晖，等.标本留取在临床化学试验前质量保证中的影响因素[J].临床输血与检验，2010，4（04）：71.