性控奶牛（通用6篇）
性控奶牛 篇1
奶牛养殖技术日新月异,性控精液是继性控胚胎后的一项最新技术,同时也是奶牛繁育史上的一次革命,大大加快了良种奶牛的培育步伐。在短时间内较快的提高了奶牛的繁殖率,而且性控精液配种情期受胎率较高,生产成本低,授配技术易掌握,便于推广应用于奶牛生产,是提高奶牛情期受胎率的有效方式。
1 性控精液各项技术指标
国内外生产的性控精液均为0.25/im细管精液,母犊率指标均在90%以上。具体指标如下:
(1)精子数量:每支含有有效精子220万～240万以上。
(2)精子活力:0.4～0.5以上。
(3)产母犊率:90%以上。
(4)情期受胎率:50%以上。
(5)顶体完整率:合格。
(6)精子畸形率:合格(0.1%)。
2 性控精液品种及遗传品质
2.1 种公牛选择技术
性控精液供精公牛必须为线性测定的验证公牛,后裔测定成绩为:
(1)乳脂率、乳蛋白等乳成份改良效果明显者。
(2)体型无明显缺陷。
(3)公牛女儿产奶量1万千克以上。
(4)后裔测定可靠性≥95%,乳房改良效果好。
2.2 母牛要求
基础母牛的选择采取如下技术手段:①采用奶牛选种选配手段;②要求有完整的系谱档案;③择选生殖系统良好的15～18月龄体重达到380kg以上的青年育成牛,或者是产后60～80天生殖道恢复良好的无产科疾病的经产母牛。
2.3 选种选配技术
在高产奶牛群采用同质选配,加强优势性状的遗传进展中产奶牛群采用异质选配,改良缺陷性状,提高群体遗传水平。
3 性控精液授配技术指标要求
性控精液授配技术指标具体包括:
(1)情期受胎率必须达到50%以上。
(2)母犊率必须到达90%以上。
(3)犊牛繁殖成活率必须达到95%以上。
4 性控精液授配母牛技术要求
采用性控精液授配母牛要求以14～16月龄育成牛为主,也可选择部分一胎和二胎牛产后无产科疾病、发情正常、卵巢发育较好的繁殖母牛。
(1)育成牛要求年龄15～18月龄,体重380kg以上,体高1.25米以上。
(2)育成牛体成熟后,必须达到性成熟,自然发情第二个情期进行配种。如果采用人工催情本情期不可采用性控精液。
(3)产后牛要求产完犊后首先饮麸皮红糖水,每隔日灌服一剂益木生化散300～500g连用3次,10天后子宫灌注0.5g土霉素5支,加入500m10.9%的生理盐水中,一次投入子宫,隔日一次,连用2～3次。促使子宫复旧。50天后发情时,根据子宫恢复情况及卵泡发育情况进行性控精液配种。
(4)经产母牛发情时发情鉴定子宫复旧不完全,或者产科有疾病均不能采用性控精液配种。
(5)正常的经产母牛可在发情后12～18小时内子宫灌注400万青霉素1支,100万链霉素2支,0.9%生理盐水20ml,待接近排卵时进行人工授精。
(6)性控精液授配母牛最好是育成牛或一胎和二胎产后无产科疾病卵泡发育正常的繁殖母牛。但用性控精液只能配1～2个情期,然后返情牛一律采用普通精液配种,以免影响总受胎率和胎间距。
5 性控精液授配母牛发情鉴定要求
性控精液在生产过程中因通过XY精子分离和精选,由此延长了生产时间,增加了能量消耗,之所以解冻后及输精后在母牛子宫内有效时间较普通精液短一些,加上每头份精液中的直线运动有效精子含量少于普通精液,所以要求发情鉴定要准确无误,特别要求以卵泡发育情况决定输精时间,具体要求包括:
(1)母牛发情后12小时直肠检查一次,主要检查卵巢、子宫、输卵管有无产科疾病,生殖器官是否发育正常。同时确定双侧卵巢是否有黄体消失,或者是否有卵泡出现。
(2)母牛发情外部结束以后再进行第二次直肠检查,确定卵泡发育阶段,安排第三次直检时间。
(3)在母牛发情外部表现结束后6～5小时,或者发情开始后20～24小时,再进行第三次直肠检查,卵泡是否发育成熟,最后确定输精时间。
6 性控精液解冻方法
采用38～40℃温水快速解冻,具体操作方法是:从液氮罐中快速取出精液,轻轻甩一下细管上的液氮残留,快速投入准备好的38～40℃温水中,待全部解冻后取出擦干上面水珠,双手轻轻搓一搓起到一个调节温度作用,然后装在消毒后的输精枪上准备输精。
7 性控精液的输精方法
(1)性控精液同普通精液输精方法一致,要求必须规范操作,首先要严格输精器械及手臂的消毒,输精枪每牛一支,不能连续使用,并对授配母牛外阴部进行采用0.2%高锰酸钾水清洗消毒,然后用一次性纸巾擦干后进行输精,输精部位要求输在子宫颈内口。
(2)输精时间要求在卵泡发育成熟,排卵前4～6小时或者在排卵后2～4小时输精,同时在输精时没有卵泡的母牛输精后肌肉注射0.2mg促排卵3号3支,注射用水10ml,一次肌注,促使排卵。
(3)为了提高性控精液情期受胎率,可在每次输精后给授配母牛肌肉注射黄体酮2m1*5支,或者人用VE1ml*10支。
(4)输精部位要求配种员技术熟练者可在发育卵泡侧子宫角输精,能提高受胎率,如果配种员技术不太过硬,要求子宫颈内口输精,防止万一播错部位(左侧排卵输入右侧)会降低情期受胎率。
8 妊娠鉴定
妊娠鉴定以直肠检查为主,育成牛50天,产后牛60天作第一次妊娠检查,如未配定牛及时采用催情方法进行补配。70天后作第二次妊娠检查定胎,同时有条件的牛场可用B超鉴定妊娠及性别。
奶牛性控繁育技术的关键环节 篇2
1 母牛的选择
选择中、高产奶牛品种及其后代作为使用对象;年龄和胎次首选初配母牛和生产三胎以内的母牛;体型要选择膘情适中、健康无病的母牛。
2 性控冻精的保存与运输
性控冻精一般保存在液氮中, 要用专门的液氮储存罐存储。根据液氮罐的性能要求定期添加液氮, 当液氮减少2/3时, 需及时补充;罐内盛装冻精的提筒不能曝露在液氮外, 可将提筒置于罐颈下部;将冻精向另一容器转移时, 动作要迅速。液氮罐在使用中要防止撞击、倾倒, 并定期刷洗保养。
3 配种时间的准确判断
在实际配种过程中, 配种人员要将直肠检查卵泡和外部症状观测结合起来判断配种时间, 以直肠检查为主, 外部症状判断为辅。
3.1 从外部症状判断配种时间
一般是在发情结束后10~12 h进行配种, 即奶牛接受爬跨后10~12 h。此时奶牛表现安静, 外阴肿胀开始消失, 阴门流出半透明的牵缕性黏液。
3.2 直肠检查判断配种时间
实际配种中, 奶牛的外部表现和卵巢上卵泡的发育程度是一致的, 最适合配种的时期是发情后期, 通过直肠检查发现如下症状时应立即输精:卵泡膜变薄, 且表面光滑;卵泡波动感明显, 有一触即破的感觉;子宫兴奋性明显降低, 已感觉不到发情旺期时子宫受到刺激后的充实感和弹性感。
4 输精前的准备
4.1 器械准备
母牛经发情鉴定后, 确认已经到了输精时间, 即可牵入保定栏内保定, 将外阴清洗消毒, 尾巴拉向一侧。输精器具在使用前必须彻底清洗、消毒。玻璃或金属输精器可用蒸汽、75℃酒精或放入高温干燥箱内消毒;输精胶管不耐高温, 可用酒精或蒸汽消毒;开膣器及其他金属用具洗净后浸泡在消毒液中备用。
4.3 精液及术者准备
4.3.1 冻精解冻。
必须将液氮罐拿到现场, 做到解冻后立即输精, 缩短精子在外面存留的时间。解冻方法:从液氮罐中取冻精时, 提漏中的冻精不可超过液氮罐口, 在10 s之内取出冻精, 若没有取出, 应再次浸入液氮中几分钟后再操作, 取出冻精后立即放入38℃左右的清水中, 停留10 s后取出, 用无菌的干脱脂棉擦干, 剪断封口, 装入输精器准备输精。
4.3.2 术者准备。
输精员应穿好工作服, 提前将指甲剪短磨光, 手臂应清洗消毒或戴输精用长臂手套, 深入母牛阴道或直肠的手要涂上润滑剂。
5 适时输精
5.1 输精时间
经产母牛的发情持续期平均为18 h, 输精应尽早进行。初配牛的输精可安排两次, 发现发情后12~20 h进行第1次输精, 隔8~12 h进行第2次输精。
5.2 输精操作
输精时要做到轻插、慢推、缓出。严禁配种操作中动作粗暴, 以免损伤子宫内膜。输精部位要求在排卵侧子宫角, 采用子宫体深部输精, 保证有足够精子到达与卵子的受精部位。利用直肠把握输精, 使输精枪沿着子宫颈外口→子宫颈→子宫颈内口→子宫体的顺序, 缓慢推入到有卵泡发育侧的子宫角处前端, 将枪稍微回退0.5 cm (避免枪头顶住子宫黏膜造成精液回流) , 推完精液后缓慢退出。在输精过程中一定要保证无菌操作, 以防子宫感染, 且不宜再次检查卵泡和卵巢, 以免影响卵巢排卵。
6 影响因素
6.1 母牛自身因素
母牛健康状况对受胎非常重要。健康牛的激素水平正常, 可以正常排卵, 保证卵子受精, 并维持胎儿的正常发育, 所以要想得到高人工授精受胎率, 必须保证繁殖母牛及其繁殖器官健康正常。
6.2 输精技术水平
输精人员的技术水平高能够提高健康参配母牛的受胎率。加强输精技术人员的技术培训, 提高其技术水平, 可以使他们在不损伤子宫颈、子宫体、子宫角黏膜的情况下快速将解冻的精液输送至有卵泡发育的子宫角内, 有助于提高母牛受胎率。
6.3 冻精质量及解冻技术
为了避免冻精在使用和保存中出现问题, 需定期抽检冻精品质, 可采用光学显微镜进行检查。改善冻精保存、运输条件, 提高输精人员的解冻技术也是影响人工授精效果的重要因素。
7 常见繁殖障碍病的防治
7.1 子宫疾病
7.1.1 一般观察。
通过观察外阴部分泌物的颜色、气味, 生殖器官的外部形状, 发情时所分泌的黏液情况, 以及直肠检查子宫大小、质地、是否对称等情况来进行综合诊断。
7.1.2 预防为主。
(1) 保持牛场环境卫生的清洁; (2) 清洗子宫和输精时做到无菌操作, 不重复使用已经污染的器具, 避免交叉感染; (3) 对产后母牛的生殖系统做好保健、预防和治疗; (4) 平时加强饲养管理, 合理搭配饲料, 多喂优质青 (干) 草和多汁饲料, 加强运动, 提高抵抗力。
7.1.3 治疗。
及时治疗原发性疾病, 控制感染扩散, 及时冲洗子宫内脓性分泌物。可以向子宫内注射抗菌药物, 消除全身症状。
7.2 卵巢机能性障碍
7.2.1 一般观察。
通过发情周期和发情时间、症状来判断发情周期是否固定, 时间是否正常。
7.2.2 直肠检查。
通过直肠触摸两侧卵巢的大小、质地是否正常, 从而诊断卵巢机能是否正常。
7.2.3
提高奶牛性控冻精受胎率的措施 篇3
最好选择15~20月龄, 体重达350kg的育成奶牛。成年母牛由于妊娠、产犊、泌乳等生理负担重, 营养处于负平衡状态或缺乏某些维生素、矿物质等, 影响精子和受精卵的成活, 从而影响受胎率。青年母牛则没有上述两种情况, 并且生殖生理机能旺盛, 子宫环境好, 有利于精子和受精卵的成活, 为最佳受体牛。亦可选择经产奶牛, 但必须为体况良好、发情规律、没有生殖疾病的健康奶牛。
2 加强输精前后的饲养管理
良好的膘情是母牛正常发情、排卵、受精及妊娠的物质基础。当母牛营养不良时, 生殖激素的分泌受到影响, 性腺机能的减退。对于青年母牛, 充足的能量、蛋白质、矿物质和维生素可促进性成熟及体成熟。对于成年母牛除营养能量充足外, 还要注意粗饲料的品质。但营养过高, 会导致卵巢脂肪化, 影响卵泡成熟和排卵。同时要加强输精前后对奶牛的饲养管理工作, 保持环境的相对稳定, 避免各种应激反应。
3 搞好发情鉴定
奶牛的发情鉴定方法主要有外部观察法、阴道检查法和直肠触诊法等。奶牛发情时, 常嗅闻其他母牛外阴, 下巴依托其他牛臀部并摩擦。压捏其腰, 背部下陷, 尾根高抬。爬跨其他牛或静立, 接受其他牛爬跨, 后者是重要的发情鉴定征候。另外, 发情奶牛的外阴潮湿, 阴道黏膜红润, 阴户肿胀。外阴有透明的线状粘液流出, 或粘污于外阴周围, 粘液有强的拉丝性。臀部、尾根有接受爬跨造成的小伤痕或秃斑。60%左右的发情母牛可见阴道出血, 约在发情后2d出现。这个征候可帮助确定漏配的发情牛, 为跟踪下次发情日期提供可靠依据。
4 输精时机及次数
适宜的输精时间为发情开始后12h左右或排卵前, 一般掌握早晨发情傍晚输精, 中午发情夜间输精, 傍晚发情早晨输精。情期内输精1~2次, 2次间隔8~12h。输精过早, 卵子排出时, 精子已衰老死亡;输精过晚, 排卵后输精的受胎率又很低。所以使用冷冻精液输精的时间应当比使用新鲜精液适当推迟一些, 输精间隔时间也应该短一些。
5 输精方法和部位
冷冻精液输入母畜生殖道后, 存活时间大大缩短。因此, 要求将每头份的精液全部输入到子宫颈内口以前的部位, 以保证较高的受胎率。牛冷冻精液输精不可采用输精部位较浅的开膣器输精法, 用输精部位可达子宫颈内口和子宫体的直肠把握深部输精法。
6 规范输精技术
输精的操作规程的严格与否是影响性控精液受胎率的重要环节。 (1) 要严格器械和手臂的消毒。输精管必须每头母牛1支, 不可连续使用。输精员在输精前要洗手、磨光指甲, 使用消毒的一次性手套。母牛外阴也要用消毒液清洗, 再用清水冲去消毒液, 然后用灭菌纸巾擦干。 (2) 要保持精液的质量。将性控冻精取出后, 要轻轻的甩一下, 以甩去细管上残留的液氮。接着马上投入38~40℃的水中, 使其解冻。解冻后的精液要尽快输入母牛体内, 并避免精子受到应激。 (3) 输精的手法要熟练, 输精部位要准确。做到轻插、适深、慢推、缓出, 防止精液倒流。将精液输入到子宫体或排卵侧的子宫角大弯部。
7 确保性控冻精的质量
确保性控冻精的质量, 必须做好以下两方面的工作。
(1) 要选择好的供精单位。由于冻精的检测是破坏性检测 (即检测过的那支精液, 将无法再应用于奶牛生产) , 所以我们不能对每支冻精都去检测其精子数、精子活力和精子比率等, 而只能是进行抽样检查。要选择讲诚信, 重质量, 管理规范的供精单位, 从源头上保证性控冻精的质量。
(2) 搞好性控冻精的运输和保存工作。移动液氮贮存罐时, 应提握罐柄, 轻拿轻放, 防止冲撞。装车运输时, 应在罐底加防震软垫。罐体应加外套装入木箱, 牢固地加以栓系, 防止倾倒。应有专人押运, 途中应随时注意检查并及时补充液氮。贮存的性控冻精必须切实地浸没在液氮中。在向另一液氮罐内转移性控冻精时, 精液提桶不得脱离液氮5s。
8 输精操作的注意事项
(1) 输精操作时, 若母牛努责过甚, 可采用喂给饲草、捏腰、拍打跟睛、按摩阴蒂等方法使之缓解。若母牛直肠呈罐状时, 可用手臂在直肠中前后抽动以促使松弛。操作时动作要谨慎, 防止损伤子宫颈和子宫体。
性控奶牛 篇4
一、材料和方法
㈠试验材料
1. 性别控制冻精配种时间和地点。
2010年1月至2012年10月在天水市嘉信牧业有限公司奶牛场进行。
2. 奶牛性控冻精。
使用以前引进的天津奶牛繁育中心进口加系荷斯坦和国产荷斯坦奶牛性控冻精xy00171以及新引进的蒙牛赛科星性控冻精11103863共500支。
3. 授配母牛的选择。
选择育成牛298头和不同体重、不同胎次(2～5胎)、泌乳时间基本一致或相近的成年母牛44头，育成牛和成年牛饲养管理条件相同。
㈡性控冻精处理和冻配
采取自然发情人工冻配授精的方法。输精前要消毒金属输精枪、开膣器、一次性消毒套管和手套。奶牛经发情鉴定后，确认已到输精时间，牵入保定栏内保定，外阴清洗消毒，将尾拉向一侧。一般可安排1次，即发现发情后10～20 h进行，输精部位在排卵侧子宫体或子宫颈内口，输精时现场解冻精液并装枪，以减少精液解冻后体外停留时间。输精时要求将精液输入卵泡发育良好一侧的子宫角，有助于提高受胎率。
㈢授配牛的饲养管理
加强饲养管理，使其尽快恢复体质，保持健壮，并保证良好的自然发情状态。对授配牛进行严密的发情观察，在授配后45～65 d对奶牛进行早期直肠妊娠检查。
二、试验结果与分析
㈠试验结果
由表1可见，在本次试验授配的342头母牛中，育成牛298头，受胎268头，情期受胎率为70%，母犊率为93.51%，犊牛产活率为97.71%;成年牛44头，受胎37头，情期受胎率为66%，母犊率为94.44%，犊牛产活率为97.22%。其中：二胎牛20头，情期受胎率为66.44%，母犊率为100%，犊牛产活率为93.33%;三胎牛10头，情期受胎率为63.31%，母犊率为87.5%，犊牛产活率为100%;四胎牛8头，情期受胎率为62.25%，母犊率为87.5%，犊牛产活率为100%;五胎以上牛6头，情期受胎率为55.67%，母犊率为100%，犊牛产活率为100%。
㈡分析
试验结果显示，育成牛的情期受胎率较二胎、三胎、四胎、五胎以上分别高3.56、6.69、7.75、14.33个百分点，差异显著(P<0.05)，即育成牛的情期受胎率显著高于成年牛。育成牛与成年牛的产母犊率只相差0.93个百分点，差异不显著(P>0.05)，即育成牛与成年牛及成年牛各胎次间产母犊率无差异。育成牛流产率比成年牛平均值低0.46个百分点，差异不显著(P>0.05)，原因是育成牛群体大，繁殖性疾病少，而成年牛群体小，存在程度不同的繁殖性疾病，同时育成牛产活率比成年牛平均值高0.49个百分点，二者差异不显著(P>0.05)。
三、小结
性控奶牛 篇5
关键词：X性控冻精,F1代,F2代,繁殖性能,奶牛
流式细胞分离法分离奶牛X精子的过程中采用荧光染料对DNA定量染色,激光激发荧光染料,为X、Y精子充上不同的正负电荷,再在电场作用下使带正负电荷的X、Y精子分离,这一过程是否会引起遗传物质的改变至今仍存在疑虑。为了验证采用流式细胞分离法分离的奶牛X性控冻精与普通冻精生产的F1、F2代繁殖性能是否存在差异,课题组对宁夏平吉堡奶牛场X性控冻精人工授精生产的F1、F2代的繁殖性能进行了跟踪检测[1],为客观地反映、正确地评价奶牛性控冻精的应用效果提供科学的依据。
1材料
1.1X性控冻精
12201171号( 布雷特之子) 、12201167号 ( 探索者之子) ,XY种畜( 天津) 有限公司生产。
1.2普通冻精
11101927号( 马绍尔家系,牛名“战帝克”) ,北京种公牛站生产。
1.3试验牛
选择宁夏平吉堡奶牛场305 d平均产奶量8 t的1 ~ 3胎的母牛群体,用12201171号X性控冻精人工授精生产F1、F2代育成牛和经产牛,全程用中国荷斯坦奶牛营养标准制订日粮配方进行饲喂[2]。
2方法
2.1试验分组
性控配性控组: 随机选取X性控冻精生产的F1代育成牛154头、经产母牛128头,F2代育成牛181头、经产母牛110头,用12201167号X性控冻精按照DB64 /T528—2008进行人工授精[3]。
普通配普通组: 随机选取普通冻精生产的育成牛156头、经产母牛112头,用11101927号普通冻精进行人工授精。
2.2数据的统计分析
统计各组的情期受胎率、总受胎率、流产率、死胎弱胎率[4,5]并进行t检验。
3结果与分析
3.1情期受胎率和总受胎率(见表1)
注: 同列数据肩标字母不同表示差异显著( P < 0. 05) ,相同表示( P > 0. 05) 。
由表1可以看出: X性控冻精生产的F1、F2代育成牛与普通冻精生产的后代育成牛情期受胎率和总受胎率差异不显著( P > 0. 05) ; X性控冻精生产的F1、F2代经产牛与普通冻精生产的后代经产牛情期受胎率和总受胎率差异不显著( P > 0. 05) ; X性控冻精生产的F1、F2代及普通冻精生产的后代育成牛与经产牛之间情期受胎率差异显著( P < 0. 05) 。
3.2流产率和死胎弱胎率(见表2)
由表2可以看出,X性控冻精生产的F1、F2代和普通冻精生产的后代育成牛、经产牛流产率、死胎弱胎率差异均不显著( P > 0. 05) ,但育成牛的死胎弱胎率略高于经产牛。
4讨论与结论
由于奶牛X性控冻精的有效精子数在200万 ~240万( 其中90% 为X精子) ,是普通冻精( 1 000万) 的1 /4 ~ 1 /5,加之精子在母畜生殖道内运行至受精部位的过程中有一定的损耗,导致情期受胎率降低, 与国内X性控冻精人工授精的情期受胎率( 50% ~ 80% ) 报道一致。一般X性控冻精在奶牛有明显发情症状的20 ~ 24 h进行输精,输精部位为滤泡发育侧的子宫角大弯至小弯之间,有助于提高受精部位的精子密度,达到理想的情期受胎率。
注: 同列数据肩标* 表示差异不显著( P > 0. 05) 。
本试验中X性控冻精生产的F1、F2代育成牛和普通冻精生产的后代育成牛情期受胎率、总受胎率、 流产率和死胎弱胎率差异不显著( P > 0. 05) ; X性控冻精生产的F1、F2代经产牛和普通冻精生产的后代经产牛流产率、死胎弱胎率差异不显著( P > 0. 05) , 但育成牛的死胎弱胎率略高于经产牛。说明奶牛X性控冻精生产的F1、F2代育成牛、经产牛繁殖性能未见异常。
参考文献
[1]梁小军,宁小波,张俊丽,等.不同输精部位对奶牛X性控冻精情期受胎率的影响[J].黑龙江畜牧兽医,2009(3):40-41.
[2]邰发红,许国军,王新华.奶牛X性控冻精应用效果试验[J].畜牧兽医杂志,2009,28(2):35-36.
[3]梁小军,公双平,李灵灵,等.奶牛X性控冻精对不同胎次参配牛情期受胎率的影响[J].黑龙江畜牧兽医,2009(9):39-40.
[4]梁小军,马吉锋,张秀陶,等.奶牛X性控冻精生产的F1代生长发育测定[J].上海畜牧兽医通讯,2009(3):39.
性控奶牛 篇6
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 X性控冻精
由XY种畜 (天津) 有限公司生产, 171号;规格为0.25mL细管, 每支冻精X精子数200～240万个;解冻后精子活力为0.35～0.50。
1.1.2 试验牛
银川市金凤区丰登镇养殖场的育成母牛和2～7胎的经产母牛。
育成母牛:在14～16月龄间, 体高达到1.27m, 体重达到350kg以上, 健康, 营养均衡且生殖系统发育正常。
经产母牛:产后60d以上, 健康, 营养均衡, 无生殖疾患, 无不孕症、胎衣不下病史, 参配时无乳房炎及其他发热性疾病;产后20天做过子宫复旧检查, 子宫输入抗生素预防子宫内膜炎;发情周期正常 (18～24d) , 被毛光亮, 膘情适中, 2～7胎荷斯坦牛。
1.2 方法
1.2.1 试验动物分组
按参配母牛的胎次将试验牛分为3组:A组, 14～16月龄可繁育成母牛;B组, 2～4胎可繁经产母牛;C组, 5～7胎可繁经产母牛。1.2.2观察发情自然状态下每天观察3次, 每次不少于0.5h;采用外部观察和直肠触摸卵泡相结合的方法, 以开始发情为0小时, 准确记录发情牛的开始发情时间和发情末期时间。
(1) 开始发情时间。从母牛有如下发情症状, 直肠检查有如下结果时开始计算。发情症状:母牛极度不安, 食欲停止, 性欲旺盛, 持续爬跨别的牛。外阴部明显肿胀, 流出黏液增多。约8～12h时接受爬跨, 此时为站立发情。直肠检查:子宫松软;卵泡体积增大, 直径1.0～1.5cm, 突出于卵巢表面, 弹性强, 有波动感。
(2) 发情末期时间。从母牛有如下发情症状、直检有如下结果时开始计算。发情症状:母牛性欲减退, 不再爬跨其他牛, 由不安转为安静, 外阴部肿胀减退, 黏液变稠, 呈黄白色。持续8～10h, 母牛拒绝其他牛的爬跨。直肠检查:子宫颈变松软;卵泡壁变薄, 卵泡波动很明显, 呈熟葡萄状, 有一触即破的感觉。1.2.3 X性控冻精的解冻从液氮中取出精液细管, 在空气中滞留3～5s, 迅速将细管投入 (38±0.5) ℃的立式保温杯中, 来回摇摆10～20s, 待冰晶溶解后用无菌脱脂干棉球将细管表面的水擦干。
1.2.4 输精部位和次数
在子宫角大弯至小弯之间进行人工授精。一个发情期进行一次输精, 每次1支。
1.2.5 输精时间
直肠把握输精, 在发情开始后的20～24h内进行人工授精。
1.2.6 妊娠检查
对人工授精后60d未返情牛直肠检查其子宫的妊娠情况。
1.2.7 测定项目
记录开始发情时间、站立发情时间、发情末期时间, 进行直肠检查并记录卵巢的大小、形态、质地、卵泡发育情况。推算预产期, 跟踪登记产公、母犊数 (流产、死胎均作为母犊统计) 。对试验结果进行x2检验。
2 结果
2.1 情期受胎率 (见表1)
注:同列数据肩注字母不同表示差异显著 (P<0.05) 。
课题组分别对不同胎次参配母牛的情期受胎率进行统计, 14～16月龄的育成牛、2～4胎的经产牛、5～7胎的经产牛分别为81.08%、60.00%、52.17%, 各组间差异显著 (P<0.05) 。试验结果表明:育成牛与2～4胎、育成牛与5～7胎情期受胎率差异显著 (P<0.05) 。
2.2 母犊率 (见表2)
母犊率在90.48%～93.33%之间, 各组间差异不显著 (P>0.05) ;总的母犊率为92.06% (58/63) 。结果表明:奶牛X性控冻精对不同胎次参配母牛的母犊率可以达到90.00%。
3 小结
(1) 采用XY种畜 (天津) 有限公司生产的奶牛X性控冻精171号, 在发情开始后的20～24h内, 输精部位为子宫角大弯至小弯之间的技术条件下, 育成牛、2～4胎的经产牛和5～7胎的经产牛情期受胎率分别为81.08%、60.00%、52.17%, 各组间差异显著 (P<0.05) ;育成牛与2～4胎、育成牛与5～7胎情期受胎率差异显著 (P<0.05) 。母犊率在90.48%～93.33%之间, 各组间差异不显著 (P>0.05) ;总的母犊率为92.06% (58/63) 。试验结果表明:育成牛与2～4胎、5～7胎的情期受胎率差异显著 (P<0.05) ;奶牛X性控冻精对不同胎次参配母牛的母犊率可以达到90.00%。
(2) 据相关资料报道, X性控冻精的活力为0.30～0.39, 达到了与普通冻精活力 (GB:0.35) 相当的水平, 但是存活时间约是普通冻精的1/2, 所以输精时间在发情开始后的20～24h内有助于提高受胎率。奶牛X性控冻精的有效精子数在200万～240万个 (90%为X精子) , 为普通冻精 (GB:1 000万个) 的1/5～1/4。然而, 精子在母畜生殖道内运行到受精部位的过程中有一定的损耗, 若按照常规人工授精的输精部位 (子宫颈内口) 进行操作, 其情期受胎率较低;但进行深部输精有助于提高受精部位的精子密度, 可达到较理想的情期受胎率。