免疫注射论文（共10篇）
免疫注射论文 篇1
一、生猪安全高效免疫注射要点
1. 了解健康状况
通过向畜主询问了解猪群的既往病史和当前生理情况, 采取“望、闻、听、切”等临床诊断方法, 从静态、动态、食态方面判断猪群的健康状况, 选择合适的免疫时间。
2. 疫苗质量要保证
疫苗厂家一定要选择具有生产许可证的生物制品企业, 加强疫苗运输、保存环节的管理, 使用前要检查疫苗的完好程度, 有无破损、分层现象。
3. 操作方法要得当
使用前最好自然升温至适宜温度, 要按照说明书的要求合理使用, 不得随意加大免疫剂量, 免疫方法要有所选择。
4. 副反应处置要及时
当出现免疫副反应时, 为尽量降低损失, 一是抢时间, 要以最快的速度处置到位;二是处置方法要得当, 可倒提猪体、肌肉注射上腺素或地塞米松。
5. 抗体水平检测要科学
抗体水平高低直接反映免疫成败, 故应在免疫21天后采集血样, 送专业机构进行检测, 为科学制定免疫程序提供依据。
二、注射疫苗的七大禁忌
1. 忌给怀孕母猪注射疫苗
疫苗是一种弱病毒, 能引起母猪流产、早产或死胎。对繁殖母猪, 最好在配种前一个月注射疫苗, 既可防止母猪在妊娠期内因接种疫苗而引起流产, 又可提高出生仔猪的免疫力。
2. 忌过早给仔猪注射疫苗
刚出生的仔猪可从母体获得母源抗体 (如果母猪进行过产前的免疫) , 能有效地抗病, 除特殊情况外 (如超前免疫) , 一般不宜过早接种疫苗。如果过早地注射疫苗, 一是仔猪免疫应答较差, 二是干扰了母源抗体。
3. 忌同时注射两种疫苗
注射疫苗以后, 生猪需要一定的时间以产生抗体。如果两种疫苗同时注射, 疫苗之间会互相干扰, 影响抗体的形成, 效果往往不佳。所以注射两种不同的疫苗, 应间隔5~7天, 最好10天以上。
4. 忌注射时消毒不严
注射疫苗时要做好充分的消毒准备, 针头、注射器、镊子等必须事先消毒, 准备好, 酒精棉球需在48小时前准备。免疫时, 每注射一头猪要换一枚针头, 以防带毒、带菌。同时, 在猪群免疫注射前后, 还要避免大搞消毒活动和使用抗菌药物。
5. 忌盲目接种
养殖户在给生猪免疫接种前, 首先应对本地猪病流行的规律和情况进行调查研究, 制定合理的免疫程序, 做到有的放矢。
6. 忌注射过期疫苗
选购疫苗时, 应根据饲养生猪的数量和疫苗的免疫期限制定疫苗用量计划, 并到正规的畜牧部门选购疫苗。不购瓶壁破裂、瓶签不清或记载不详的疫苗, 不购没有按要求保存及快到失效期的疫苗。
7. 忌过多或过少注射疫苗
疫苗注射过多往往引起疫苗反应, 过少则抗原不足, 达不到预防效果。疫苗使用前应充分振荡, 使沉淀物混合均匀。细看瓶签及使用说明, 按要求剂量严格注射, 并详细记录注射剂量、日期、疫苗产地、出厂时间等, 防止漏防。●
免疫注射论文 篇2
目的 建立基于毛细管柱固定抗原流动注射增强化学发光免疫法测定IgG分析的新方法.方法 以辣根过氧化物酶(HRp)标记抗IgG与抗IgG竞争毛细管内壁表面固定的IgG抗原,利用HRP催化对鲁米诺-过氧化氢-对碘苯酚体系的`增强化学发光,建立测定IgG的流动注射化学发光免疫分析方法.结果 在选定的实验条件下,化学发光信号与IgG在稀释比为1∶1×1011～1∶1×1010间成良好的线性关系,相关系数为0.996 0.对稀释比为1∶5×1010IgG抗体连续11次测定的相对标准偏差为6.5%.结论 将该法应用于合成血清样品中IgG抗体的测定,结果满意.
作 者：李晓霞 李延清 申丽华 漆红兰 LI Xiao-xia LI Yan-qing SHEN Li-hua QI Hong-lan 作者单位：李晓霞,LI Xiao-xia(陕西师范大学,化学与材料科学学院,陕西,西安,710062;延安大学,化学与化工学院,陕西,延安,716000)李延清,LI Yan-qing(延安大学,化学与化工学院,陕西,延安,716000)
申丽华,漆红兰,SHEN Li-hua,QI Hong-lan(陕西师范大学,化学与材料科学学院,陕西,西安,710062)
刊 名：西北大学学报(自然科学版) ISTIC PKU英文刊名：JOURNAL OF NORTHWEST UNIVERSITY(NATURAL SCIENCE EDITION) 年，卷(期)：2007 37(6) 分类号：O657.3 关键词：流动注射分析 免疫分析 化学发光 毛细管柱 IgG★ 流动注射化学发光法测定茶叶和蔬菜中亚硝酸根
★ 流动注射催化光度法测定苯胺
提高自身免疫力比注射疫苗更重要 篇3
刘教授谈到：流感疫苗是传染病的活性疫苗。糖尿病患者由于体质比较弱，如果病情控制不太理想，加上年龄偏大，注射后可能会有反应。那么，这些反应对糖尿病患者的病情稳定和血糖控制有无影响?由于没有具体的医学数据报道，所以不建议患者打还是不打。不过，糖尿病患者最重要的是提高自身的免疫能力，如果能提高自身抵抗疾病的能力，就根本不用害怕流感。糖尿病患者需要的是全方位关注自己，提高体质，提高抵抗力。
目前我国糖尿病患者的体质和免疫力普遍都比较差，在“非典”时期死亡的患者中，26．8％是糖尿病患者，8％是心脑血管病患者。同样是吃药治疗，糖尿病患者的体质却明显差于心脑血管病患者的体质。造成这种现象的主要原因就是糖尿病患者需要严格控制饮食，而控制饮食往往会走入另一个极端。经实验发现，部分糖尿病患者的微量元素、矿物质和维生素都只有常人的50％，有些只有30％。微量元素如糖耐量因子铬、镁、矾、锌等，都是对提高免疫力很重要的因子。患者严重缺乏这些因子，所以抵抗力比较差。
能提高免疫力的食品有很多，例如：海带、芹菜、茄子、西红柿等都对健康有益。平时多吃一些清淡的食品(如蔬菜等)，也是提高免疫力的一个重要方法。
目前对糖尿病的治疗，往往单纯强调降血糖，忽视了人体的整体素质，导致糖尿病患者体质下降、免疫力低下。糖尿病是一种全身性慢性疾病，除高血糖外，常伴有高血压、血脂紊乱、高胰岛素血症等。改变治疗模式，放弃临床惰性(医生只对糖尿病患者实施对症药物治疗，而不开展综合防治)，才是糖尿病患者的最终治疗手段。如果每例糖尿病患者都能得到“最佳关爱”，他们发生并发症的危险将降低57％。
生猪免疫注射注意事项 篇4
1切忌盲目接种
生猪养殖场户在给生猪免疫接种前, 首先应对本地区猪病流行的规律和情况以及流行病原菌的血清型进行调查研究, 制定合理的免疫程序, 应用相应的疫苗, 做到有的放矢。例如本地流行的是O型口蹄疫, 如果要注射其它型疫苗就不会起到预防O型口蹄疫作用。
2切忌注射过期疫苗
选购疫苗时, 应根据饲养生猪的数量和疫苗的免疫期限制定疫苗用量计划, 并到当地畜牧部门选购疫苗。不购瓶壁破裂、 瓶签不清或记载不详的疫苗, 不购没有按要求保存和快到失效期的疫苗。 不购买来源渠道不明的疫苗。
3忌过多或过少注射疫苗
疫苗注射量过多往往引起疫苗反应, 或致免疫麻痹。注射量过少则动物机体产生的抗体水平达不到预防效果。疫苗使用前应充分振荡, 使沉淀物混合均匀。细看瓶签及使用说明, 按要求剂量严格注射, 并详细记录注射剂量、日期、疫苗产地、出厂时间等, 防止遗漏注射、重复注射。
4切忌给已经发病猪注射疫苗
猪群的健康状况直接影响免疫的成功率, 当猪群已感染了某种传染病时, 注射疫苗不但达不到免疫目的, 反而会导致猪群加速发病死亡, 或造成疫情扩散。
5忌给怀孕母猪注射疫苗
有的疫苗是一种弱病毒, 能引起母猪流产、早产或死胎。对繁殖母猪最好在配种前一个月注射疫苗, 既可防止母猪在妊娠期内因接种疫苗而引起流产, 又可提高出生仔猪的免疫力。
6切忌过早给仔猪注射疫苗
刚出生的仔猪可从母体获得母源抗体, 能有效地抗病, 除遇特殊情况 (如超前免疫) , 一般不过早接种疫苗。如果过早地注射疫苗, 一是仔猪免疫应答较差, 二是干扰了母源抗体。所以仔猪注射猪瘟疫苗应在20~25 日龄首免, 待60 日龄需加强免疫一次。
7切忌两种疫苗同时注射
注射疫苗以后, 需要一定的时间才能产生抗体。 如果两种疫苗同时注射, 机体会产生干扰素, 疫苗之间会互相干扰, 影响抗体的生成, 效果往往不佳。所以注射两种不同的疫苗, 应间隔5~7d, 最好10d以上。
8忌注射时消毒不严
注射疫苗时要做好充分的消毒准备, 针头、注射器、镊子等必须事先消毒, 准备好, 酒精棉球需在48 小时前准备。 免疫时, 每注射一头猪要换一枚针头, 以防带毒、带菌。
9首次接种弱毒苗时应做安全试验
首次接种弱毒苗时, 一般要进行20~30 头免疫试验, 并观察2 周, 如无不良反应再进行大规模免疫。
10疫苗的存贮与运输注意事项
各种疫苗储运及使用时, 严防日晒及高温, 确保疫苗保存及运输和使用各环节的冷链系统发挥作用。 温度应符合说明书要求, 氢氧化铝、生理盐水等稀释液及油乳剂苗不能冻结。
11注射时注意事项
液体疫苗使用前应充分摇匀, 每次吸苗前再充分振摇, 冻干疫苗加稀释液后, 充分振摇, 必须全部溶解后方可使用。 个别猪注射某些疫苗后发生严重过敏反应时立即以肾上腺素等药物脱敏, 以免导致死亡。
12免疫前后避免使用抗菌类药物
免疫注射论文 篇5
【关键词】 静注人免疫球蛋白；阿司匹林；川崎病；治疗
川崎病是一种以全身非特异性血管炎（可侵犯冠状动脉）为主要病理改变的急性发热性出诊性疾病，又称皮肤黏膜淋巴结综合征，是小儿后天性心脏病的主要病因之一。春季发病较多，大多数在5岁之前发病。笔者在临床工作当中，运用静脉注射人免疫球蛋白加阿司匹林的方法治疗川崎病，获得较好效果。现报告如下。
1 临床资料
1.1 一般资料 在我院2009年4月～2013年4月收治的川崎病患者中，根据诊断标准选取30例患者进行回顾性分析，其年龄分布为1～6岁，其中男性19例，女性11例。
1.2 病例纳入 ①2009年4月～2013年4月的初诊患者，符合川崎病诊断标准；②无其他脏器疾病；③初诊前3个月未进行中药治疗；④年龄不大于6周岁。
1.3 排除标准 ①就诊时间为2009年4月前或2013年4月后者；②非川崎病患者；③一个月内曾在他处用中药汤剂治疗过本病的患者；④内科检查有其他心血管系统器质性病变的患者。
1.4 诊断标准 参照郝国蓉所著的《川崎病的诊断与治疗进展》[1]制定本标准：①球结膜充血；②杨梅舌、口腔黏膜充血、口唇皲裂；③多形性红斑、皮疹；④手足早期硬肿、后期膜状脱皮；⑤非化脓性淋巴结肿大；⑥不明原因的发热≥5d以上。具备⑥及其他5项中的4项即可确诊；若二维超声心动图或冠状动脉造影查出冠状动脉瘤或扩张，具备上述6项中的4项即可确诊。
2 治疗方法及疗效判定标准
2.1 治疗方法 基本治疗为静脉注射人免疫球蛋白，在发病后8～10d之用药，单剂2g/kg，10～12h内输入。阿司匹林，每天30～100mg/kg，分3～4次口服，连用2周；热退后减至每天3～5mg/kg，一次顿服。所有患者均按常规采取对症支持治疗。
2.2 疗效判定标准 参照郝国蓉所著《川崎病的诊断与治疗进展》[1]制定本标准。治愈：症状全部消失，二维超声心动图或冠状动脉造影正常，随诊复查无异常。好转：症状好转，二维超声心动图或冠状动脉造影正常或异常，随诊复查异常。无效：症状无减轻，二维超声心动图或冠状动脉造影正常或异常，随诊复查异常。
3 结 果
经治疗2周后，治愈21例，好转5例，无效4例，治愈率为70.00%，好转率为16.67%，总有效率为86.67%。随访3个月后，总有效率为83.33%。服药过程中，所有患者均未出现不良反应。
4 病案举例
刘某，男，4岁，体重30kg，2012年3月23日初诊。主诉：发热、躯干部皮疹5d。患者5d前无明显诱因出现发热，躯干部出现皮疹、色鲜艳，伴纳差、乏力，无咳嗽、咯痰、腹泻、腹痛等，在当地以麻疹治疗，疗效差，遂转至我院。查体：T39.2℃，P96次/min，头颅无畸形，耳后及颈部淋巴结肿大，双侧结膜充血，口唇发红干裂，口腔及咽腔红肿，杨梅舌，颈软，心肺听诊无异常，腹平软，无压痛，肝脾肋下未及，双肾区无叩击痛，肠鸣音正常，双手硬肿，神经系统无异常。二维超声心动图提示冠状动脉扩张。诊断：川崎病。给予静脉注射人免疫球蛋白60g加入5%葡萄糖注射液250ml静脉点滴；阿司匹林，750mg，每天3次口服，14d后，改用125mg，每天1次口服；辅以对症支持治疗。3个月后复查，患儿临床症状消失，二维超声心动图提示冠状动脉正常。
5 讨 论
川崎病是一种以全身非特异性血管炎为主要病理改变的急性发热性出诊性疾病，与自身免疫有关，病情较重，临床颇为常见。
静脉注射人免疫球蛋白的主要成分IgG，含有针对各种正常人群易感病原微生物的调理性中和性抗体，经静脉输注即可100%进入血液循环。其药理作用，一方面是迅速提高受者体内IgG水平，直接中和毒素，协同杀灭细菌、病毒和其他病原体，起到防治各种细菌、病毒性感染的作用；另一方面是输入具有正常和独特型抗体的IgG，对各种自身免疫性疾病患者恢复自我免疫识别、激活和抑制动态平衡起到免疫调节作用。阿司匹林能抑制前列腺素合成，具有解热、镇痛作用。因此，根据川崎病的发病机理，静注人免疫球蛋白、阿司匹林进行治疗，具有较充分的理论依据。
笔者在临床实践当中，运用静脉注射人免疫球蛋白加阿司匹林治疗川崎病30例，观察结果显示，具有较好的治疗效果。3个月后随访，疗效确切，值得临床进一步研究和推广。
参考文献
[1] 郝国蓉.川崎病的诊断与治疗进展[J].中华现代儿科学杂志，2006，3（6）：511-513.
[2] 李冀，吴晓燕.北京协和医院儿科住院医师手册[M].北京：人民卫生出版社，2012：395-396.
[3] 胡亚美，江载芳.实用儿科学[M].6版.北京：人民卫生出版社，2002：701.
[4] 李万镇.加强对川崎病疹治的研究[J].中华儿科杂志，2002，40（2）：65-67.
[5] 欧婉杏.川崎病59例误诊分析[J].广州医药，2002，33（1）：42.
免疫注射论文 篇6
1 三要
一要科学免疫接种。给生猪免疫接种前, 首先应对本地猪病流行的规律和情况进行调查研究, 制定合理的免疫程序。选购疫苗时, 应根据饲养生猪的数量和疫苗的免疫期限制定疫苗用量计划, 并到正规的畜牧部门选购疫苗, 同时做好疫苗的保藏工作。
二要重视免疫应激反应。生猪疫苗注射过多往往引起疫苗反应, 有时反应还比较重, 过少则抗原不足, 达不到预防效果。疫苗使用前应充分振荡, 使沉淀物混合均匀。细看瓶签及使用说明, 按要求剂量严格注射, 并详细记录注射剂量、日期、疫苗产地、出厂时间等, 防止漏防。遇到不可避免的应激时, 可在饮水中加入抗应激剂, 如电解多维、VC等, 能有效缓解和降低各种应激反应, 增强免疫效果。对反应严重的或发生过敏反应的可注射肾上腺素抢救。
三要严格消毒制度。免疫接种前, 将使用的器械认真洗净, 高压灭菌。免疫接种人员用消毒液洗手, 穿消毒工作服、鞋。吸取疫苗时, 先用75%酒精棉球擦拭消毒瓶盖, 再用注射器抽取疫苗, 如果一次吸取不完, 应另换一个消毒针头进行免疫接种, 不要把插在疫苗瓶上的针头拔出, 以便继续吸取疫苗, 并用干酒精棉球盖好。严禁用给猪注射过疫苗的针头去吸取疫苗, 防止疫苗污染。注射部位应先剪毛, 然后用碘酒消毒, 再进行注射, 每注射一头猪必须更换一次消毒的针头。以防带毒、带菌。同时, 在猪群免疫注射前后, 还要避免大搞消毒活动和使用抗菌药物。
2 三不要
一不要给病猪、怀孕母猪注射疫苗。猪群的健康状况直接影响免疫的成功率, 当猪群已感染了某种传染病时, 注射疫苗不但达不到免疫目的, 反而会导致死亡, 或造成疫情扩散。疫苗是一种弱病毒, 能引起母猪流产、早产或死胎。对繁殖母猪, 最好在配种前一个月注射疫苗, 既可防止母猪在妊娠期内因接种疫苗而引起流产, 又可提高出生仔猪的免疫力。
二不要过早给仔猪注射疫苗。刚出生的仔猪可从母体获得母源抗体, 能有效地抗病。如果过早地注射疫苗, 一是仔猪免疫应答较差, 二是干扰了母源抗体。所以, 仔猪注射猪瘟疫苗应在20～25日龄首免, 60日龄加强免疫一次。
参麦注射液免疫作用研究进展 篇7
1 T淋巴细胞
周雨田等[1]运用参麦注射液配合常规疗法治疗慢性阻塞性肺疾病急性发作观察其对免疫功能的影响, 并设常规疗法对照组, 发现治疗组治疗后CD3、CD4较对照组升高明显 (P<0.01) 。王晓宇和楼滟等[2]观察参麦注射液结合常规疗法治疗老年慢性阻塞性肺疾病, 并以常规疗法治疗为对照组, 观察其对免疫功能的影响。研究发现治疗组不但CD3、CD4升高明显, CD8也明显升高, 与对照组比较, 差异有统计学意义 (P<0.01) 。李珍等[3]观察参麦注射液对胃癌晚期患者免疫功能的影响, 将58例胃癌晚期患者随机分为两组, 对照组20例, 单纯采用一般营养支持疗法;观察组38例, 在对照组治疗的基础上加用参麦注射液, 分别比较治疗前后T淋巴细胞亚群改变。结果发现, 治疗28 d后观察组CD3+、CD4+细胞数明显升高, CD8+细胞数减少, CD4+/CD8+比值明显升高。李惠等[4]发现对支气管哮喘患者进行抗炎、平喘、扩张支气管治疗同时另给予参麦注射液, 可使血清Th1升高, Th2降低, Th1/Th2升高, 使免疫反应由Th2型向Th1型逆转, 抑制嗜酸性粒细胞聚集, 减少免疫球蛋白E (Ig E) 分泌, 缓解哮喘症状。余霞[5]子宫颈癌手术后患者静滴参麦注射液评价对免疫功能的影响, 发现参麦注射液可升高术后下降的CD3+、CD4+、CD8+、CD4+/CD8+数值。
2 免疫蛋白
鲁桂春等[6]观察参麦注射液对维持性血液透析患者细胞免疫和体液免疫的影响。对照组采用碳酸盐透析, 参麦组在此基础上于透析结束时加用参麦注射液30 ml缓慢静脉注射。经过3个月的治疗后, 患者免疫球蛋白G (Ig G) 、免疫球蛋白A (Ig A) 和免疫球蛋白M (Ig M) 含量明显升高, 而对照组未加用参麦注射液, 治疗前后免疫球蛋白Ig G、Ig A和Ig M含量变化不明显。表明参麦注射液可刺激B淋巴细胞产生免疫球蛋白Ig G、Ig A和Ig M, 增强机体的体液免疫功能。何聪等[7]用肠结扎穿孔术造模脓毒症大鼠, 观察腹腔注射参麦注射液及0.9%氯化钠注射液, 观察对其免疫功能的影响。结果显示, 参麦注射液组能升高血清Ig G, 与0.9%氯化钠注射液组比较, 差异有统计学意义 (P<0.05) 。
3 NK细胞
申丽旻等[8]将46例脓毒症患者随机分为治疗组和对照组各23例。对照组患者给予抗感染等常规支持治疗, 治疗组患者在常规治疗的基础上加用参麦注射液100 ml加入5%葡萄糖注射液100 ml静脉滴注, 1次/d, 连用7 d, 观察对其免疫功能的影响。结果发现, 参麦注射液组能明显升高NK细胞, 优于对照组 (P<0.05) 。
4 展望
近年来, 参麦注射液在临床和实验中越来越多地被广泛使用, 其药理机制也进一步被揭示。在近5年的文献中参麦注射液被广泛用于临床和实验研究, 被用于提高机体的免疫功能, 实践证明也是有效的。但是, 也注意到参麦注射液用于提高免疫功能的病种比较局限, 阐述的调控因子也比较少, 所以还需要进行大量的临床、药理、化学成分的研究工作。随着研究的深入, 参麦注射液将在调节机体免疫功能方面发挥更大的作用。
摘要：参麦注射液是一种中药制剂, 临床上主要用于心脑血管病及慢性病的辅助治疗。近年来随着临床和药理研究的深入, 发现参麦注射液对于调节人体免疫功能方面具有独特效果。本文就参麦注射液免疫作用研究进展进行综述, 以期为同仁提供参考。
关键词：参麦注射液,免疫,细胞免疫,免疫蛋白
参考文献
[1]周雨田, 李小惠, 李蔚, 等.参麦注射液对慢性阻塞性肺病急性发作患者免疫功能的影响[J].西部医学, 2011, 23 (1) :39-41.
[2]王晓宇, 楼滟.参麦注射液对慢性阻塞性肺疾病患者心功能及免疫细胞的影响[J].海峡药学, 2012, 24 (6) :85-86.
[3]李珍, 傅志泉, 李春霞, 等.参麦注射液对胃癌晚期患者生存质量及免疫功能影响的临床研究[J].中国中医药科技, 2012, 19 (1) :11-12.
[4]李惠, 邹立华, 陈小丹, 等.参麦注射液对支气管哮喘患者Th1/Th2免疫平衡的影响研究[J].临床肺科杂志, 2012, 17 (5) :797-799.
[5]余霞.参麦注射液对早期子宫颈癌手术患者免疫功能的影响[J].中国实验方剂学杂志, 2010, 16 (5) :218-219.
[6]鲁桂春, 夏良红, 汤归春, 等.参麦注射液对维持性血液透析患者细胞免疫和体液免疫的影响[J].福建中医药, 2011, 42 (6) :18-19.
[7]何聪, 申丽旻, 赵维.参麦注射液对脓毒症大鼠免疫功能的影响[J].临床合理用药杂志, 2014, 7 (1A) :46-47.
安全注射在免疫规划工作的重要性 篇8
关键词：预防接种,安全注射,实施与推广,注意事项
注射是最常见的卫生保健程序之一。发展中及转型国家每年至少进行160亿次注射操作。免疫接种约占全部注射的5%。[3]以预防为目的的注射为儿童的身心健康与成长作出了巨大贡献。随着现代医学生物技术的提高和发展, 将有更多更理想的疫苗问世。由于疫苗具有生物学性, 绝大多数需要注射, 接种面对的是众多人群, 因此, 安全注射已成为社会关注的重大公共卫生问题。所谓安全注射, 就是使用疫苗和药物进行注射时, 必须使用灭菌的注射器进行规范操作, 并对使用的注射器具进行安全处理。
1 安全注射的含义
目前, 在免疫规划工作中, 安全注射包括以下含义:①预防接种要使用合格的注射器 (包括注射器要无菌包装;在有效期内使用;接种前才能打开包装;使用后放入指定的安全盒或防刺器皿中, 不允许再次使用) ;②实施预防接种人员要持合格的资格证书上岗;③预防接种的操作要规范化;④预防接种的环境要符合工作要求;⑤接种后的接种器材及其废弃物品要安全回收、销毁。
2 不安全注射的危害
如果违反了上述要求, 即为不安全注射, 将要造成严重危害。包括: (1) 传播感染的危险:①传染血源性疾病:器具处理不当流入社会导致疾病传播。不安全注射是造成乙型肝炎、丙型肝炎、艾滋病等危害严重的传染病的医源性传播。乙肝病毒、丙肝病毒和艾滋病毒会造成慢性感染, 在不安全的注射多年后导致发生疾病、残疾和死亡。儿童期感染乙型肝炎病毒的人, 到30岁, 即在人生最好年华时, 一般都患有慢性肝病, 这对国民经济造成极大的影响。[2];②导致化脓性或细菌性感染:引起脓肿、败血症等; (2) 非传染性的危害:①不正确注射操作造成的伤害:注射部位不当造成神经损伤、卡介苗注射剂量过大导致严重反应局部淋巴结化脓破溃;②注射不合格疫苗造成的伤害:如冻结后溶融的乙肝疫苗、百白破三联疫苗进行接种或混用不同疫苗的稀释剂则可能引超严重的接种反应甚至导致死亡。如果注射物中含有其他物质, 可直接引起毒性反应或过敏反应。[4]
3 预防接种安全的实施与推广
为实现安全注射, 必须在疫苗接种的各个环节均要严格按照《预防接种工作规范》进行操作。总的要求就是对接受注射者无害, 对实施接种者无害, 对使用过的物品不会给社会公众造成危害。我们必须大力推广和实施安全注射。
3.1
①建立并完善管理制度;②规范疫苗管理、接种操作常规、注射器材处理等;③推广规范化接种门诊;④推广使用自毁型一次性注射器;⑤监督指导;⑥培训;⑦社会宣传教育。
提倡使用一次性注射器, 不再提倡继续使用玻璃注射器。
世界卫生组织 (WHO) 和联合国儿童基金会 (UNICEF) 联合声明中认为:自毁型注射器是预防接种中的首选注射器。
3.2
注射器使用后处理程序 ①毁型 (或放入安全盒或防刺容器中) ;②消毒液浸泡消毒;③集中回收到指定回收单位;④由回收单位统一处理。
3.3
WHO提出建立全球安全注射网络 (SIGN) , 旨在推广安全和合适的注射方式。
3.4
发展和采用安全技术, 目前接种技术的简易性和安全性尚须改进, 正在建立新型预防接种技术: (含针注射器具-自毁型注射器及含单剂疫苗的塑料袋已研制成功;无针注射器具-目前倾向于无针注射固体疫苗的开发应用;黏膜免疫、经皮免疫) 。
4 预防接种实施注意事项[4]
接种人员须经过计划免疫专项培训, 取得上岗证后方能从事预防接种工作[1]。卡介苗必须专人、专室接种, 使用专用冷藏包。卡介苗室内严禁接种其他疫苗。接种日穿戴工作衣帽、口罩, 佩戴上岗证。患有传染病、化脓性皮肤病者应暂停从事预防接种工作。严格掌握预防接种禁忌症。开启疫苗前应观察疫苗品质是否正常、安瓿是否完好、是否在效期内使用。注意一次性注射器包装是否完好, 是否在有效期内使用。对于多人份/安瓿包装的疫苗, 吸取药液前应充分摇匀 (尤其是卡介苗、百白破) , 以减少、减轻接种副反应和保证免疫效果。遵守无菌操作规程, 皮肤表面采用75%酒精常规消毒, 待消毒剂干后再注射。接种后 (尤其是接种活疫苗如麻疹疫苗、麻腮风、水痘疫苗后) 避免用含消毒剂的棉球按揉, 可用消毒干棉球按压。接种过程中始终坚持“苗不离冰”。疫苗开启后应在规定的时间内使用, 活疫苗的废弃时间为0.5 h, 死疫苗的废弃时间为1 h。疫苗开启后等待其他人来接种时应加盖消毒干棉球, 避免长时间直接暴露在空气中。接种前核实接种对象、应种疫苗种类。接种后应在接种证的接种医生签章栏内签名或盖章。并要求儿童在接种现场观察15～30 min。
只要从以上几方面着手, 就能消除许多不安全因素, 从而增强儿童家长对免疫规划工作的信任感, 提高儿童接种率, 最终达到保护儿童身心健康成长的目的。
参考文献
[1]预防接种工作规范, 2005年9月:5.
[2]龙振华.性传播疾病诊断与药物治疗学.北京科学技术出版社, 2001年8月:9.
[3]梁晓峰.预防接种实用技术, 2006年3月:108-117.
免疫注射论文 篇9
目前, 国内对奶牛口蹄疫的防控主要是根据流行的病毒毒株对易感家畜进行全覆盖的免疫。上海地区现行的奶牛口蹄疫免疫主要是按照90日龄首免、110日龄加强, 以后随成年牛大防的程序, 采用肌肉注射的方法进行免疫, 效果良好。但在实际操作中, 与皮下注射相比, 奶牛的肌肉注射操作难度较大。为检验皮下注射方法进行奶牛口蹄疫免疫的效果, 我们组织实施了一次采用皮下和肌肉二种不同的注射方法进行免疫并跟踪检测免疫抗体效价的比较试验。现将试验结果作一简要总结:
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 参试牛只
上海某大型奶牛场3月龄未免口蹄疫疫苗的健康犊牛30头。
1.1.2 参试疫苗
牛口蹄疫O型-亚洲Ⅰ型双价灭活疫苗, 内蒙古必威安泰生物制品有限公司生产, 批号:20110209。
1.1.3 检测单位
上海市奉贤区动物疫病预防控制中心实验室 (通过CMA认证) 。
1.1.4 检测方法
ELISA, 检测牛O型口蹄疫免疫抗体。
1.1.5 检测试剂
荷兰赛迪公司生产, 批号:0110701L。
1.2 方法
(1) 30头参试牛只随机分成Ⅰ、Ⅱ二组, 每组15头, 编号后混群饲养。
(2) 每头参试牛颈静脉采血3ml, 检测O型口蹄疫母源抗体;同时对Ⅰ组15头牛采用颈部皮下注射方法, 对Ⅱ组15头牛采用殿部肌肉注射方法, 每头牛注射口蹄疫O型-亚洲Ⅰ型双价灭活疫苗2ml (首免) 。
(3) 20d后, 对每头参试牛颈静脉采血3ml, 检测O型口蹄疫首免后的免疫抗体水平;同时对Ⅰ组15头牛采用颈部皮下注射方法, 对Ⅱ组15头牛采用殿部肌肉注射方法, 每头参试牛加强注射 (二免) 口蹄疫O型-亚洲Ⅰ型双价灭活疫苗2ml。
(4) 二免后20、50、100d, 连续三次对所有参试牛颈静脉采血, 检测O型口蹄疫免疫抗体。
(5) 按Ⅰ、Ⅱ二组分别汇总各组5次O型口蹄疫免疫抗体的结果。
2 结果与分析
2.1 结果
2.1.1 各组5次O型口蹄疫抗体的检测结果
详见附表。
2.1.2 各组抗体合格率变化情况
详见附图。
2.2 分析
2.2.1 从免前母原抗体来看
二个组均具有较高的母源抗体水平, 其中皮下注射组有7头、肌肉注射组有5头参试牛的抗体水平仍在合格以上, 抗体合格率分别为46.7%和33.3%, 皮下注射组稍高。
2.2.2 首免后20d的检测结果
肌肉注射组15头牛的抗体水平, 此时已全部达到了合格水平, 合格率达100%, 但皮下注射组仍有4头牛未能合格, 合格率仅为73.3%;经加强免疫 (二免) 后20d采样检测, 此时二个组所有参试牛的免疫抗体全部达到了合格水平, 说明皮下注射免疫抗体水平的上升速度较肌肉注射慢, 但能够达到100%合格的要求。
2.2.3 二免后50d的检测结果
皮下注射组已有一头牛的抗体水平下降至不合格;至二免后100d时, 皮下注射组抗体不合格的牛达到了3头, 而这一阶段, 肌肉注射组15头牛的抗体全部合格, 说明皮下注射免疫抗体水平的消退速度明显快于肌肉注射。
3 讨论
(1) 试验结果证明, 奶牛口蹄疫采用皮下注射方法进行免疫时的抗体上升速度较肌肉注射慢, 但消退速度却较肌肉注射快, 皮下注射的总体免疫效果不及肌肉注射显著。因此, 建议在今后的奶牛口蹄疫免疫中, 应采用肌肉注射方法进行免疫, 以确保免疫质量。
免疫注射论文 篇10
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 实验材料
雄性SD大鼠60只, 180～200g (中科院上海动物实验中心提供, 第二军医大学动物实验中心SPF级动物房饲养) 。PE-10 导管和微量进样器 (BD公司, 美国) 。
1.1.2 试剂
HDAd-NEP第三代低毒腺病毒 (实验室生产) , Ad-NEP第一代非增殖型腺病毒 (实验室生产并保存) 。大鼠IL-2、IL-6、TNF-α、IgG等ELISA试剂盒 (USCN LIFE公司, 美国) 。流式用PE标记大鼠CD80 (B7-1) 抗体 (Biolegend公司, 美国) 。1×PBS缓冲液、流式用封闭液由实验室配置。
1.1.3 仪器
Aria流式细胞仪 (BD公司, 美国) ;酶标仪 (Thermo electron公司, 美国) 。
1.2 方法
1.2.1 蛛网膜下腔置管
大鼠在动物房休养1w后, 建立蛛网膜下腔置管模型。大鼠称重后, 以400mg/kg 10%水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠, 按Milligan ED[3]等的方法进行蛛网膜下腔置管, 定位L5～L6 间隙置入PE-10导管约1～2cm, 见脑脊液流出或注入生理盐水可见水回流, 验证导管通畅后即可封闭管口、固定。
1.2.2 动物分组
60只SD大鼠, 建立蛛网膜下腔置管模型1w后, 随机分为对照组 (n=20) 、第一代腺病毒载体 (Ad-NEP) 注射组 (n=20) 、第三代腺病毒载体 (HDAd-NEP) 注射组 (n=20) 。病毒注射组分别经蛛网膜下腔注射病毒5×108 PFU, 对照组蛛网膜下腔注射相同容量生理盐水。
1.2.3 样本的获得和处理
各组分别于病毒或生理盐水注射前当天, 注射后1d、注射后3d、注射后7d、注射后14d随机挑选4只大鼠, 取眼眶静脉血1ml, 随后处死大鼠取脾脏, 脾脏即刻用流式细胞仪检测CD80表达情况。血样在室温放置2h后于1 000r/min离心20min, 取上清-20℃保存待测。
1.2.4 流式细胞仪操作过程
将新鲜脾脏在含有1640细胞培养液 (无血清、无抗体) 的培养皿中研磨成细胞悬液, 经过300目筛网过滤后, 1 000r/min离心5min, 弃去上清;用1×PBS 1ml重悬细胞, 离心 (1 000r/min, 5min) 、弃上清;细胞中加入封闭液50μl和CD80抗体2.5μl, 4℃孵育封闭15min;用1×PBS 1ml重悬细胞, 1 000r/min离心5min, 弃去上清;500μl PBS重悬细胞, 经过300目筛网过滤后上机检测。
1.2.5 ELISA检测
冻存的血清严格参照ELISA试剂盒说明书操作, 最终用酶标仪在450nm波长下测定吸光度 (OD值) , 根据同时检测并绘制的标准曲线计算样品血清中IL-2、IL-6、TNF-α、IgG等的浓度。
1.2.6 统计学处理
结果用SPSS10.0统计软件包分析, 各参数用均数±标准差 (MEAN±SD) 表示, 组间各资料用单因素方差分析进行统计处理, P<0.05 时认为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 IL-2水平的变化
在注射后1d、3d、7d、14d, 大鼠血清中IL-2的水平, Ad-NEP注射组高于HDAd-NEP注射组 (P<0.05) , 两组均高于对照组 (P<0.01) 。注射前 (0d) 各组无显著差异。病毒注射组IL-2的水平在3d时均达到峰值, 7d时开始下降。见图1A。
2.2 IL-6水平的变化
IL-6水平在1d、3d时, Ad-NEP注射组高于HDAd-NEP注射组 (P<0.05) , 两组均高于对照组 (P<0.01) , 其他时间点三组无显著差异。另外, 病毒注射组IL-6水平在1d时达到峰值, 3d时开始下降, 7d时基本回到基础水平。见图1B。
2.3 TNF-α水平的变化
TNF-α水平病毒注射组均出现两个峰值, 分别是1 d和7d, 在注射后1d、3d、7d、14d所有时间点的TNF-α水平Ad-NEP注射组均高于HDAd-NEP注射组 (P<0.05) , 而且两组均高于对照组 (P<0.01) 。在病毒或生理盐水注射前当天 (0d) , 三组无显著差异。见图1C。
2.4 IgG水平的变化
Ad-NEP注射组和HDAd-NEP注射组两组的IgG水平在1d时都有升高, 3d达到峰值, 14d开始下降。同时前者在病毒注射后各个时间点IgG水平高于后者 (P<0.05) 和对照组 (P<0.01) 。在0d各组无显著差异。见图1D。
2.5 脾脏细胞CD80表达
流式结果显示, 1d、3d、7d、14d各个时间点, 病毒注射组脾脏细胞中CD80分子都有较高的表达量, 但Ad-NEP注射组高于HDAd-NEP注射组 (P<0.05) 和对照组 (P<0.01) 。在0d各组无显著差异。 (由于篇幅有限文章只显示了7d结果) 见图2。
** 表示p<0.01, * 表示p<0.05;* Ad-NEP与HDAd-NEP比较;** Ad-NEP/HDAd-NEP与Control比较。
3 讨论
腺病毒进入机体后首先启动的是固有免疫系统, 这一反应可维持1～3d, 主要是嗜中性粒细胞、单核巨噬细胞、NK细胞等的激活并吞噬进入机体的病毒载体及转导产物, 同时促进炎症反应的激活, 分泌炎症因子如IL-6和TNF-α等[4]。从图1B和图1C可以看出, 在SD大鼠蛛网膜下腔注射病毒后1d, 两种载体都可引起IL-6和TNF-α的释放, Ad-NEP注射组两种炎症因子升高更加明显。这种现象可能的原因是第一代腺病毒载体进入机体后3h就开始复制和产生病毒蛋白, 但第三代载体由于去除了所有的病毒基因, 所以病毒复制量相对第一代要少的多[5]。到注射后3d时IL-6和TNF-α都开始下降, 但Ad-NEP注射组炎症因子水平仍高于HDAd-NEP注射组。值得一提的是, 从结果 (图1C) 中看到了TNF-α两个释放高峰, 分别在注射后1d和7d, 这与文献报道[6]相吻合。有研究认为, TNF-α的第二个分泌高峰与转基因表达达到高峰有关, 转基因表达达到高峰后可使机体出现二次固有免疫反应;同时可以看到HDAd-NEP注射组TNF-α水平在注射后7d时升高的幅度要大于Ad-NEP注射组, 这个现象可以解释为三代载体转导的基因产物表达量在7d时高于一代。另外, TNF-α也是诱导体液免疫的重要因子[7], 所以分泌也会相应增加。炎症因子IL-6的水平在注射后3d开始下降, 到7d几乎和对照组水平一致, 这可能与IL-6不是体液免疫的重要促进因子有关。
病毒进入机体不久适应性免疫全面启动, 适应性免疫又包括细胞免疫和体液免疫。细胞免疫系统中, IL-2主要由T细胞和NK细胞产生表现出显著的免疫增强作用, IL-2还是产生和维持记忆T细胞的关键因子之一。从实验的结果 (图1A) 看, 病毒注射后1d, Ad-NEP注射组和HDAd-NEP注射组的IL-2水平开始上升, 到3d达到高峰, 这可能是细胞免疫的激活, T细胞大量分化、增殖并释放IL-2, 同时IL-2也促进了T细胞分化。同时间点的IL-2水平, Ad-NEP注射组比HDAd-NEP注射组明显要高, 两组实验组都和对照组有统计学差异。另外T细胞激活和增殖至少需要两个信号, 其中第二信号即CD80分子 与T 细胞表面的CD28分子结合能诱导IL- 2 等淋巴因子的分泌, 是决定第一信号能否产生T细胞功能性激活的关键因素[8]。脾脏是免疫反应的主要器官, 也是CTL细胞产生的主要场所。实验流式细胞仪结果显示, 脾脏中CD80分子在两代病毒载体注射后3d表达量开始增加, 到7d到达高峰, 14d时已经下降, 同样CD80表达水平同时间点也是Ad-NEP注射组高 (图2只显示7d结果) 。综合对IL-2和CD80的检测结果分析, 可以认为Ad-NEP引起T细胞的增殖和分化也就是引发细胞免疫的能力是强于HDAd-NEP的。
机体体液免疫主要是针对病毒载体和转基因产物形成特异性中和抗体的过程。实验检测了大鼠注射病毒后血清中IgG的含量, 结果 (图1D) 显示两种载体在注射后3d、7d都有大量抗体产生, Ad-NEP组明显高于HDAd-NEP组和对照组。抗体的高水平分泌可维持到14d左右, 但HDAd-NEP组注射后7d和14d IgG的浓度变化不大, 这一点目前还没有发现类似的文献报道, 可能与HDAd-NEP组转基因产物持续表达有关。
另外, 从实验结果可以看出, HDAd-NEP组各项免疫相关指标与对照组也有统计学差异, 这说明第三代腺病毒载体也能引起免疫反应, 这与Matzinger 等提出的“危险”理论相一致。“危险”理论认为机体不区分自身和非自身的物质, 只区分有害和无害的物质。在长期的进化过程中, 组织已将腺病毒定义为“有害”物质, 因此病毒载体上携带很多“危险”信号, 一旦病毒载体进入机体内, 就可引起机体的免疫应答[9]。Kushwah R等也报道了第三代腺病毒载体经气管途径进入机体后, 可引起较强免疫反应[10]。但也有文献报道第三代腺病毒载体可以有效逃避腺病毒引起的免疫中和反应, 即使机体内存在针对腺病毒的抗体, 目的基因能可高效表达[11], 这一点需要我们进一步去研究和探讨。
综合以上实验结果, 可以得出结论第三代腺病毒载体的免疫原性要低于第一代载体, 但第三代腺病毒载体也能引起机体的固有和适应性免疫反应。这个结果有可喜的一面, 我们构建的病毒载体能够更好的用于基因治疗的研究;但由于其还能够引起一定的免疫反应, 同时又为我们指出了新的问题和研究方向, 也就是进一步研究和解决基因治疗载体的免疫原性问题。
参考文献
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[2]徐学武, 俞卫锋.第三代腺病毒载体的研究进展[J].生物技术, 2005, 15 () :79-82.
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[10]Kushwah R, Cao H, Hu J, et al.Characterization of Pulmonary T CellResponse to Helper-Dependent Adenoviral Vectors following Intranasal Deliv-ery[J].Immunol, 2008, 6:4098-4108.