血清电解质检验（精选4篇）
血清电解质检验 篇1
临床检验危机值是危及患者生命的患者检验标本中的极度异常的数据。如果发现检验数据极度异常, 应当对患者及时施以抢救, 争取及时地给予患者有效的治疗。建立检验数据危急值的报告制度在急诊抢救中非常重要[1]。血清电解质检验数据危急值有较好的临床效果, 报告如下。
1 资料与方法
1.1 一般资料
选取2012年1月～2012年12月入住我院的100例血清电解质检验危急值的患者。其中男62例, 女38例;年龄41～68 (55.5±10.1) 岁。其中>60岁的患者40例, 50～60岁的患者31例, <50岁的患者29例。其中19例合并糖尿病, 6例有肾病综合征, 38例毒蛇咬伤, 22例慢性酒精中毒, 5例有心肌梗死, 3例有冠心病, 2例有低钾血症, 5例有急慢性肠炎。
1.2 检验方法
抽取住院患者血液, 仪器使用梅州康立高科技公司生产的K￣Lite6H/AU电解质分析仪将标本分离出血清后急查电解质, 检验前对K￣Lite6H/AU电解质分析仪进行朗道标准校准。测试出K+、Na+、Cl-及Ca2+离子的危急值, 由检验科上报并总结, 由主诊医生会诊讨论治疗措施[2]。
1.3 评价指标
于治疗前后分别观察下列评价指标:患者血清K+的参考范围为3.5mmol/L～5.5mmol/L, <3.5mmol/L为低钾症, >5.5mmol/L为高钾症。参考2009年中国医院协会患者安全目标的要求和相关检验规定, 制定血清钾危急值标准为血清K+<2.8mmol/L、血清K+>6.5mmol/L。
1.4 统计学分析
采用SPSS 13.0统计软件对患者数据分析, 计量资料用表示, 患者组内、组间的比较采用t检验;计数资料用χ2检验, P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
检验结果显示的部分患者的血清电解质危急值及其范围见表1。
100例患者死亡9例, 患者死亡率为9%, 其中50岁以下死亡患者2例, 50～60岁死亡患者2例, 60岁以上死亡患者5例。男女患者的死亡比率为1.5:1.0。
注:血清K+<2.8mmol/L和血清K+>6.5mmol/L两组死亡率比较, P>0.05, 差异不具统计学意义。血清电解质钾无论出现K+<2.8mmol/L的危急值或者K+>6.5mmol/L的危急值均对患者的抢救有重要意义
3 讨论
“危急值”又叫紧急值或者警告值, 临床检验的“危急值”是指在检验结果出现的某些特殊异常的数据, 这些数据提示患者有可能病情危急, 有生命的危险, 一旦发现检验危急值, 检验医师应当立即报告临床医师并配合其进行及时处理, 防止患者出现病情恶化和生命危象[3]。“危急值”在急诊患者、ICU患者和手术的患者中得应用价值非常高, 在普通临床诊断中也有着重大的意义。配合临床实际病情制定出危急值能够正确掌握患者病情的变化, 有利于及时有效地对患者进行治疗。例如:当患者血清电解质K+>6.5mmol/L时, 患者容易出现心肌反应性降低而发生心跳骤停, 当患者血清电解质K+<2.8mmol/L时, 患者容易出现心肌反应性增高发生心律失常或者地高辛中毒, 因此检验人员将6.5mmol/L和2.8mmol/L这两个数值制定为血钾的血清电解质危急值[4]。2012年1月～2012年6月入住我院的100例血清电解质检验危急值的患者中60岁以上的死亡患者5例, 50～60岁的死亡患者2例子, 50岁以下的死亡患者2例。50岁以下的死亡患者为入院时候即存在毒蛇咬伤且均有多年糖尿病史, 50～60岁的死亡患者在出现血清电解质钾危急值的时候均合并有慢性酒精中毒。血清电解质钾无论出现K+<2.8mmol/L的危急值或者K+>6.5mmol/L的危急值均对患者的抢救有重要意义。制定患者血清电解质危急值检验的相关制度, 提高对血清电解质危急值的重视程度和抢救措施的有效性可以有效提高对患者生命抢救成功的几率[5]。血清电解质危急值在患者的临床和抢救过程中起着不可忽视的作用, 应当予以重视和临床推广应用。
参考文献
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人参细粉对大鼠血清电解质的影响 篇2
1材料与方法
1.1 材料
1.1.1 试剂与仪器 人参细粉(人工种植),由吉林紫鑫药业股份有限公司提供;日本东芝TBA-120FR型全自动生化分析仪。
1.1.2 实验动物 健康Wistar大鼠,雌雄各40只,生产许可证号:SCXK-(吉)-2007-0003。体重(75～85)g,由吉林大学白求恩医学动物实验中心提供的清洁级动物。
1.1.3 饲养条件 清洁级实验动物环境设施合格证号,吉动设字10-1005,实验动物使用许可证号:SYXK(吉)2010-0011;温度20～22℃,湿度55%～65%;基础饲料由长春市亿斯实验动物技术有限责任公司提供,生产许可证号:SCXK-(吉)2010-0001。
1.1.4 试验方法 动物购入后饲养5 d,随机分为对照组及3个受试物组,每组雌雄各30只。以厂家推荐日摄入量为3.0 g,即3.0 g/60 kg BW,相当于0.05 g/kg BW。高剂量组为以成人日摄入量的160倍计,即8.0 g/kg BW,中剂量组6.5 g/kg BW相当于成人摄入量的130倍,低剂量组5.0 g/kg BW相当于成人摄入量的100倍。将高、中、低剂量组受试物均匀掺入基础饲料中(采用逐渐扩大、充分混匀、反复过筛的方法),含量依次为8.0%、6.5%、5.0%。对照组喂饲基础饲料。连续观察180 d。由于高剂量组受试物的比例大于5%,故饲料中补充酪蛋白后进行180 d喂养试验。具体方法如下:高剂量占饲料比例8%,超出规定最大量3%,饲料蛋白含量为22.4%,则高剂量饲料按0.672%比例加入酪蛋白;中剂量占饲料比例6.5%,超出规定最大量1.5%,饲料蛋白含量为22.4%,则高剂量饲料按0.336%比例加入酪蛋白。
1.1.5 血清电解质测定 第45、90、180天,随机选取各剂量组10只大鼠,用1%戊巴比妥钠生理盐水溶液,按5 ml/kg BW腹腔注射麻醉后,下腔静脉采血,进行血清电解质指标检测。
1.1.6 数据统计 采用单因素方差分析,方差齐时,各组间两两比较用LSD方法,不齐时,各组间两两比较采用Tamhane’s方法。所有数据的统计处理均采用SPSS 11.5统计软件进行。
2结果
人参细粉对不同时期大鼠血清电解质的影响,表1～表3结果显示,与对照组比较人参细粉对不同时期大鼠血清电解质Na+、K+、Cl浓度差异无统计学意义(P>0.05)。
注:1)与第45天相比较,P<0.05。
但表1结果显示,随着喂养大鼠人参细粉时间的延长,对照组和高、中、低剂量组的Na+浓度逐渐升高,喂养第45天大鼠血清Na+浓度与第180天的血清Na+浓度比较差异有统计学意义(P<0.05)。
3讨论
实验动物正常的血液生理生化指标在生物学医学研究中是重要的指标,是判断健康动物状态和选择合格动物的标准,是病理学、毒理学等研究的重要参考数据。体液中的钠、钾、氯均具有重要的生理功能。钾离子是细胞内液的主要阳离子,心肌和神经肌肉都需要有相对恒定的钾离子浓度来维持正常的应激性;钠离子是细胞外液的主要阳离子,血清钠离子浓度对维持血液容量具有重要作用;氯离子是细胞外液中的主要阴离子,总体氯仅有30%存在于细胞内液。氯离了不仅维持细胞外液渗透压,还对酸碱平衡有影响。氯离子亦受肾脏调节。血清离子的变化可触发一系列生理、生化反应[3]。
从笔者测定的结果来看,随着年龄增长,大鼠的Na+离子浓度增多,K+、Cl-离子浓度逐渐升高后降低,表明机体已经出现了衰老的迹象,由于组织细胞中Na+-K+-ATPase和Ca2+-Mg2+-ATPase存在于细胞膜上,通过水解ATP逆化学梯度转运离子,是维持神经元、心肌细胞兴奋传导、突触传导细胞内环境的物质基础。随着衰老进程的进行,机体内产生大量的自由基,可直接氧化酶蛋白氨基酸残基,使酶失活,从而引起细胞内Ca2+的积聚,加重细胞内环境的紊乱,从而进一步加重细胞的损伤[4]。有研究表明长期食用人参花蕾对实验动物体重、食物利用率无明显影响;仅1.0 g/kg剂量的血BUN水平有影响,但无生理学意义;其余各剂量组各生化指标为发生显著性变化[5]。人参花蕾提取物对大鼠无母体毒性、胚胎毒性和致畸作用[6]。本实验结果显示,与对照组比较人参细粉对不同时期大鼠血清电解质Na+、K+、Cl浓度差异无统计学意义(P>0.05)。但从表1的结果显示,随着喂养人参细粉时间的延长,对照组和高、中、低剂量组的Na+浓度逐渐升高,喂养第45天与第180天的血清Na+浓度比较有显著差别(P<0.05)。说明长期食用人参对机体电解质不产生明显变化,可以作为毒理学安全评价的辅助指标之一。其功能学研究及其确切机理尚需进一步探讨。
摘要：目的 观察饲喂人参细粉能否对大鼠血清电解质产生影响。方法 240只大鼠按体重随机分为对照组及人参细粉高剂量组(8.0 g/kg)、中剂量组(6.5 g/kg)、低剂量组(5.0 g/kg),每组雌雄各30只。分别于实验第45、90、180天下腔静脉采血,进行血清电解质指标检测。结果 与对照组比较,饲喂不同时间人参细粉对大鼠血清电解质Na+、K+、Cl-无显著区别(P>0.05)。随着喂养大鼠人参细粉的时间延长,对照组和高、中、低剂量组的Na+浓度逐渐升高,喂养第45天与第180天的大鼠血清Na+浓度比较差异有统计学意义(P<0.05)。结论长期食用人参细粉对正常大鼠机体电解质不产生明显影响。可以作为毒理学安全评价的辅助指标之一。
关键词：人参细粉,电解质,大鼠
参考文献
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(3)傅伟龙.动物生理学(M).北京:中国农业科技出版社,2001:173.
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血清电解质检验 篇3
1对象与方法
1.1对象
2010年1月至2011年4月我院产后大出血,输注红细胞悬液≥10U和同时输注血浆1000m L以上产妇共32例。年龄24 ~ 41岁,平均31.8岁。平均失血量5730m L,平均输注红细胞15.5U,血小板1.25人份、冷沉淀16U、血浆2056.67m L。血液成分来源 :广西南宁市中心血站采供,血液制品均在有效期内。经同型盐水配血及微柱凝胶法或聚凝胺法配血相合后输注,输注过程无不良反应。
1.2方法
抽取患者输血前、输血中(取多次检测均值)与输血后 ( 停止输血24h内 ) 的静脉血标本,以奥林帕斯贝克曼Au2700全自动生化分析仪进行分析,电极间接法检测电解质,允许误差2.5%。
1.3统计学处理
PEMS 3.1软件包两样品均数及两样本率两两比较,P < 0.05为差异有统计学意义。
2结果
输血前17例为低钙血症,输血中25例发生低钙血症,输血后26例发生低钙血症,输血中血钾平均值低于输血前,差异有统计学意义。其余电解质比较差异无统计学意义,输血前后血清电解质浓度比较见表1。与输血前比较输血中、输血后血清钾浓度(mmol/L)上升病例和下降病例见表2。32例产妇输血中6例正常血钾产妇发生低钾血症,32例产妇中共22例发生血钾下降。6例血钾上升,1例原血钾偏高产妇(5.6mmol/L)输血后血钾为6.3mmol/L,明显高于正常参考值。输血后11例血钾下降,18例血钾上升。
* 与输血前比较 P>0.05。
3讨论
大量输血是抢救产后大出血休克患者不可缺少的手段,但大量输血后可能导致严重的输血不良反应,如低体温、循环系统超负荷、凝血功能障碍、电解质紊乱和酸中毒等并发症。本文主要讨论产后大出血大量输血后对电解质的影响。电解质的功能主要是维持体液渗透压和酸碱平衡 ;维持红细胞静息电位,参与动作电位形成 ;参与新陈代谢和生理功能活动。电解质代谢紊乱,可使全身各器官系统特别是心血管系统、神经系统的生理功能和机体物质代谢发生障碍,严重时可导致死亡[11]。
3.1血钾变化
高钾血症与低钾血症,均为钾代谢紊乱,血清钾浓度高于5.5mmol/L称为高钾血症(hyperkalemia),低于3.5mmol/L称为低钾血症(hypokalemia)[12]。传统认为,短期大量输注库存血可导致血清钾浓度升高,本组输血中、输血后分别有18.75%(6/32)、34.38%(11/32)病例血清钾浓度较输血前高,但上升幅度低,差异无统计学意义。引起血钾升高主要原因[13,14]是由于细胞内钾离子浓度是细胞外的30倍,红细胞制品在经过采集、制备、保存、运输过程中会造成一定数量的红细胞破坏,红细胞内钾离子转移到血液中。另库血在(4±2)℃保存期间,血浆钾离子浓度及酸性产物随保存时间延长而增加。潘晓红等[15,16,17]认为大量输血后发生高钾血症与大量输血无相关性。本组病例输血中、输血后血清钾浓度整体上均较输血前低,以输血中时浓度最低,P<0.05,有统计学意义。本组病例输血中有68.75%(22/32)病例血钾浓度下降、输血后有56.25%(18/32)病例血钾较输血前降低,由此可见大量输血后病人血钾下降较多见。低钾血症或血钾降低与下列因素有关 :(1)血液稀释 :大量输血多同时输入大量液体,血浆使血液明显稀释,因此虽然输入大量高钾库血,一经稀释仍可低于正常值 ;(2) 钾的内转移 :机体的代谢能力很强,当库存血输入体内,血液温度升高,K+Na+ 泵激活,丢失钾的红细胞重新吸钾排钠,血浆中钾离子大量移入红细胞内,因而血钾降低 ;(3) 枸橼酸钠在肝脏代谢 :由于库存血中含有大量抗凝剂枸橼酸盐,其输入人体后在代谢中产生碳酸氢钠,使血液p H值升高,引起代谢性碱中毒,钾离子一方面进入红细胞内以换取氢离子,一方面代替氢离子经肾脏排出,血钾降低 ;(4) 应激性激素的分泌 :机体严重创伤、出血及手术均可导致机体的应激发生反应增强,肾上腺素分泌增多,同时肾素 - 血管紧张素 - 醛固酮系统被激活,醛固酮分泌增加,使肾保钠排钾作用增强,钾随尿液大量排出,本组病例中剖宫产21例、5例次全子宫切除术、2例全宫切除术 ;另发生低血钾可能与病人输血前存在低镁血症有关 :本文输血后6例由正常血钾变为低钾血症的产妇,有5例输血前为低镁血症(浓度< 0.67mmol/L)。低镁血症可干扰甲状旁腺的效应,导致低钙血症,亦引起低钾血症[11]。镁缺失常常引起低钾血症,髓袢升支的钾重吸收有赖于肾小管上皮细胞中的Na+-K+-ATR酶,而这种酶又需Mg2+的激活,缺镁时,可能因为细胞内Mg2+缺失而使此酶失活,因而该处钾重吸收发生障碍而致失钾。
3.2血钙变化
本研究53.13%(17/32)产妇在输血前血钙低于正常参考值(2.03-2.45 mmol/L),即低血钙,输血后有81.25%(26/32)低血钙。本组病例,输血中、输血后,血清钙浓度较输血前下降,但下降幅度不明显,P﹥0.05,可发现低血钙病人有增多趋势,与输血前相比,P < 0.05。这可能是病人在输血前血钙就普遍偏低,输入体内的枸橼酸很快进入三羧酸循环代谢,最终产生碳酸氢钠,加上病人出血性休克,肝脏缺血缺氧,功能进一步降低,输入库血过多引起三羧酸循环超负荷,多余的枸橼酸根离子在体内积存与血中游离钙结合,形成“可溶性络合物”,使血钙降低,另本组病例输血中、输血后血清钾浓度普遍较输血前低,也有相当比例(37.5%)病人有输血前就是低血镁,这也是引起血钙降低的原因。
3.3血镁的改变
本组病例妊高症21例,发生率相对高,妊高症常使血钙血镁降低[18],本组产妇输血前就有37.5%(12/32)血镁低于正常参考值(0.67-1.04mmol/L),输血后有34.38%(11/32)。但经统计学分析本组病例血镁输血前、输血后改变不明显,因此大量输血对血镁影响不大。
血清电解质检验 篇4
1 材料和方法
1.1 仪器及试剂
罗氏P 800生化分析系统 (A系统) 和 康立AFT-500D电解质分析系统 (B系统) , 两者均使用离子选择电极法。A系统使用的是罗氏公司原装配套的校准品和质控品, 其检测结果深得医生信赖, 多年参加省室间质评, 结果良好, 因而为对比方法 (用X表示) , B系统使用的康立公司的配套校准品, 质控品是贝克曼的高、中、低值质控品, 为实验方法 (用Y表示) 。
1.2 比对用标本
本院门诊和住院病人的新鲜血清, 不采用有明显黄疸、溶血和脂浊的标本, 样本浓度尽可能宽的, 分布在仪器检测范围之内。
1.3 新鲜混合血清
采取10名健康人的新鲜全血5毫升, 凝固后分离血清混匀, 分成2份。
1.4 校准与比对
两个实验室用各自配套试剂进行维护、保养和性能鉴定, 确认仪器状态良好, 按EP9-A2的要求, 每天取8份新鲜血清分别在两个检测系统上进行平行双份测定, 测定顺序为1～8及8～1, 记录结果, 得到40组数据[1]。用A检测系统检测新鲜混合血清标本K、Na、Cl项目各20次, 进行统计处理后确定其平均值, 即为该新鲜混合血清的定值。B检测系统用新鲜混合血清校正后[2], A、B两检测系统再次按上述方法进行比对测定, 得到40组数据。
2 数据收集及处理
2.1 不采用有明显人为误差的结果。
2.2 按EP9-A2要求, 对数据进行方法内及方法间的离群点检验。
2.3 计算线性回归方程:Y=bX+a。
2.4 计算方法间的系统误差[3]:根据临床使用要求, 可在各个临床决定水平浓度 (Xc) 处, 了解Y方法引入后相对于X方法的系统误差 (Bc) , Bc= (b-1) Xc+a。
2.5 以美国临床实验室修正法规 (CLIA’88) 对室间评估的允许误差 (Ea) 为判断依据 由方法学比较评估的Bc≤1/2Ea, 认为实验方法与对比方法相当, 偏差可以接受, 当Bc>1/2Ea, 则认为实验方法与对比方法不相当, 偏差不能被接受[3]。
2.6 统计学处理。所得数据用Excel2003统计分析软件做相关回归分析及偏差评估。
3 结果
3.1 两个实验室未用新鲜混合血清校准前的相关系数及直线回归方程见表1, 各项目在给定的医学决定水平 (XC) 处的系统误差及临床可接受性能的评价见表2。
3.2 两个实验室用新鲜混合血清校准后的相关系数及直线回归方程见表3.各项目在给定的医学决定水平 (XC) 处的系统误差及临床可接受性能的评价见表4。
4 讨论
电解质是常见的急诊检测项目, 其中K、Na是属于危急值项目之一, 因此, 其结果的准确性直接关系到病人的安危。调查发现, 即使室间质评成绩较好的单位用各自的校准品校准后的检测结果的离散度仍然较大[4], 本实验利用健康人的新鲜混合血清来校正电解质仪, 用比较系统对新鲜混合血清进行定值, 再用该定值血清来校正实验系统, 并参照EP9-A文件进行校正前后比对研究。校准前, K、Na、Cl在两检测系统的比对结果中只有K的结果在3个医学决定水平处均被临床所接受, 而Na、Cl各在1个医学决定水平处不被临床所接受。在用新鲜混合血清进行校正后, K, Na, Cl在两检测系统的检测结果的可比性明显提高 (<1/3Ea) 。新鲜混合血清消除了基质效应的影响, 但是不能长期保存, 本法的适用具有地区性的特点。因此, 在一定的地区范围, 定期利用新鲜血清定值来校正不同的检测系统, 减小差异, 解决同一地区检测结果一致性, 使同一地区的检验报告单可以通用的一种简便而实用的方法。
参考文献
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