妊娠山羊（共3篇）
妊娠山羊 篇1
绒山羊是以产绒为主的山羊品种。做好绒山羊妊娠期饲养管理工作, 处理好产绒和产羔之间关系, 可做到母肥羔壮, 减少流产和死胎, 提高经济效益。
一、妊娠前期饲养管理
绒山羊是短日照季节性发情动物, 每年8～11月是绒毛生长的旺盛时期, 同时也是母羊发情配种的集中阶段。母羊妊娠前期胎儿生长发育增重较慢, 母羊所摄取的营养主要用来维持自身生存、增加绒毛生长, 并且由于妊娠, 母羊同化作用加强, 对绒毛生长和体重增加都具有促进作用。母羊妊娠前3个月所需营养总量虽然不高, 但如果降低饲料营养水平, 不仅误了母羊配种, 以后再增加营养, 其产绒成绩也非常有限。
1.补充饲料添加剂妊娠前期主要是做好营养物质的合理供应、预防流产和应激。维生素、矿物质和微量元素要科学添加, 舍饲的绒山羊在此阶段应多喂些青绿多汁饲料, 如胡萝卜、优质苜蓿青草和青绿碱草等, 在饲料饮水中按有关说明书的规定量混入添加剂, 也可通过吊挂添加剂盐砖的方式进行补饲, 任母羊自由舔食。
2.做好夏季防暑和冬季防寒工作
高温高寒气候持续3天以上, 都会引起母羊不适, 使其内分泌紊乱, 高温还会使母羊体内胚胎早期夭折。在夏天要做好防暑降温, 冬季做好防寒保暖, 气温过低不在舍外放牧。此时绒山羊体表已有一定的绒毛生长, 绒毛生长的程度在伏天不利于羊体散热, 在冬天高寒气候下保温性又有限, 所以, 还要特别注意防流保胎工作。
3.不喂发霉变质和有毒饲料发霉变质和有毒饲料会使性染色体发生突变, 导致母羊产畸胎和死胎, 并且会对绒山羊机体产生一系列不良反应, 引起早产、流产和引发各类传染病。
4.仔细区分妊娠母羊和非妊娠母羊由于妊娠前期胎儿比较小, 从肉眼很难辩别出来, 个别妊娠母羊有时也会出现发情现象, 而有一部份非妊娠母羊在配种后不妊娠的状态下也可能不出现发情现象。将妊娠母羊误当发情的非妊娠母羊处理, 会在输精时输精枪枪头刺激子宫颈口, 引起母羊子宫收缩, 导致流产;将非妊娠母羊误当妊娠羊处理, 会导致羊群整体空怀率上升, 而影响绒山羊养殖效益。所以在妊娠前期特别是妊娠早期, 做好妊娠羊与非妊娠羊的区分非常重要。从外表和行为来看, 妊娠母羊新陈代谢旺盛, 食欲增强, 消化能力提高;体重增加明显, 毛色光润、膘肥体壮;而非妊娠母羊则无此特点。从生殖道检查来看, 怀孕初期阴门紧闭, 阴唇收缩, 阴道黏膜的颜色苍白, 而未怀孕的发情母羊则完全相反。
二、妊娠后期饲养管理
1.注意精粗饲料比例妊娠后期胎儿的重量增加明显, 体积增大, 引起腹腔压力升高, 造成母羊行动不便。此时粗饲料所占比例不宜太高, 应增加精料在日粮中的比例, 防止母羊采食过多粗饲料, 造成子宫内压增加, 引起压迫性流产。精粗饲料的比例以1∶1为宜。酸度过高的青贮类饲料母羊采食后会引起流产, 所以妊娠后期的母羊要控制此类饲料的给量, 或者尽量不喂。
2.防止机械性和物理性流产母羊在进出圈门、放牧、喂料时要有专人控制, 防止母羊拥挤造成流产;在运动和放牧时, 要控制母羊的行走路线和行走速度, 防止滑、跌、闪、抻引起流产。羊群回圈后, 要根据羊圈面积合理安排羊只类别和数量, 不同年龄的母羊占用不同的羊舍面积, 成年母羊为1.5～2平方米;弱羊与弱羊同圈, 壮羊与壮羊一圈;对好斗性强且角尖锋利的母羊应适当锯掉角尖;冬季尽量饮温水或刚打出来的深井水, 不让母羊喝冷水或冰碴水, 更不能让妊娠母羊吃雪。
3.适度运动适度运动可以增加妊娠母羊体质, 减少发生难产的比率, 同时也可以有效地减少死弱胎。妊娠前期的母羊可与未配种的空怀母羊一样按空怀母羊的标准运动, 每天运动5～8公里, 时间为1～2小时;妊娠后期的母羊可以采取人为哄赶慢走, 每天运动3～5公里, 时间为1～2小时。母羊即将分娩时应停止人为运动, 将母羊留在羊圈中, 任其自由活动。
4.做好防疫妊娠后期注射羊“三联四防”疫苗, 使其所产生的抗体对羔羊具有有效的保护作用。但在妊娠期不能注射“口蹄疫”疫苗, 因其刺激性较强, 易引起妊娠羊流产, 应在配种前注射此疫苗。
妊娠山羊 篇2
本手术采用最先进的医用硬膜外导管进行插管, 建立山羊胎儿血管插管试验模型。为研究动物和人类胎儿生理学、病理学、药理学、麻醉学、免疫学等建立基础, 同时也可对妊娠期动物的饲料成分对胎儿发育的影响进行详细的研究[3,4]。对动物胎儿施行血管插管术, 可在术中、术后较长时间内连续采集胎儿血液样本, 系统地观察其动态变化, 为以后的科学研究打下基础。
1 材料与方法
1.1试验动物
妊娠120 d的健康山羊1只, 体重37.5 kg, 购入后圈养1周。每天饲喂玉米粒200 g, 干草和水自由饮取。
1.2试验材料
1.2.1器械
显微外科器械和常规腹腔械各1套, 一次性使用麻醉穿刺包, 22G静脉留置针, PGA带针缝合线。
1.2.2药品
消炎痛栓剂, 阿托品, 2%盐酸普鲁卡因, 肝素625 IU/m L, 孕酮注射液, 846合剂, 甲硝唑注射液, 头孢曲松钠, 生理盐水, 能量合剂。
1.2.3胎儿血管插管
穿刺针, 导管, 导管接头, 药液过滤器, 空气过滤器。
1.3手术步骤
1.3.1术前准备
术前2 d母羊肌肉注射孕酮 (0.5 mg/kg, 2次/d) 。清洗被毛, 腰荐部、右肷部及腹底部推毛备皮。
1.3.2麻醉
先用1粒消炎痛栓剂塞入直肠[5], 注射阿托品1 mg, 5 min后注射半量846 (0.04 m L/kg, 1.3 m L) 进行基础麻醉, 稳定后进行硬膜外穿刺, 并导入硬膜外导管10 cm, 注入2%盐酸普鲁卡因 (首先注入3 m L进行初步麻醉, 5 min后推入12 m L维持量, 术中补充5 m L) 进行硬膜外腔麻醉[6,7]。
1.3.3解剖基础
山羊是子叶型胎盘, 胎膜由卵黄囊、羊膜、尿膜、绒毛膜构成。山羊的羊水有400~1 200 m L, 尿囊液500~1 500 m L。山羊的脐带较短, 脐血管为2条动脉和2条静脉, 疏松地缠绕在一起, 动脉弹性很强, 静脉弹性很弱。
1.3.4胎儿脐动脉插管术
山羊麻醉后, 仰卧位保定 (头低尾高降低腹压) , 腹底部彻底消毒隔离后, 在剑状软骨至耻骨前缘腹白线做25~30 cm切口, 打开腹腔, 暴露子宫。将子宫牵角拉到出创外, 确定胎儿位置。在子宫小弯处切开子宫, 用组织钳提起子宫创缘暴露绒毛膜-羊膜, 插入静脉留置针抽出100 m L羊水放在39.5℃恒温水浴锅中保存, 剪开绒毛膜-羊膜暴露脐索, 用组织钳将切口边缘提起, 防止羊水溢出。将脐索牵引出后, 辨清其动静脉走向后, 助手暂时用手夹住脐带近心端, 用穿刺针穿刺脐动脉, 将预先充满抗凝剂的导管顺入其中12 cm退出穿刺针, 暂时将导管接头连接上。用PGA连续缝合绒毛膜-羊膜后注入预先抽出的羊水100 m L。子宫内撒入1 g氨苄, 用PGA全层连续缝合子宫, 再库兴氏缝合 (导管应包埋一段距离, 加强固定导管在子宫上) 。将子宫送回腹腔, 在母羊的右侧腹壁用穿刺针穿刺, 将导管连接头取下, 将导管导出母羊体外, 撤出穿刺针剪掉多余的导管, 将导管接头, 药液过滤器, 空气过滤器连接到导管上, 将导管缝合固定在母羊右侧腹壁上。冲洗腹腔, 缝合腹腔。创口和导管出用自粘辅料粘贴。
1.3.5术后护理
术后5 d内全身应用抗生素控制感染, 同时根据羊的全身状况静脉输注水电解质液、能量合剂、氨基酸等。术后按每千克体重0.5 mg肌注孕酮2次/d。
术后3 d内, 每6~8 h用抗凝剂抽吸冲洗导管1次防止导管堵塞。3 d后改为2次/d, 每次抽吸冲洗或采样时先弃去回抽液, 以注射器中见到血液为标准, 再重新注入抗凝剂, 注入的量应略大于导管容量。取胎儿血样时不宜抽吸过快。反复抽吸时, 注意不能有空气注入, 每次采样量以0.5~1 m L为宜。抽吸时应将药液过滤器, 空气过滤器取下。
2 结果
分娩前可以定时从导管中采集到血液。术后1周, 山羊分娩产出1只体重为1.5 kg、体长44 cm的健康羔羊。导管保留在母羊腹壁上, 取出导管未见弯折。
可以采用医用硬膜外导管建立羊胎儿动脉插管模型。此手术方案安全可靠, 可操作性强。羊胎儿动脉插管模型见图1和图2。
3 讨论
3.1导管的选择
本试验的预试验是在妊娠兔、犬个体进行, 对各种类型的插管组合进行比较, 最终选用医用硬膜外麻醉导管建立山羊胎儿脐动脉插管模型, 配套的各种部件保证插管手术的顺利进行, 尤其是导管接头、药液过滤器及空气过滤器能维持导管内负压, 便于采集血液, 提高药物注入的安全性, 也大大地降低了通过导管外源感染的可能。本试验的选用医用硬膜外麻醉导管, 其柔初性好, 不易对血管壁造成损伤, 能够更好地跟随血管位置的变化。
3.2肝素注射频率和浓度的确定
手术后24~48 h是最易发生凝血的时间, 故在此时间段应勤换肝素, 可防止因凝血而导致的血管阻塞。肝素浓度选用625 IU/m L浓度[1]。在每次注射肝素时, 要先用注射器回抽, 直到看到血液, 然后再注入肝素。注入肝素的量应根据留置管的容积而定。术后护理过程中, 回抽见少量血液, 若发现管有堵塞情况, 可适量增加肝素用量。
3.3手术操作的注意事项
严格的无菌手术操作和术中对胎儿尽可能少的刺激是保证术后胎儿存活的重要条件。手术过程中羊水是不可避免的损失, 耗损过多会影响胎儿的生长发育, 若不慎将羊膜囊和尿液囊弄破, 会使羊水同胎尿液混在一起, 可直接或间接导致胎儿死亡或流产。本试验在切开绒毛膜-羊膜前, 将羊水部分抽出, 放置恒温水浴锅中保存, 在缝合绒毛膜-羊膜后, 再将抽出的羊水注回羊膜腔。手术过程中, 使用消炎痛栓剂, 减少母羊的努责反应, 保持母羊头低尾高, 减少腹腔脏器对子宫的压力。插管过程中要熟练掌握导管的运用和插管操作技术避免动脉反复多次插管而致损伤。缝合时, 应注意逐层缝合, 分别缝合绒毛膜-尿囊膜和子宫, 以免分娩后胎衣不下。
术后补给适当的抗生素以控制术后感染, 适量的能量合剂有助于胎儿生长。
摘要：为了优化山羊胎儿脐动脉插管模型, 本试验采用医用硬膜外导管对单胎妊娠120日龄的山羊进行胎儿脐动脉插管手术, 对其手术途径、导管类型、插管方法、麻醉和术后护理进行研究。术后可顺利采集胎儿血液样本, 1周后母山羊正常分娩。本试验建立的山羊胎儿脐动脉插管模型的手术方案, 可为胎儿疾病的诊断及临床用药等提供试验基础。
关键词：妊娠山羊,胎儿,脐动脉,胎儿动脉插管术
参考文献
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妊娠山羊 篇3
动物妊娠期是一个特殊的生理期,受到多种因素的调节。随着内分泌学、生殖生理学和生殖免疫学的发展,人们已经充分认识到母畜机体的免疫状态,在妊娠识别和维持中起到了很重要的作用。适当地补硒可提高母畜的受胎率,降低空怀率、流产率、死胎率和新生幼畜死亡率,使幼畜成活率、窝产仔数(多胎动物)、出生重和日增重提高;补硒也可使母禽产蛋率、孵化率提高,并能降低无精蛋和早死胚的死亡率;硒和维生素E协同添加还可以提高肉鸡肉品质量[4]。山西省岢岚县处于贫硒带,牧草和饲料的硒含量在0.05mg/kg以下,饲养在该区的山羊长期饲用低硒的牧草和饲料,羔羊生长缓慢,并且还有因白肌病死亡的病例,严重影响了当地养羊业的发展。本试验研究了纳米硒对岢岚绒山羊妊娠母羊免疫力的影响,旨在为纳米硒在畜牧生产中的应用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 试验地点
山西省岢岚种羊场,位于忻州市岢岚县。
1.2 试验动物与饲养管理
选择体重相近、体格健壮2005年的受孕母山羊100只,随机分为2组,每组50只,分栏饲喂,定时定点放牧。
1.3 试验设计及日粮配制
试验周期为180 d,时间从2009年11月至2010年4月。饲养试验分为预试期和正试期。1个月预试期,进行羊角标记分组、预饲和常规免疫。预试结束后,在母畜发情期进行人工授精,每组受孕的50只母羊进入正试期,饲喂基础日粮组为对照组(C),在基础日粮中添加0.5 mg/kg的Nano-Se为试验组(Se)。试验日粮的配制参照美国NRC(2007版),母山羊营养需要配合而成的颗粒饲料,由玉米、豆粕、麸皮、葵花饼等为主要原料组成,基础日粮配方及营养水平见表1和表2。
注:(1)向每千克基础日粮中提供:Fe SO4·7H2O30 mg,Mn SO4·H2O 15 mg,Zn SO4·7H2O 25 mg,Cu SO4·5H2O20 mg,Co Cl2·6H2O 0.2 mg,KI 0.5 mg,维生素A 1 500 I U,维生素D 400 I U,维生素E 220 I U;(2)除消化能为计算值外,其他全部为实测值。
注:(1)向每千克基础日粮中提供:Fe SO4·7H2O40 mg,Mn SO4·H2O 26 mg,Zn SO4·7H2O 35 mg,Cu SO4·5H2O20 mg,Co Cl2·6H2O 0.2 mg,KI 0.6 mg,维生素A 1 800 I U,维生素D 500 I U,维生素E 260 I U;(2)除消化能为计算值外,其他全部为实测值。
1.4 血清指标的分析测定
进入正试期后,每月静脉采血,分装入2个10 ml离心管中,常温下迅速离心(15 min,3 000 r/min)分离血清,置于-20℃冰箱中保存待测。
血清中,血清球蛋白(GLO)、免疫球蛋白Ig A、Ig G和Ig M用免疫透射比浊法,采用迈瑞BC3000生化分析仪进行测定。
1.5 全血指标的分析测定
进入正试期后,每月静脉采血,3%的EDTA抗凝,分装入2个5 ml离心管中,置于4℃冰箱中短期保存待测。淋巴细胞(LYW)、单核细胞(MON)、异型淋巴细胞(ALY)、嗜中性粒细胞(NEU)、嗜酸性粒细胞(EOS)和嗜碱性粒细胞(BAS)的检测利用全自动血细胞分析仪进行分析。
1.6 数据统计和分析
数据利用spss 17.0软件包进行单因素方差分析,数据均以表示。
2 结果
2.1 日粮中添加Se对免疫细胞的影响
近年来,硒与动物、人体健康的关系受到广泛关注。一般认为,动物和人体在生长发育及衰老过程中,由于脂质过氧化作用而不断产生自由基,过多的自由基能损害机体细胞的结构和功能,从而损伤细胞的各种生理功能,包括免疫能力。硒是机体内的主要抗氧化酶的必需组分,通过过氧化物酶阻止自由基产生的脂质过氧化反应,使免疫细胞免受损害,从而促进免疫功能;硒还能作用于巯基化合物,刺激各种细胞和组织分裂的能力,从而调节免疫细胞的增殖和分化。免疫细胞是机体的防卫细胞,在机体内更新的速度比较快,它参与机体对细菌、病毒等异物入侵时的免疫过程,免疫细胞各项指标的变化是机体免疫力变化的标志。
2.1.1 日粮中添加Se对淋巴细胞(LYW)、单核细胞(MON)和异型淋巴细胞(ALY)百分比的影响
见图1。
注:不同字母上标示差异显著(P<0.05),相同字母上标示差异不显著(P>0.05),下同。
图1结果显示,日粮中添加Se后,Se组全血中淋巴细胞和单核细胞的百分比显著高于C组(P<0.05),Se组异型淋巴细胞的百分比显著低于C组(P<0.05)。
2.1.2 日粮中添加Se对嗜中性(NEU)、嗜酸性(EOS)和嗜碱性(BAS)粒细胞百分比的影响
见图2。
图2结果显示,日粮中添加Se后,Se组全血中嗜中性粒细胞的含量显著增高(P<0.05),嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞也有所增高,但与C组差异不显著(P>0.05)。
2.2 日粮中添加Se对血清球蛋白(GLO,g/L)和免疫球蛋白Ig A、Ig G和Ig M(g/L)含量的影响
见图3和图4。
图3结果显示,日粮中添加Se后,Se组血清中血清球蛋白含量显著增高(P<0.05)。
图4结果显示,Se组血清中免疫球蛋白Ig G和Ig M的含量都显著高于C组(P<0.05)。两组Ig A含量差异不显著(P>0.05)。
3 讨论
3.1 日粮中添加Se对非特异性免疫的影响
单核细胞是血液中最大的血细胞,是巨噬细胞的前身,是动物机体免疫应答过程中一种重要的细胞,主要通过分泌细胞因子和细胞的表面分子参与免疫应答。许多试验表明,缺硒状态下尽管单核细胞的吞噬功能不受影响,但其杀菌能力降低。因为单核细胞首先要游走和接近病原体,然后才能吞噬和杀伤它们,硒对于趋化、吞噬和杀灭三大过程均有不同程度的影响,硒缺乏可显著抑制单核细胞的数量和杀伤微生物的活性,Wurgastuti[1]研究发现硒缺乏可显著抑制孕期母猪单核细胞的数量和杀伤微生物的活性,而补硒后数量和活性都有所增强。本试验结果表明,日粮中添加硒后,单核细胞的数量显著高于C组(P<0.05)。
中性粒细胞是机体对抗入侵病菌、特别是急性化脓性细菌的最重要的防卫系统。当中性粒细胞数显著减少时,机体发生感染的机会明显增高。本试验结果表明,Se组嗜中性粒细胞百分比显著高于C组(P<0.05)。嗜碱性粒细胞的颗粒内含有组织胺、肝素和过敏性慢反应物质等,与机体的过敏反应、抗凝血和毛细血管的通透性有直接关系,嗜碱性细胞偏高会导致免疫系统功能的下降。而嗜酸性粒细胞主要是限制嗜碱性粒细胞的活性,嗜酸性粒细胞可产生前列腺素E,使嗜碱性粒细胞合成释放生物活性物质的过程受到抑制,还可吞噬嗜碱性粒细胞所排出的颗粒,使其中含有的生物活性物质不能发挥作用,同时释放组胺酶等酶类,破坏嗜碱性粒细胞所释放的组胺等活性物质。本试验的结果分析,在日粮中添加Se后,Se组与C组的嗜碱性和嗜酸性粒细胞百分含量虽差异不显著(P>0.05),但Se组明显比C组高,这可能和妊娠的特殊生理期有关,说明妊娠期的母羊机体对外界刺激的敏感性明显增强,但由于嗜酸性粒细胞的百分含量也同时提高,因此可以消除嗜碱性粒细胞升高时对机体的损害。
3.2 日粮中添加Se对特异性免疫的影响
硒能增强机体免疫功能,促进T淋巴细胞的增殖、分化,同时增强T淋巴细胞的细胞毒作用。Roy[5]等人以2.0 mg/kg剂量给衰老的大鼠补硒8周,结果细胞毒性T细胞的杀肿瘤细胞活性提高到未补硒的青年大鼠水平。Ilback[6]等发现柯萨奇病毒CB3诱导的感染性心脏病的Ba Il/c雌鼠,补硒后在血和脾中NK细胞轻度增加,且活性较补硒前增加35%。硒还能促进T、B淋巴细胞分泌细胞因子,增强机体的免疫功能。本试验结果显示,日粮中添加硒后,Se组淋巴细胞数量显著高于C组(P<0.05)。异型淋巴细胞是淋巴细胞的变异,与动物生理病变和病毒感染直接相关,异型淋巴细胞百分比升高,动物的免疫系统功能受到损害。本试验结果可以看出,Se组异型淋巴细胞数量显著低于C组(P<0.05)。
血清球蛋白(GLO)是血清蛋白质的一部分,能与外来的特异性抗原起免疫反应而保护机体,GLO是参与机体体液免疫的主要物质和构成抗体的主要成分,因此它的升高从另一方面表明补硒能刺激抗体生成,增强机体的抵抗力。据报道,硒可刺激机体产生抗体,提高血清球蛋白(GLO)含量,增强血清杀菌活性。从试验结果可以得出,日粮添加硒显著提高了血清GLO的含量(P<0.05),并且免疫球蛋白Ig G和Ig M的含量也显著提高(P<0.05),与前人研究结果一致。
妊娠期是母羊的特殊生理期,除了自身的生产性状会受到影响,还会直接影响到后代的各项生产指标和生理性状,试验中,日粮中添加了硒,通过对血液中各项免疫指标的检测来反应母羊的生理、病理变化。试验结果显示,Se的添加明显提高了血液中与免疫力密切相关的单核细胞、嗜中性粒细胞和淋巴细胞的数量,血清中GLO的含量和各种免疫球蛋白的含量也明显增多,从而增强了妊娠母羊的免疫系统功能。
近些年来,畜禽业中不断爆发大面积的传染病,除了给畜禽养殖业造成惨重的损失外,病毒基因组还表现出了很强的变异率,许多病毒可以在不同的物种之间进行感染,从前几年的人畜共患的高致病性禽流感(H5N1)病毒到近年人畜共患猪流感(H1N1)病毒在全世界范围的大肆传播,引起越来越多的人对这一现象进行深刻的思索,以往传统的养殖观念——以增加产量和满足供应为目的,忽视了动物福利和动物保健,已不能满足新型绿色养殖业的发展要求。必须采用科学、营养及其保健的饲养管理模式,加强动物机体免疫力,增强机体对疾病的抵抗力,降低已感染病毒基因组的突变率,从而预防畜禽传染病和流行病的频繁发生。
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