血站检验（共6篇）
血站检验 篇1
献血者血液检测的大部分项目都是围绕输血传染病的筛选而展开的, 而检验标本的采集与处理直接关系到血液检测结果的准确性和可靠性, 为保证给临床提供安全、有效的血液制品, 必须正确、规范化地采集和处理血液标本。
1 血液标本的采集与质量要求
1.1 采集
静脉采集和血袋留取的血液标本, 须沿管壁缓慢注入加抗凝剂的试管中, 注入后立即轻轻颠倒混匀。标本采集后应尽快送往实验室, 采集的现场温度以18～22℃为适宜。外出采集血液标本后标本管必须加塞管口向上、垂直放置尽量减少标本管震动, 以防止标本溶血、污染和外溅。
1.2 质量要求
必须用高质量的标本——新鲜的、完全抗凝的、正常储存的、无溶血的标本。使用不完全抗凝的血标本会导致HBsAg、TP、抗-HCV、抗-HIV漏检或假阳性, 而且容易堵塞洗板机出水孔。这是因为不完全抗凝的血标本纤维蛋白为完全析出, 离心后易在分层处形成纤维蛋白薄膜或膜状物, 板孔中加入这种血浆可形成凝集物, 造成洗板困难, 进而堵塞洗板机出水孔;HBs Ag和TP是一步夹心法, 如果未加入或加入的血浆形成凝集物, 就会导致假阳性;而抗-HCV和抗-HIV都是间接法, 即便未加入标本, 也不会出现假阳性, 从而导致漏检。
2 标本运输时应注意的问题
标本应尽快从采集现场运送至实验室。如果运送距离较远, 不能及时送到实验室, 应先储存于2～8℃的冷藏箱中。运送过程中注意标本的包装, 保持管口封闭, 向上垂直放置。长途运输中温度变化较大, 可用密封性能好的容器, 加干冰防止温度超过要求。特殊标本 (如抗-HIV初筛阳性标本) 运送宜用坚固的标本容器, 最好使用制作精良的塑料容器, 一般需要三层包装 (在标本容器外加防水塑料袋并密封热合, 再放入对物理性损坏具有防护作用的外包装中, 标本包装要贴上明确的标签) 。
3 标本交接及离心前后的处理。
3.1 标本送到实验室后要有专人履行交接手续, 并仔细检查标本的留样量是否充足, 核对标本试管的数量。标本离心前应放2～8℃冰箱储存。
3.2 标本离心时应注意离心时间和相对离心力 (RCF) , 一般离心转速 (3000～4000) r/min, RCF为 (1000～2000) ×g, 时间5～10min。标本离心后应注意观察有无溶血、抗凝是否完全, 溶血标本应重新留取标本, 抗凝不完全的标本应放37℃水浴箱30min后离心, 这样可使纤维蛋白原完全沉积, 以保证试验准确。
4 标本的保存
18～22℃室温中, 分离的血浆标本的保存不应>8h, 试验于8h内不能完成时, 标本应置2～8℃保存。48h内不能完成的试验项目或血浆标本, 应于-20℃保存。低温可大大降低血浆代谢速度, 抑制其代谢活动[1]。标本不可反复冻融。
4.2 检验标本试验后要仔细核对, 并按检验日期加盖后分别保存。标本的保存期应在全血有效期内, 血浆标本的保存期同新鲜冰冻血浆的保存期, 期限为1年。保存温度为-20℃以下, 以备患者输血后发生输血反应等问题时查找原因。
4.3 对试验后存放过期的血标本要进行消毒及销毁处理并做详细书面记录。
关键词：血站检验科,检验标本,采集/处理
参考文献
[1]徐树良, 张益红.4℃常规储存下成人血和脐血动态观察[J].中国输血杂志, 2001, 14 (1) :50.
血站检验室仪器比对结果分析 篇2
1材料与方法
1.1标本来源
1.1.1酶免仪器:无偿献血者血液标本80份、弱阳性质控品3份、试剂盒内阳性对照2份。
1.1.2生化仪器:无偿献血者血液标本至少30份、不同分析物浓度质控品至少10份。
1.2设备:帝肯公司TECAN Freedom EVOlyzer全自动酶免分析仪1和TECAN Freedom EVOlyzer200全自动酶免分析仪2;德国Rochi公司罗氏cobas C311和cobas C111全自动生化分析仪。
1.3检测试剂:HBsAg (珠海丽珠2015010108、北京万泰B20141029);抗-HCV (珠海丽珠2015020108、北京万泰CS20141206);抗-HIV (珠海丽珠2014123208、北京万泰H20141208);抗-TP (北京万泰N20150101、厦门新创2015017502);ALT (C311德国罗氏609980-01,C111德国罗氏608264-01)。质控品由北京康彻思坦有限公司提供。
1.4检测环境:温度:18～27℃、湿度30%～70%。
1.5步骤与方法
1.5.1酶免仪器比对:将实验标本按相应规程在全自动酶免分析仪1上进行检测,完毕后立即在全自动酶免分析仪2上进行检测,按要求判读结果,并进行统计分析(表1、表2)。
1.5.2生化仪器比对:将实验标本按照递增和递减的顺序在C311全自动生化分析仪(参考方法)上进行检测2次,完毕后立即在C111 (比较方法)上进行检测2次,进行统计分析(图1、2、3)
1.5.3统计
1.5.3.1配对设计四格表χ2检验:判断两台仪器结果是否具有统计学意义。
1.5.3.2两台仪器检测结果的符合性估计。
1.5.3.3以参考方法所有结果为x值,比较方法所有结果为y值,绘制x-y散点图(图1)。
1.5.3.4以参考方法每个标本两次检测结果的均值为x值,比较方法每个标本两次检测结果的均值为y值,绘制x-y散点图(图2)。
1.5.3.5线性回归计算:每份标本用两个方法进行两次测定,组成成对数据。采用所有成对数据进行直线回归,得回归方程y=bx+a (图3)。y为比较方法,x为参考方法,如了解Y方法引用后相对于X方法在临床决定水平浓度Xc处的系统误差(SE)。SE=|(b-1) xc+a|
1.5.3.6可接受标准:R≥0.975或R2≥0.95。医学决定水平处新方法引用的系统误差小于CLIA88允许误差的1/2。
2结果
2.1酶免仪器比对
2.1.1配对设计四格表χ2检验。
x2=(ad-bc)2/n/(a+c)(b+d)(a+b)(c+d)=0x20.05(1)=3.84,x2<x20.05(1),则P>0.05,两台仪器结果不一致部分不具有统计学意义。
2.1.2两台仪器检测结果的符合性估计
符合性=100%[((a+d)/n]=100%
2.2生化仪器比对
2.2.1初步判断线性回归状况
2.2.1.1所有结果x-y散点图(图1)显示:y=1.0023x,R2=0.9987;
2.2.1.2均值x-y散点图(图2)显示:y=0.9576x,R2=0.9992;
两图无明显差异。说明方法比较试验的随机误差对比较结果影响不大。
2.2.2线性回归计算:结果描述
2.2.3可接受标准:回归方程y=0.9575x其中b=0.9575,a=0
则系统误差SE=|(b-)xc+a|=1.7
查CLIA88中临界系统误差△SEc=6.84,SE<1/2ΔSEc,且R2>0.95,表明结果可以接受。
3讨论
酶免仪器比对:χ2检验P>0.05,说明两台仪器检测结果无差异;同时,两台仪器符合性为100%,表明两台仪器比对结果一致,即用其中的任何一台仪器进行检验,都能保证检测结果的真实有效。生化仪器比对结果显示,所有结果X-Y散点图y=1.0023x,R2=0.9987;与图2均值X-Y散点图y=0.9576x,R2=0.9992两图无明显差异,说明方法比较试验的随机误差对比较结果影响不大。两台全自动生化分析仪比对结果的相关系数(R)均高于《血站技术操作规程(2012版)》规定的可接受标准(R≥0.975或R2≥0.95),虽然两台仪器存在系统误差,SE=1.7,而查CLIA88中临界系统误差△SEc=6.84,则SE<1/2ΔSEc,表明存在的系统误差是可以接受,线性回归方法判断两台仪器的检测结果符合要求。
血站实验室检测系统的评估仅限于厂家或代理商的校准,在使用过程中能否达到预期效果一直无法持续监控[3],仪器的老化会带来不易察觉的系统误差,在日常的检测工作中,更需要使用平行比对试验对检测系统进行验证,以确保检测结果的准确。经比对确认,锦州市中心血站四台仪器均符合质量体系要求,结果准确可靠。
参考文献
[1]葛红卫,等.FAME全自动酶免分析系统的应用[J].中国输血杂志,1998,11(3):122-124.
[2]张瑶婵,等.设备确认存在的问题与分析[J].中国输血杂志,2010,23(11):909-910.
血站实验室检验标本的采集与处理 篇3
关键词：血站,实验室,检验标本,采集,处理
血液的检验就是能够保证血液制品能够安全有效的应用和收集。但是为了能够保证结果的严谨性必须保证检验过程中的质量监控。只有正确规范的对血液标本进行采集和处理, 才能够保证质量监控的有效进行和检验结果的有效性。
1 血液标本的采集
1.1 静脉采血
对血液的采集一般是通过该方式进行采血, 一般的献血者进行体检化验时用肘正中静脉、肘前静脉以及前臂正中静脉等[1]。
1.2 采用毛细血管采血
该方法使用于微量的血液检验, 一般适用于金标法初筛的采血者。对对象的才学部位一般在指端或者耳垂等。对采集对象的皮肤深度应该要<2.5mm。保证采血部位无炎症以及水肿等。
1.3 血液标本
血清、全血及血浆。
2 血液标本的处理
2.1 标本的采取质量要求
对标本的质量要求必须是新鲜的并且完全凝结的能够正常的储存的标本[2]。如果标本没有完全的凝固会导致TP、抗-HIV以及HBsAg漏检或者假阳性等。我们在工作中发现如果变笨没有完全的凝结就会导致纤维蛋白析出, 所以在离心之后就会形成纤维蛋白薄膜。在板孔中如果加入这种血清能够形成一种凝聚物从而导致洗板困难, 导致洗板机堵塞。对HBsAg和TP一步夹心法, 加入或者没有加入的血浆形成宁继武就会导致假阳性。但是抗HI是间接法即使没有加入标本, 也不会出现这种假阳性, 但是会导致漏检。
2.2 对标本进行处理
应该尽早的把血液的标本血清从全血中能够自然的分离。一般都是在采血之后的两个小时内把血清或者血浆进行分离, 一般采取离心的方法。而血浆的标本应该采用带有抗凝剂的标本收集管进行收集。采血之后应该立即颠倒混匀, 在5～10min之后把血浆分离出。
2.3 对标本的冷藏
对全血的标本不需要特殊的冷藏, 如果需要应该立即冷藏于2～10℃的冰箱中进行保存[3]。
2.4 对标本采集现场的处理
标本一旦采集之后应该尽快的送入实验室, 对采集现场的温度最好为18～22℃。对在外出采集的血液标本必须在采集后加塞, 并且管口朝上, 垂直的放置。保证标本管静止的放置, 放置其被污染和溶血及外溅等。
2.5 标本采集时应注意的问题
(1) 如果采集对象的血为溶血或者是脂血就会影响一些指标的测定, 所以井盖拒绝采用或者对采集对象重新的采集。 (2) 当采集的标本应用于质量的检测时应该保证其为无菌操作, 在留取标本之后应该将血袋进行密封, 把剩余的血袋放在冷藏箱中进行保存, 这样在无菌试验失败之后可以找取其他的原因或者用于其他的检测项目等。 (3) 当对全血的PH进行测定时, 应该迅速的把标本在全血中取出, 即刻测定, 减少全血的标本在空气中的暴露时间, 导致测定的PH偏高等[4]。 (4) 对于血型以及交叉配血所使用的标本应该使用血袋上所标有的标本, 应该注意保温, 防止引起凝集反应。 (5) 无偿献血采集标本应尽量在当天完成实验或将标本置于4℃的冰箱中贮存, 但不能超过2d, 血清ALT活性在4℃可稳定3d。
3 标本运输中应注意的问题
在血液标本的运输中应该保证标本迅速的从现场运送到实验室。如果出现运送的距离比较远, 可以把采集的标本在现场中进行分离, 然后把血清或者血浆进行储存或者送入实验室等。在运输的过程中一定要保证管口的封闭, 保证放置垂直。对于一些特殊的标本如抗-HIV阳性的标本要坚固密封, 之后再放入具有防护性的外包装中, 在包装上要加上标签。如果运输中的温度变化较大, 应该选择密封胶好的容器, 使用干冰放置升温。
4 标本交接及离心前后的处理
4.1 首次进行标本的复检需要有专人进行交接, 仔细的对标本的标签、试管及标号进行核对。
保证其正确以及是否符合规定的稀释等。等检查核对正确之后双方都需要签字, 并进行登记其标本的数量级日期和来源等。对检查的标本观察留样量是否充足有无溶血等。如果出现乳糜血的现象应该拒收, 对标本进行记录。
4.2 对标本离心前应该进行分类, 冷藏的标本在分离前应该保持在2～8℃。
4.3 对标本的离心应该一次性的完成。
但是在工作中, 为了防止出现假阳性结果有的时候需要进行再次的离心标本。在本站接受初检的标本之后放置在37℃的水浴中, 10min后进行离心。在林欣后的2min再进行离心, 这样能够保证纤维蛋白的沉积完全, 从而是检验的结果更加准确。所以在初检标本离心时在2～3min最佳。
5 标本的保存
5.1 标本应该保存在22～25℃的室温中, 分离的血浆标本应该保持至少
8h, 如果试验在8h内不能够完全结束, 标本应该保存在2～8℃的储存箱中。如果试验在48h内不能结束则应该在-20℃的环境中保存。温度低能够降低血浆的代谢, 标本不能够反复的冻融。
5.2 试验之后对标本仔细的核对, 对其检验日期进行保存。
血液标本的保存期为全血或成分血使用后二年。保存的温度一般在-20℃, 这样能够防止问题出现而易找出原因。
5.3 对试验之后存放过期的标本应该进行销毁或者消毒, 并进行书面记录等。
参考文献
[1]陈平, 邹昌新, 何秉洪, 等.6血站的全面质量管理及意义的探讨[J].6中国输血杂志, 2010, 14 (4) :263.
[2]林婴, 高加良, 杨明清.ATL值的影响因素和对献血者检测ALT的意义[J].中国输血杂志, 2009, 12 (1) :38.
[3]中华人民共和国卫生部.中国输血技术操作规程 (血站部分) [M].天津:科学技术出版社, 2008:19.
血站检验 篇4
1 资料与方法
1.1 调查的对象
参与本市中心血站“血型血清学检验室间质量评价”的100家血站中,血液中心22家,所占比例为22%;中心血站27家,所占比例为27%;县(区)血站21家,所占比例为21%;军队血站20家,所占比例为20%;中心血库10家,所占比例为10%。
1.2 调查的方式
向上述单位寄发调查问卷,各个单位填写后再寄回本处,由本血站对数据情况进行统计和分析。
1.3 调查的内容
各个血站内检查人员的相关情况、血站血型血清学检验开展的项目、血站血型血清学检验使用的方式和技术、血站血型血清学检验使用的设备情况和相关工作开展的情况。
2 结果
2.1 检查人员相关情况
在血液中心中高级人数为1,中级人数为4,初级人数为2;学历本科及以上人数为3,大专人数为2,中专人数为5;中心血站高级人数为1,中级人数为3,初级人数为4;学历本科及以上人数为0,大专人数为1,中专人数为4;县(区)血站高级人数为0,中级人数为3,初级人数为2;学历本科及以上人数为2,大专人数为2,中专人数为3;军队血站高级人数为1,中级人数为3,初级人数为4;学历本科及以上人数为2,大专人数为5,中专人数为1;中心血库高级人数为2,中级人数为0,初级人数为5;学历本[下转32页][上接31页]科及以上人数为3,大专人数为4,中专人数为1。平均数比为7人。
2.2 检验开展的项目
ABO正反定型血液中心、中心血站、县(区)血站、军队血站、中心血库所占的比例均为100%;在Rh(D)检查方面血液中心、中心血站、县(区)血站、军队血站、中心血库所占的比例100%、96.5%、95.3%、97.4%、100%;抗体的鉴定筛查方面血液中心、中心血站、县(区)血站、军队血站、中心血库所占的比例100%、43.6%、23.4%、79%、13.2%、Rh(-)患者配血、白细胞血型方面血液中心、中心血站、县(区)血站、军队血站、中心血库所占的比例为100%、63.4%、100%、100%、14.2%。
3 讨论
输血治疗是临床中常用的,也是效果较好的一种治疗方式,血站血型血清学的检验能够为治疗提供参考的依据。但是,此种治疗方式虽然能够挽回危急患者的性命,但是如果不能够保证血站血型血清学检验的质量和准确性会使患者发生输血反应情况,严重的还会危及到生命[1]。
从日常检验工作的具体情况上来看,血站血型血清学检验中存在着以下几个方面的问题:1、血站血型血清学检验的相关工作人员职称和学历情况较低,从本次研究的结果上来看,初级职称和大专、中专学历的工作人员较多[2];2、在相关服务项目方面,在某些单位经常会出现开展的少或者不开的情况,与世界先进的水平相比还存在着较大的差距[3];3、检测的手段和技术较为落后,多为手工和人眼判读,自动化程度较低,因此检测的工作效率较低;4、在部分单位中会出现未经国家批准使用的检验试剂,另外实验室的标准和质量控制问题也比较突出[4]。
综上所述,站在未来的角度上来看,血站血型血清学检验中开展的项目、检验使用的主要技术、相关工作的开展的内容已经不能够满足现在日常工作中的需求,检验的方式和检验的仪器仍然存在落后的情况。另外在血型检验过程中还存在对质量控制不够严密的现象,因此笔者认为在今后的血站血型血清学检验工作中需要加强对血站血型血清学检验的质量控制力度,在最大程度上保证输血治疗的安全。上述发现具有极强的临床应用价值,值得在临床中大力推广应用。
摘要：目的:探讨血站血型血清学检验状况的现状情况,为不断提高血站血型血清学检验的质量控制提供参考。方法:使用问卷调查的方式向参与本市中心血站”血型血清学检验室间质量评价”的100家血站发出邀请,并寄发调查问卷,对其回寄的数据进行统计分析。结果:本次研究中100份问卷均有效回收,回收的凡率为100%。在血站血型血清学检验中开展的项目主要有:ABO正反定型、Rh(D)检查、抗体的鉴定设筛查、交叉配血、疑难血型、Rh(-)患者配血、白细胞血型、血小板血型、移植配型、亲子鉴定、新生儿溶血病鉴定。结论:血站血型血清学检验中开展的项目、检验使用的主要技术、相关工作的开展的内容虽然能够满足现在日常工作中的需求,但是检验的方式和检验的仪器仍然比较落后,并且在血型检验过程中还存在对质量控制不够严密的情况,因此在今后的工作中需要加强控制的力度,在最大程度上保证输血治疗的安全。
关键词：血站血型血清学检验,状况,调查研究,检验技术
参考文献
[1]梁义安,蒋利星,秦次贵等.基因分型在疑难血型中的诊断意义[J].中国实验诊断学,2013,17(6):1138-1139.
[2]方爱英.血型血清学检验状况的调查研究[J].中外健康文摘,2012,09(4):36-37.
[3]邢文革,马嵘,郑怀竞等.国内血站血型血清学检验的状况调查[J].中国输血杂志,2004,17(3):188-190.
血站检验 篇5
1 资料与方法
1.1 一般资料
在该次研究中主要对于2015年1月—2016年1月期间该站所采集的误差标本共计100份, 在误差样本中主要来源包括无偿献血的献血者, 且该次血液检查者均为健康体征, 体温保持在37.5℃左右。
1.2 方法
将100份误差血液样本送至临床科室, 通过临床科室与检验科室两者对于误差样本共同进行回顾性分析, 在分析过程中找出导致样本产生误差的原因。
1.3 统计方法
对于使血液检验标本出现误差的原因进行统计分析, 将分析得出的多种原因例数输入检测数据库, 并且使用专业的统计学软件, 即SPSS 20.0统计学软件对于标本进行统计学分析。计数资料采用百分率 (%) 表示, 接受χ2检验, P<0.05, 则组间差异有统计学意义。
2 研究结果
血液检查标本误差产生的原因主要包括标本采集原因、患者自身原因、标本送检原因以及标本检测等4个方面, 在该次研究中共计选取100份血液检查误差标本, 其中标本采集原因为20份, 占到总体的20%;标本检测原因为16份, 占到总体的16%;患者自身原因为25份, 占到总体的25%;标本送检原因共计39份, 占到总体的39%。见表1, 表2。
3 讨论
在血站对于血液样本进行检测的过程中, 由于存在标本采集原因、患者自身原因、标本送检原因以及标本检测等4个方面的原因[3], 导致血液样本误差的出现, 在该次研究中的100份血液误差标本中, 分别都是由以上4个方面的原因引起, 这种状况对于血液的正常使用和检验造成了很大的影响。在该文中所分析出的数据分别为抽血时间过长所占的比重为9%, 血液量过少所占的比重为11%, 标本处理不规范所占的比重为5%, 抗凝血管使用有误所占的比重为3%, 检测不及时所占的比重为8%, 患者检测前进食所占的比重为17%, 患者处于生理期间所占的比重为5%, 送检时间过长所占的比重为31%, 标本经过剧烈晃动所占的比重为3%;根据相关报道的研究结果对比发现, 魏彦刚[4]指出在血液检验标本误差中其误差原因来自于送检时间过长所占的比重为29.7%, 检测时间不及时所占的比重为17.86%, 刘洪涛[5]的研究表明患者检测前进食所占的比重为19.64%, 患者处于生理期间所占的比重为8.9%, 血液量过少所占的比重为7.1%;而蒋作富等人[6]的研究表明, 标本处理不当所占的比重为1.29%, 抗凝管使用有误所占的比重为5.71%, 采集后没有进行及时检测所占的比重为11.43%, 宋泽琴等人[7]的研究表明:抽血时间过长、血液量少、送检时间长等也是造成误差的重要原因, 根据其报道, 抽血时间过长所占的比重为5.71%, 血液量过少所占的比重为17.14%, 送检时间过长所占的比重为21.43%, 杨峰在报道中指出, 标本和申请单不符多占得比重为4.29%, 标本被剧烈晃动所占的比重为8.57%, 患者抽血前进食所占的比重为15.71%, 患者处于生理期间所占的比重为5.71%, 其所得出的标本误差的比重大致相同, 即在所有的研究论述结果中重点原因和次要原因所得出的结论基本一致。即主要原因是由于标本采集原因、患者自身原因、标本送检原因以及标本检测等4个方面所引起, 因此血站应该从以下4个方面入手, 积极采取相应的预防措施以便于能够有效减少血液样本误差的情况, 为血液检测的准确程度有效提高做出一定的贡献。主要可以通过以下5个方面进行分析和讨论。
3.1 预防血液标本采集前的误差
在患者进行血液采集之前, 医护人员应该详细询问患者的相关情况和了解注意事项, 对于可能影响血液采集正确程度的要素要提前进行避免, 同时对于患者的用药以及生理情况进行相应的了解, 避开患者的生理期。在进行血液采集之前, 患者需要保持12 h以上的空腹时间, 另外患者不能在采血之前进行大量的剧烈运动, 都则会造成血液中的钾、钠离子的含量发生变化, 如果患者之前进行过剧烈运动, 则需要经过0.5 h左右的休息才能够采集其血液。
3.2 预防血液标本采集中的误差
在血液采集的过程中最为重要的是采集人员的操作水平以及工作态度。在进行血液采集之前, 需要检查注射器和试管的状态, 严禁出现损坏现象, 同时要避免血液样本与空气之间的接触。在采集血液时一定要避开患者有炎症或者其他损伤的肢体。同时所采集的标本血液量需要符合相关的规定, 不能过少或过多, 另外在采集之后要将抗凝剂与血液进行充分的混合, 混合时注意动作要保持轻缓[8]。
3.3 预防血液标本送检过程中的误差
在采集完血液之后, 应该将其立即送至检验科, 不能人为的拖延血液送检的时间, 否则会加大血液检验的误差情况, 同时在运输的过程中不能对于样本进行距离晃动, 同时要避免其长时间的直接接触阳光。
3.4 预防血液标本检测的误差
在对于血液标本进行检测的过程中, 需要对其进行分类, 从而保证满足血液样本的储存条件。在保存血液标本时, 避免出现晃动和倾斜的现象, 以免发生溶血的情况, 另外对于长时间保存的标本, 需要对于经过离心处理才能够进行储藏。除此之外对于用于检测血液所需的仪器, 需要对其进行定期的保养和检修校准, 在对其进行校准之前需要进行严格彻底的清洗工作, 以避免由于血液或者是残留蛋白等物质导致校准结果出现偏差, 影响日后的监测工作需求[9]。
3.5 对于血液标准管理建立相应的管理制度
在血站的日常管理工作中要对于采血、验血以及检测结果之间建立完善的监督制度。在采血的过程中要对于采血人员进行相关的培训工作, 对其采血过程和操作标准进行一定的监督和规范, 其中主要包括按压、换针、消毒以及抽血等环节和步骤, 最终重要的是将患者的档案以及其抽血样本进行严格配对之后再送入检验科进行监测;其次在对于血液检测的过程中需要至少配备3名以上的工作人员进行验血操作, 并且在这个过程中需要配备相应的监督人员进行及时的检查和指导工作;最后对于血液的检查操作进行相应的建筑, 如果发现血液的检测标本不符合规定要求应该及时将其送回并进行重新检测[10]。
综上所述, 血站需要通过标本采集、患者自身、标本送检以及标本检测等4个方面进行血液样本误差的预防, 以便能够有效提高血液检测样本的正确率, 从而有效提高血站血液检测的可靠程度。
摘要：目的 分析血站血液检验标本误差的原因, 进而提出对于血液检测标本误差进行预防的策略和方法 。方法对于2015年1月—2016年1月期间我站所采集的误差标本共计100份, 对这些误差标本产生的原因进行分析, 进而提出相应的预防措施;结果 经过对于100份误差样本进行研究和分析发现, 出现误差的主要原因包括以下几个方面:标本采集原因 (20%) 、患者自身原因 (25%) 、标本送检原因 (39%) 以及标本检测原因 (16%) 。具体因素中排名前3的是送检时间过长 (31%) 、患者在检测前进食 (17%) 、血液量过少 (11%) 。结论 血液检验样本的准确程度对于血液检测具有重要的意义, 其误差样本的原因包括各个方面, 在血液检测的过程中规范各个环节和操作, 能够有效提高血液检测样本的正确率, 从而有效提高血站血液检测的可靠程度。
关键词：血液检测样本,误差原因分析,预防误差的策略探究
参考文献
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血站检验 篇6
关键词：实验室,质量控制图,检验数据,质量控制
实验室内质量控制包括实验室的基础工作 (检验方法的选择, 试剂和纯水的纯化, 容器、量器的校准, 仪器设备的定期检定等) , 空白实验, 检出限的测量, 校准曲线的绘制和检验, 平行样品分析, 绘制质量控制图等。这是实验室内质量控制的常规方法, 目的在于提高分析质量, 保证基本数据的正确可靠。要使血站实验室内质量控制卓有成效, 应注重检验分析人员的业务素质和技术水平的提高, 在按照血站血液检验项目规定方法和某方法达到满意的精密度和准确度的前提下, 正确绘制和应用实验室内质量控制图来分析控制检验数据质量尤为重要, 也是经常性分析质量控制的基本内容。实验室内质量控制图分为精密度控制图和准确度控制图。
1 精密度控制图
1.1 平均值控制图
一般情况下, 控制样品的检测值应在的上、下附近波动, 若检测值对应的点在上、下警告线之间区域内, 可认为测定过程质量处在控制中, 常规样品的报告可靠。若对应点在同侧警告限和控制限之间, 应引起注意, 提示分析质量开始变劣, 可能存在“失控”倾向, 应进行初步检查, 并采取相应的校正措施;若对应点在上、下控制限外, 可认为质量失控, 常规样品的报告不能认为可靠, 需立即查明原因, 采取措施纠正后, 并重新测定此次质控的全部样品。当检测值对应点回落在警告线内, 检验分析质量已得到控制, 再测定常规样品, 必要时发出更正报告。
平均值控制图是用单份控制样品重复测定而绘制的, 因此给出的信息较少。
1.2
均数-极差控制图 (控制图)
2 准确度控制图
对于成分复杂的样品, 仅使用精密度控制图, 不易控制样品中干扰分析方法的多种因素。在实际工作中还要同时绘制准确度控制图。由于准确度常用回收率反映, 因此, 准确度控制图即为回收率控制图。
2.1 数据的收集与计算
回收率可按下述两种方法测定: (1) 在日常分析工作中, 取每日样品数的10%~20%, 加入已知量的标准物质, 做成加标控制样品, 经测定后, 按P= (样品加标准物后的测定值-样品的测定值) 加入标准物的量×100%计算回收率。 (2) 用人工合成的标准样品作为控制样品, 每天测定1次, 按P=测定值/已知值×100%计算回收率。
2.2 绘制回收率控制图
绘制回收率控制图时, 收集20次控制样品或加标样品的测定数据, 先计算出回收率 (P) , 再计算出平均回收率和回收率的标准差 (sp) 。根据计算结果绘制控制图。
回收率控制图的组成内容为: (1) 中心线为, 上警告限为, 下警告限为, 上控制限为, 下控制限为-3sp。
2.3 回收率控制图的使用
日常工作中, 在测定样品的同时, 测定加标控制样品或人工合成的标准控制样品, 计算出回收率, 点于回收率控制图上, 按前述标准判断分析方法是否处于控制状态。
2.4 用加标样品测定回收率时应注意的问题
(1) 根据样品中被测组分的浓度和方法的测定范围确定加标量, 本底值高的样品可加本底值一半量的标准物, 加标后的总量应在分析方法上限的0.5~0.9倍。 (2) 通常情况下中、高浓度可使用同一个回收率控制图, 但低浓度有时不适用。因此, 测定有些项目, 低浓度时应另行绘制与其浓度近似的控制图。 (3) 在日常工作中, 精密度和准确度的核对工作常同时进行。如果控制样品, 按每日样品数的10%~20%做2份平行样品, 一份加标样品, 将平行样品的测定结果点于控制图上, 以核对精密度;将加标样品测得的回收率点于回收率控制图上, 以核对准确度。既可检查精密度又可检查准确度。另外, 当控制样品测定的处在控制状态下的数据积累多了以后, 每增加20个数据为一个单元, 可与原始结果一起重新计算x¯值和s值, 再校正原来的控制图, 以不断提高控制图的准确度和灵敏度, 直至中心线和控制限的位置基本稳定为止。
3 室内质控判断标准
当检验数据对应的点在上、下控制限之间, 说明只有正常的偶然误差存在, 称测定过程“在控制状态”;若有数据出现在控制限以外, 则说明有大于正常偶然误差的因素存在, 并称“失控”, 应找出原因加以校正。
3.1 判断“在控制状态”的标准
检验数据对应的点位于中心线附近, 上、下警告限之间的区域内。如果点超出上、下警告限, 但仍在上、下控制限之间, 虽然表示还“在控制状态”但提示分析质量开始变劣, 存在“失控”倾向, 应进行初步检查, 并采取相应的校正措施。
在点基本随机排列的情况下, 符合下列条件之一, 可认为分析过程“在控制状态”: (1) 连续25点全部在上、下控制限内。 (2) 连续25点, 在上、下控制限外的不超过1点。 (3) 连续100点, 在上、下控制限外的不超过2点。
值得注意的是, 对于控制限外的点, 需要找出异常原因 (即系统误差) , 并加以处理。
3.2 判断“失控”的标准
(1) 落在范围内的点数应约占总点数的68%, 如落在此范围内的点数少于50%, 则分布不合适, 此控制图不可靠。 (2) 如出现连续5点有不断上升或下降趋势时, 要注意该分析工作的操作方法;如出现连续6点有不断上升或下降趋势时, 要开始调查原因;如出现连续7点有不断或下降趋势, 就判断为有失控倾向, 需采取措施加以纠正。 (3) 中心线一侧连续出现如下情况, 即判断为有异常:连续7点在中心线一侧;连续11点中至少有10点在中心线一侧;连续14点中至少有12点在中心线一侧;连续17点中至少有14点在中心线一侧;连续20点中至少有16点在中心线一侧。 (4) 点屡屡超过警告限而接近控制限, 有如下情况者, 即判断为有异常:连续3点中有2点 (可不连续) 接近控制限;连续7点中有3点 (可不连续) 接近控制限;连续10点中有4点 (可不连续) 接近控制限。
实验室内质量控制图是监测血站检验数据常规分析过程中可能出现误差, 使检验数据控制在规定的精密度和准确度范围内, 保证血站常规血液分析检验数据质量的常规方法。质量控制图的基本原理是血液样品测定结果在受控条件下, 测定一定的精密度和准确度, 并且数据服从正态分布。由此做出精密度和准确度质控图, 结合判断“在控制状态”和判断“失控”的标准, 判定血站实验室检验数据测量系统是否处于统计控制状态中, 而且也可用于找出检验数据测量系统存在的问题和原因。