接触传染性胸膜肺炎

2024-08-05

接触传染性胸膜肺炎(精选11篇)

接触传染性胸膜肺炎 篇1

2008年7月23日,洪泽县养猪专业户韩某饲养的40~50kg育肥猪有81头,6头发病,于7月22日晚死亡1头。症见体温42℃,呼吸急促、高度困难,呈站立或犬坐而不愿卧地,有的张口伸舌,鼻腔有浓性分泌物或泡沫性分泌物。死亡病例两侧肺呈紫红色,切面似肝,间质充满血色胶样液体。治用三拗汤水煎1剂,病情得到控制,继续服用1剂,患病猪康复。其它猪用此方按比例进行预防治疗,再未发病。

本病亦称猪副溶血嗜血杆菌病,是由猪副溶血嗜血杆菌所致猪的一种呼吸道传染病,本病以6~8月份发病较多,呈现肺炎和胸膜炎的特征性症状和病变。急性者死亡率高,慢性者尚耐过。

1 流行病学

各种年龄、性别的猪都有易感性,发病率和病死率有很大差异,通常在50%以上。病菌主要存在于病猪呼吸道,往往通过空气飞沫传播,在大群集约饲养条件下最易接触传播。公猪在传播环节中起重要作用。猪群之间的传播主要通过引入带菌或慢性感染猪。

2 症状

人工接触感染潜伏期为1~7d或更久。急性病例体温可升高至42℃以上,呼吸急促,高度困难,常站立或犬坐而不愿卧地,张口伸舌,个别鼻腔流有浓性分泌物,状极痛苦,如不及时治疗常于24~48h内窒息死亡。亦有最急性者死见不到症状。若开始时症状较为缓和,能耐过4d以上者,症状逐步消退,常能自行康复,但病程较长。很多猪只感染后临床症状较轻,呈慢性经过。

3 病变

急性死亡的病例,肺炎多为两侧性,肺呈紫红色,切面似肝,间质充满血色胶样液体。病程24h以上者,出现纤维性物附于表面,并有黄色渗出液。病程较长的慢性病例,可见硬实的肺炎区,表面有结缔组织性病灶,与胸壁粘连。慢性病猪临床上往往看不到症状,貌似健康。

4 实验室诊断

标本采取病原菌可以从支气管或鼻腔渗出物和肺炎病变部分离到。镜检革兰氏染色涂片可见有多数革兰氏阴性球杆菌。

5 治疗

治宜宣肺平喘、清热化痰。治痰热咳喘,痰多气喘等症。方用定喘汤:白果30g、麻黄30g、苏子50g、杏仁30g、桑白皮60g、款冬花50g、黄芩40g、半夏30g、甘草15g (50kg猪用剂量),加水浸泡30分钟,用文火煎煮30min,滤取药液胃管投服,药渣再加水煎汁供病猪饮用,一般1剂即愈,重症可服2剂。

本方由三拗汤加味而成。白果平喘又能化痰,与麻黄、苏子同用,可提高平喘效果,为本方元药;配伍半夏、杏仁、甘草化痰止喘;桑白皮、黄芩清泄肺热。诸药合用,具有宣肺平喘、清热化痰之效。

6 小结

猪接触性传染性胸膜肺炎近几年来夏季发病较多。加强饲养管理,定期消毒,防暑降温是控制本病的首要条件。

接触传染性胸膜肺炎 篇2

羊传染性胸膜肺炎的诊断与防控

羊传染性胸膜肺炎又称羊支原体性肺炎,是由支原体所引起的一种高度接触性传染病,其临床特征为高热、咳嗽、胸和胸膜发生装液性和纤维素性炎症,取急性和慢性经过,病死率很高.从羊传染性胸膜肺炎的病原、流行病学、发病机理、临床症状和诊断等方面进行阐述,以期为该病的`综合防控提供参考.

作 者:唐和平张庆新 宋士和  作者单位:海拉尔农垦集团公司特泥河农牧场兽医站,内蒙古,海拉尔区,021024 刊 名:畜牧与饲料科学 英文刊名:ANIMAL HUSBANDRY AND FEED SCIENCE 年,卷(期):2010 31(3) 分类号:S858.265 关键词:羊传染性胸膜肺炎   支原体   防控  

猪传染性胸膜肺炎的诊疗报告 篇3

2005年4月中旬,五河县西杨村一个养猪场暴发传染性胸膜肺炎,发病率10%,病死率30%,经采用敏感药物注射和混料投服,加强饲养管理等综合措施,病情很快得到控制。

1 发病情况

该猪场有存栏猪200多头,2005年4月上旬从某猪场引进肉猪饲养时,发现该引进猪群中有个别猪咳嗽、喘气,当时没有引起重视,到4月中旬,气温下降,且连续1周的阴雨,病情迅速蔓延,共有26头猪出现喘气、咳嗽、呼吸困难,急性的2d内死亡。慢性的5~6d死亡。至4月28日共死亡6头,死亡率达30%,曾用青霉素、链霉素、氯霉素治疗,效果不显著。于4月28日送畜牧兽医技术中心实验室诊断。

2临床症状

病猪体温升高至40.5~42.0℃,精神不振,绝食,多拥挤在一起,喜伏卧,不愿走动。严重的出现呼吸极度困难,喘气、咳嗽,张口伸舌。从口鼻咳出泡沫状的血色渗出物。病初耳、鼻、腿部皮肤发紫,继而全身皮肤发紫。急性的2d内死亡,慢性5-6d死亡。

剖检,病变主要在呼吸系统。急性死亡病例,气管和支气管充满泡沫样血色黏液性分泌物,肺充血、水肿,两侧肺叶呈现紫红色,病灶界线清晰,切面似肝断面易碎,间质充满血色胶样液体。胸膜见纤维素性炎。胸腔有黄色渗出物,慢性病例见坚实肺炎区,表面有纤维结缔组织粘连。

3实验窒检验

取病死猪的肺病变部位及胸腔渗出液进行涂片,用革兰氏染色,镜下见革兰氏阴性杆菌。

4培养特性检验

以无菌操作的方法。取肺病变部位及胸腔渗出液接种于巧克力琼脂平皿(在琼脂培养基的基础上,加入脱纤兔的血液,放人85℃水浴中10min,即变成巧克力样颜色,后分装平皿),置于CO2培养箱环境中,37℃培养24~48h,见巧克力琼脂平板上长出圆形、隆起、边缘整齐、表面光滑、灰白色、针尖大小的菌落,涂片,用革兰氏染色镜检,见革兰氏阴性,呈短杆状、球状短链菌体。

5药敏试验

用纸片法进行药敏试验。试验方法如下:

(1)滤纸用打孔机打成直径6mm圆片,每100片放入一小瓶中,高压烘干备用。

(2)青霉素200μg/mL,其他药(氟苯尼考、链霉素、氯霉素、恩诺沙星)均为100μg/mL,取抗菌药液各1mL分别加入纸片中,置冰箱浸泡1~2h,后置于37℃温箱保持2~3h后干燥。

(3)用白金耳取培养10~18h的幼龄菌,均匀涂抹于琼脂平板上,等干燥后,用镊子夹取各种抗菌素纸片,平均分布于琼脂表面(每平板放置5片),在37℃温箱内培养18h后观察结果。

试验结果见表1。由表1可见,该菌对氟苯尼考、恩诺沙星高度敏感,对青霉素、链霉素、氯霉素耐药。

6防治

6.1 预防

加强饲养管理,提高猪体抵抗力,注意饲料的合理配方和饮水的清洁卫生,遇天气变化,阴雨、潮湿、寒冷时,猪舍要保温,预防猪发生上呼吸道感染。

对发生该病的猪场,出现呼吸道症状应及时投药治疗,对未发生过该病的猪场,若出现呼吸道重症死亡,应及时采取病料进行病原学诊断和药物试验,同时隔离病猪,消毒环境。采取敏感药物治疗和综合防治措施。对猪场要建立健全防疫制度,落实防疫措施。

6.2治疗

全群猪用敏感药物恩诺沙星原料粉按每千克饲料混入药品1g的量投服,连用3d。

发病猪用氟苯尼考注射液(商品名“通扬乐普”)治疗,每天2次,连用3d。

治疗应注意的问题:首选隔离病猪,选用高度敏感药物。用药间隔时间和剂量要准确,要有足够的疗程。

治疗观察:经采用以上措施,病猪很快得到控制。对14头病猪用药3d后,无一死亡,5d后病情基本好转,15d后所有猪全部恢复正常。

7体会

该病的发病特点:体温升高至40.5℃~42.0℃。有明显的呼吸道症状,皮肤发紫,死亡率不高,但有时也呈暴发趋势,给养猪业带来很大的损害。临床症状以呼吸困难为主。剖检为纤维素性胸膜炎,肺瘀血水肿。

诊断要点:根据流行病学,临床症状,病理变化及培养特性,巧克力琼脂平板上长出圆形、隆起、灰白色针尖大小的菌落,镜检革兰氏阴性短杆菌,球状短链菌体。可作出初诊。

胸膜性肺炎嗜血杆菌可存在于正常猪的鼻咽中,常引起内源性感染。在冬末春初遇阴雨天气,受冷空气的侵袭,引进猪苗时,环境、饲料改变产生应激时常引发该病。为此,应加强饲养管理,防寒保暖,提高猪体的抗病力,在天气突变时,适当用敏感药物作添加剂,防止该病发生。

猪接触传染性胸膜肺炎的诊治 篇4

1 流行病学调查

本病一年四季均可发病, 但以春季和秋末发生较多, 有明显的季节性。各种年龄的猪都可感染, 病毒和带毒猪为本病的传染源, 病菌主要存在于患病猪的肺、气管和鼻液中。猪与猪之间可通过直接接触或飞沫感染, 场与场之间多因引进病猪或带菌猪而传播。该猪场条件简陋, 卫生条件差, 平时不注意消毒。

2 临床症状

该猪场发病猪以3~4月龄为主。病猪表现精神沉郁, 食欲不振或拒食, 体温升高到40~41.5℃, 呼吸困难, 咳嗽、喘息或有腹泻, 呕吐、病程稍长, 有的则表现从口鼻流出红色泡沫样液体, 猪的耳、鼻、腹下、四肢下部出现淤血斑, 有的很快死亡, 不死的转为慢性病。

3 病理变化

可见硬实的肺炎区, 表面有结缔组织化的粘连性附着物, 肺炎病灶成硬化或坏死性病灶, 其大小如鸭蛋大, 与胸膜粘连, 胸腔积液, 喉头有泡沫状液体, 心包液多, 肺门淋巴结肿大、肾肿。

4 诊断和防治

抹血、肝、病变肺片, 染色镜检, 可见有短杆菌, 并取病料送市实验室检验为副溶血性杆菌, 诊断为猪接触传染性胸膜肺炎。

对病猪立即进行隔离, 栏舍进行消毒, 改善饲养环境, 加强通风透光控制饲养密度, 长途运输后加强管理和营养。用土霉素和新诺明交替混饲喂, 对症状较重者, 肌注土霉素针剂, 每千克体重0.1 m L, 1 d 2次, 肌注5 d, 拌料饲喂7 d, 病猪逐渐康复, 继续拌料喂养2 d, 全部痊愈。

5 小结

本病一般要综合诊断才能确诊。临床以发病突然, 传播速度快, 伴有高热和呼吸困难, 口鼻流出红色泡沫样分泌物, 死亡率高, 死后剖检肺和胸膜有特征性纤维素性肺炎和胸膜炎, 即可作出初步诊断。确诊尚需进行细菌学和血清学检查。临床诊断要注意将本病与猪气喘病、猪肺疫、猪瘟、猪弓形体病、猪链球菌病区别开。

猪肺疫的特征病变是咽峡炎, 病原是两端浓染的巴氏杆菌。青霉素治疗有特效。

猪气喘病的特征病变是间质性肺炎, 肺心叶和尖叶常出现界限清楚, 对称性的胰样病变。

猪瘟呈稽留热, 眼结膜炎症, 眼睑浮肿, 有脓性分泌物。怕冷发抖, 剖检淋巴结大理石病变, 肾脏针状出血点。无口鼻泡沫样分泌物, 剖检无胰样病变。

猪弓形体病也呈稽留热, 症状与本病十分相似, 但临床上无口鼻泡沫状分泌物, 剖检未见肺样病变。

猪慢性溶血性链球菌病无口鼻泡沫状分泌物。

猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗 篇5

1 流行病学特点

PCP具有易感性,可发生于不同年龄段的猪,其中6周~6月龄的猪发病率相对较高。育肥晚期的病重病例较多,死亡率20%~100%,可能与气候条件和饲养管理方法有关。PCP的主要传染源有病猪和带菌猪,常通过猪与猪之间或排泄物污染等途径传播。病菌通常分布于患猪的肺脏、鼻汁和支气管中,从鼻腔排出后经空气向其他猪传播,猪舍较拥挤和通风不良时传播速度会随之加快。从发病特点来看,本病多集中发生于4~5月和9~11月。饲养环境变化、饲养密度过大、气候突变、通风不良以及长途运输等应激因素均有可能诱发本病。此外,猪传染性胸膜肺炎常与副猪嗜血杆菌病、猪地方性肺炎等疾病混合感染,导致患猪的病情进一步加重。

2 猪传染性胸膜肺炎的诊断

2.1 临床症状

患猪的体温40~41℃并处于持续状态,且伴有嘶叫、心跳加快、全身颤抖和严重呼吸困难等症状。部分患病仔猪受强烈应激因素影响可突然死亡,若患猪的患病期较长,则会有消瘦、精神萎靡、食欲减退、背毛粗乱等临床表现,其胸腹部可见紫斑,随着病情的进一步发展,患猪可因严重呼吸困难而死亡。

2.2 剖检变化

有的病死猪剖检可发现其两侧肺呈紫红色,心间叶存在紫色肺炎区,肺叶与胸膜和胸腔壁粘连;有的可发现其支气管和泡膜严重堵塞,胸腔积液及胸膜表面覆有纤维样渗出物并与胸腔粘连;有的除有上述表现外还可在肺炎区上发现绿豆大小的白色化脓病灶,部分已经钙化。肺门淋巴结水肿、肿大,其切面呈灰白兼带黄色,腹股沟淋巴结水肿,同时患猪的眼、耳、鼻与后躯皮肤出现紫斑、发绀,且肠黏膜变薄。

2.3 实验室诊断

染色镜检可见革兰氏染色菌体呈革兰氏阴性,有革兰氏阴性多形态小球杆菌,未见芽孢,无运动性。

在无菌条件下分别取肺、肝、血、胸腔积液接种于血琼脂、巧克力琼脂、麦康凯琼脂培养基、普通营养琼脂,在恒温培养箱(37℃)中培养24 h,可见边缘整齐,中间凸起,存在灰白色半透明菌落,其周围有清晰的完全溶血环,其他培养基无菌落生长。临床上可综合临床症状、剖检变化及实验室检测对猪传染性胸膜肺炎作出诊断。

3 防治措施

3.1 严格消毒

猪发病期间,应对猪舍及其用具进行严格消毒,首先给未发病的猪舍消毒,然后对发病猪舍进行消毒,保证每天进行1次全面性的消毒。消毒之后应对消毒设备及器具进行消毒,消毒工作人员更换服装后应及时进行清洗和消毒。治疗用的针头应确保单猪单用,使用完毕进行消毒后方可丢弃;尽量选择消毒效果较好和对病猪副作用较小的消毒药剂,在饲养过程中注意保持清洁。

3.2 加强猪舍管理

猪舍应保持干燥、通风,饲养时适当控制猪群密度,猪舍内的温湿度应保持平衡,保证饲养环境卫生、清洁。同时,要加强药物保健,适当添加抗生素与免疫增强剂。可注射猪瘟疫苗、伪狂犬病疫苗和高致性蓝耳病疫苗等基础疫苗,增强猪的抗病力,降低疫病的发生率。

3.3 药物治疗

可对病猪肌注氟苯尼考注射液0.2 mg/kg,每天1~3次,连续注射3~5 d。如病猪体温下降,精神状态有所好转,但仍不稳定,可肌注0.1 mg/kg复合维生素B及樟脑磺胺钠0.1 mg/kg、黄芪多糖注射液0.1 mg/kg,连续使用3 d。若猪的病情进一步加重,可注射800万U青霉素、500万U链霉素、10 mL复方氨基比林注射液与5~10 mL地塞米松注射液,连续使用12~15 d。经上述治疗后,可促使病猪逐步康复。

接触传染性胸膜肺炎 篇6

1 基本情况

上杭县茶地乡刘某养殖户, 经产母猪60多头, 保育猪180多头, 生长猪300多头。全场普免猪瘟、高致病性繁殖与呼吸综合征、口蹄疫、圆环病毒病、伪狂犬病等疫苗。保育猪2015年7月中旬发病, 至2015年8月, 陆续死亡60多头;母猪、肥育猪则未发病。

2 临床症状

保育猪突然发病, 体温41.5℃以上, 不食。呼吸急促、张口呼吸;咳嗽、喘气, 部分患猪口、鼻流粉红色泡沫样液体。皮肤潮红, 耳尖及四肢末端发绀;病程急者未见明显异常突然死亡, 稍轻者发病后1~2 d死亡, 用青霉素和磺胺嘧啶钠治疗有一定效果, 症状稍缓解, 但随后咳嗽、喘气, 慢慢消瘦, 10~15 d因恶病质死亡。

3 剖检变化

剖检急性死亡和病程长的猪各2头。猪皮肤发白, 胸腔有大量红色液体;肺有点状出血, 呈紫红色或黑红色, 切开流出粉红色泡沫样液体;支气管和气管充满带血的黏液性泡沫。病程长者肺表面有大量的纤维素样覆盖, 并与胸腔粘连, 纤维素性肺炎明显, 肺膈叶有脓肿样结节。心肌疲软, 心包液增多, 全身淋巴结肿大、出血;肝脏、脾脏充血肿大, 色呈暗红。其他脏器未见明显异常。

4 实验室诊断

4.1 涂片、镜检

无菌采患猪肺病变部分和胸腔液体, 涂片, 革兰氏染色镜检, 可见大量革兰氏阴性小球杆菌和纤丝杆菌。

4.2 细菌分离培养和生化试验

无菌取胸腔积液、肺病变部位接种于10%绵羊血琼脂平板上, 与金黄色葡萄球菌交叉划线接种, 置10%CO237℃恒温培养24 h, 长出边缘整齐、圆形、半透明、隆起的灰白色菌落, 呈溶血;挑取菌落涂片, 镜检见革兰氏阴性小球杆菌和纤丝杆菌。挑取可疑菌落纯培养后进行生化试验, GAMP试验、甘露糖发酵及尿酶活性均为阳性。

4.3 抗体检测

无菌采集患猪血液送龙岩学院动物医学研究所做猪瘟、高致病性猪繁殖与呼吸综合征、伪狂犬病抗体检测, 均为阴性。

根据临床症状、剖检变化及实验室检测结果, 诊断为猪接触传染性胸膜肺炎。

5 防治

1) 加强饲养管理, 及时隔离患猪, 降低保育猪的密度, 保育猪舍每天用1:200过氧乙酸喷雾消毒1次, 连续1周。

2) 全群保育猪饲料中每吨添加枝原净200 g、氟苯尼考300 g、阿莫西林400 g, 连用7 d;间隔7 d, 再使用7 d, 脉冲式给药。

3) 发病猪用泰妙菌素、替米考星肌注治疗, 分边在颈部肌肉按每千克体重注射20 mg, 2次/d, 连用3 d。5 d后跟踪观察, 疫病得到控制, 无新发病例, 除5头病重猪死亡外, 全部恢复采食, 呼吸、体温正常。

6 体会

1) 分析本次发病原因, 是由于保育舍高温高湿, 通风不良;而母猪舍、肥育猪舍通风良好, 干燥而不发病。应加强饲养管理, 提供适宜的温度、湿度、密度, 环境舒适、干燥、清洁、通风, 饲料、饮水中添加氨基多维和黄芪多糖, 降低应激, 提高抗病力。

2) 由于APP易产生耐药性[2], 在使用药物治疗前有条件的猪场应做药敏试验, 无条件的猪场应选用平时比较少用的药物, 脉冲式给药, 减少盲目用药, 既能提高疗效, 又降低治疗成本。

3) 由于APP血清型众多, 不同血清型之间交互免疫性不强[2], 预防PCP的多是灭活苗, 注射疫苗对该病的预防作用有限, 目前, 预防和治疗该病主要还是使用抗生素。

4) 鉴别诊断。该病的诊断应与猪肺疫、猪喘气病、副猪嗜血杆菌病相区别[3]。猪肺疫除肺部病变外, 还在咽喉部急性肿胀、出血, 皮肤、皮下组织、浆膜及全身淋巴结出血, 而PCP的病变只局限于肺及胸腔;喘气病的病变也在肺部, 其肺部是对称性病变, 症状表现为运动后咳嗽, 病程长, 体温变化不明显。副猪嗜血杆菌病是多发性浆膜炎, 呈胸膜炎、心包炎、腹膜炎、关节炎等。

参考文献

[1]叶直芬, 王有祥, 杨勇敏.一起猪接触传染性胸膜肺炎的诊治[J].养殖与饲料, 2015, 14 (6) :47-49.

[2]蔡宝祥.家畜传染病学[M].4版.北京:中国农业出版社, 2001:196-198.

接触传染性胸膜肺炎 篇7

1材料与方法

1.1试验材料脑心浸液琼脂培养基(含10%犊牛血清和100μg/m L NAD)购于北京路桥生物技术有限公司,NAD(烟酰胺嘌呤二核苷酸)购于大连宝生物工程有限公司,APPⅠ型至12型阳性血清购自中国兽药监察所。95%乙醇、无水乙醇等试剂均为国产分析纯。普通营养琼脂、普通血清肉汤培养基、麦康凯培养基、LB琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂(TSA)、巧克力培养基购自北京路桥生物技术有限公司。药敏纸片购自北京天坛生物技术有限公司。病料采集自河南省及周边地区发病猪。DNA提取试剂和PCR试剂盒购自大连宝生物生物技术有限公司。

1.2试验方法

1.2.1细菌分离培养取肺脏病变组织及气管样本,接种于脑心浸液琼脂(含100μg/m L NAD和10%犊牛血清)平板上,置于体积分数为10%的CO2培养箱中培养24 h,提取单菌落进行纯化培养。

1.2.2细菌培养特性观察取待检细菌纯培养物进行革兰氏染色,于显微镜下观察细菌形态。

1.2.3不同培养基生长观察取细菌纯培养物分别接种于不同培养基平板上,观察细菌的生长情况。同时进行CAMP试验,观察分离菌的溶血现象。

1.2.4细菌生化试验鉴定取细菌纯培养物接种于含1%的NAD的各种细菌生化培养管中,置于10%的CO2培养箱中培养24 h,观察细菌的生化反应结果。

1.2.5细菌血清型鉴定将生化鉴定为阳性的APP接种于脑心浸液(含10%犊牛血清和100μg/m L NAD)平板上,置于体积分数为37℃培养24 h,12 000 r/min离心10 min,沉淀用生理盐水洗涤3次,加0.5%的福尔马林37℃灭活48 h,然后与胸膜肺炎放线杆菌阳性血清进行平板凝集试验,观察凝集现象,确定分离菌的血清型。

1.2.6 PCR分子鉴定

1.2.6.1 APP基因组提取及模板制备将APP接种于脑心浸液琼脂平板上,置于体积分数为10%的CO2培养箱中培养24 h,挑取纯培养物进行DNA的提取。DNA提取步骤按照宝生物DNA提取试剂盒进行操作。

1.2.6.2引物设计与合成从Genbank下载编码荚膜多糖的碱基序列,利用Primer 5.0软件设计合成一对引物。引物序列为:上游引物5-AATGCTC-GTCTCCGAACGGG-3′;下游引物3′-TACTCAGTAGAAG-TAGGTTATCG-5′。预期扩增片段为1 300 bp。引物由上海生物工程有限公司合成。

1.2.6.3 PCR扩增反应PCR反应体系25μL:无菌超纯水13μL:Buffer(Mg2+)5.0μL,d NTPS4.0μL(2.5 mmol/μL),上游引物1.0μL(25pmol/μL),下游引物1.0μL(25 pmol/μL),Taq enzyme 0.5μL(5 U/μL),模板0.5μL。PCR扩增程序为:95℃预变性5 min,94℃变性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸30 s,30个循环,最后72℃延伸5 min。PCR产物经1.0%琼脂糖凝胶进行检测。

1.2.6.4 PCR产物的鉴定PCR产物纯化后送宝生物生物工程有限公司进行测序鉴定。将测序后的结果进行同源性比较。

1.2.7细菌药敏试验采用K-B药敏纸片法进行APP分离菌株对临床常用抗菌药物的敏感性测定,并参考药敏试验抑菌环直径判定标准(WS-T125-1999)判定药敏试验结果,确定待检分离菌的药敏特性。

2结果与分析

2.1细菌分离结果培养皿在二氧化碳培养箱中37℃培养24 h后,在脑心浸液琼脂平板上有可疑细菌生长,菌落边缘整齐、圆形、光滑湿润、透明、针尖大小的菌落(图1:A,B)。然后菌株转接在绵羊血平板上,可产生稳定的β溶血(图2:A,B)。

2.2细菌培养特性观察取待检细菌纯培养物进行革兰氏染色,于显微镜下观察细菌形态。将上述细菌进行革兰氏染色,镜检。可见细菌两极染色,菌体呈球状、杆状或球杆状等多形性(图3:A,B)。

2.3不同培养基生长观察取细菌纯培养物分别接种于普通营养琼脂、普通血清肉汤培养基,麦康凯培养基、LB琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂(TSA)、巧克力培养基平板上,观察细菌的生长情况。同时进行CAMP试验,观察分离菌的溶血现象。

培养皿在二氧化碳培养箱中37℃培养24 h后,APP在普通营养琼脂、普通血清肉汤培养基、麦康凯培养基、LB琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂(TSA)、巧克力培养基上不生长。在脑心浸液琼脂(含10%犊牛血清和100μg/m L NAD)平板上生长良好。分离菌与金黄色葡萄球菌一起培养(CAMP试验)发现,靠近葡萄球菌生长线的分离菌生长态势较好,并且在生长线周围出现β溶血现象(图4:A,B)。

2.4细菌生化试验鉴定取细菌纯培养物接种于含1%的NAD的各种(葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、甘露糖,乳糖、甘露醇、阿拉伯糖、七叶苷,硫化氢、靛基质,尿素酶、过氧化氢)细菌生化培养管中,置于10%的CO2培养箱中培养24 h,观察细菌的生化反应结果。

取上述细菌接种至生化培养管中,经37℃培养24 h后,结果显示均能发酵葡萄糖、麦芽糖、蔗糖和甘露糖,不发酵乳糖、甘露醇、阿拉伯糖和七叶苷,不产生硫化氢和靛基质,尿素酶试验和过氧化氢试验阳性,结果见表1。

注:“﹢”表示阳性反应;“﹣”表示阴性反应。

2.5细菌血清型鉴定细菌的纯培养物分别与1~12型APP标准阳性血清进行平板凝集试验,结果发现分离到的部分菌株均与标准型阳性血清呈现明显的凝集现象,与其他标准阳性血清和生理盐水对照均不发生凝集反应。凝集试验结果表明分离到的菌株为胸膜肺炎放线杆菌血清1型。

2.6扩增产物的检测及鉴定PCR产物经1%的凝胶电泳,然后在凝胶成像仪中观察。扩增产物在1 300 bp处可见特异性DNA扩增条带(图5),与预期大小相符。

2.7药敏特性采用药敏纸片琼脂扩散法对分离株菌进行药物敏感性试验,结果见表2。

从表2可以看出,分离菌对头孢吡肟、头孢曲松、头孢唑肟、头孢美唑、头孢克罗、头孢他美、头孢噻肟、头孢他啶、头孢地嗪、头孢呋辛钠、头孢西丁敏感;对链霉素、大观霉素、新霉素、利福平、妥布霉素、美洛培南、杆菌肽、多粘菌素、替考拉宁、新生霉素、磷霉素、氯霉素、阿洛西林、四环素、萘啶酸、红霉素、卡那霉素、庆大霉素、阿米卡星、青霉素、哌拉西林、阿莫西林、头孢唑林、头孢氨苄、头孢拉定、头孢匹胺、头孢哌酮、头孢羟氨苄、头孢丙烯、氨苄西林、羧苄西林、苯唑西林、美洛西林、奈替米星耐药;对头孢噻吩、环丙沙星、诺氟沙星、氧氟沙星、头孢克肟中等敏感。

3讨论

猪传染性胸膜肺炎在世界各国流行,给养猪业造成严重的经济损失。胸膜肺炎放线杆菌血清型较多,不同国家和地区流行的血清型不同[11,12,13,14,15]。在墨西哥,1a、3,5a、5b和7血清型,许多欧洲国家主要是2、9血清型,北美主要是1、5血清型,加拿大和美国主要是1、5、7血清型,德国主要是2、7、9血清型,英国主要是3和8血清型,澳洲主要为1、7、12血清型,日本主要为2、5血清型,韩国主要为2、4、5、7血清型,我国主要是1、2、3、4、5、7、8、9、10血清型[16,17,18,19]。本研究从临床病例中分离胸膜肺炎放线杆菌,并以标准阳性血清,采用平板凝集试验对分离菌株进行了血清型鉴定,并采用PCR方法对血清型1型进行了分子为APP的预防控制和免疫防控提供了重要的依据。

注:S,敏感;I,中等敏感;R,耐药。

PCP是规模化猪场中主要的呼吸系统疾病之一。同时,引起猪群发生呼吸道症状的疫病还有猪支原体肺炎、猪传染性萎缩性鼻炎、副猪嗜血杆菌病等[20,21,22]。目前,抗生素是治疗细菌性疾病的关键,由于临床用药的不规范及滥用药物导致细菌耐药性增加,以及导致疾病对动物机体的损伤无法用药物来恢复等,导致抗生素在治疗细菌性疾病上没有明显效果[23]。临床分离出大量多重耐药菌株,抗生素的应用已经很难达到控制本病的发生。因此开展血清型鉴定、细菌耐药性、流行病学和疫苗的研究具有重大意义。

山羊传染性胸膜肺炎防治 篇8

传染性胸膜肺炎是一种急性传染病, 实践表明:由于山羊长距离的运输, 昼夜温差大, 导致山羊感冒没有即时治疗恶化为传染性胸膜肺炎, 该病发病潜伏期一般为4~10d, 也有长达2周以上的。

1 临床特征

体温升高, 呼吸困难, 被毛松乱无光泽, 眼结膜发炎, 眼睑肿胀, 流浆液性、脓性鼻液。严重时有湿性咳嗽。孕羊流产或死胎;慢性病羊咳嗽、消瘦。

2 治疗

2.1 用914和红霉素配合使用疗效较好。

2.2 用914 0.5g加5%葡萄糖30m L一次静脉注射 (现配现用) ;

2.3 用红霉素2g口服, 一般1次后病情即开始缓和, 隔5天再服一次, 病情就可基本控制。

3 体会

防制山羊传染性胸膜肺炎重在防范, 养羊场和养羊户应遵循以防为主, 防治结合的原则, 制定行之有效的防范措施。

3.1加强羊群饲养, 做好日常管理

冬春枯草季节备足草料, 羊群除了放牧采食外, 应及时补料补草, 确保羊群在冬春季节不掉膘, 以增强羊群的抵抗力。同时, 羊舍要勤打扫、勤消毒, 经常保持羊舍内的清洁卫生。羊群出牧后, 应将羊舍门窗打开通风换气, 如遇气温突变应及时做好防寒保暖工作。羊舍及运动场应有足够的面积, 避免羊群过分拥挤。

3.2 坚持自繁自养, 严格羊群检疫

养羊场和养羊户应建立自己的基础母羊群, 坚持自繁自养, 尽可能减少从外地和市场上购进羊只, 以免带人病原。如需进行品种调整、血液更新或补充种源, 了解购进地的疫情, 并从健康的羊群中选购。对新购进的羊应严格地检疫, 并隔离饲养15d以上, 确诊健康后方可合群饲养。

3.3 规范羊群免疫接种, 防范疫情流行

羊传染性胸膜肺炎防治 篇9

1 病原

本病的病原体为丝状支原体山羊亚种。这是一种细小多形性微生物, 革兰氏染色阴性, 用姬姆萨氏法、卡斯坦奈达氏法或美蓝染色法着色良好。从甘肃等省区类似山羊支原体肺炎的病山羊中还分离出一种与丝状支原体山羊亚种无交互免疫性的支原体, 经鉴定为绵羊肺炎支原体。这种支原体的形态也呈细小的多形性, 但其生长要求比丝状支原体山羊亚种苛刻。在琼脂浓度较低 (约0.7%) 的培养基上生长时, 可呈现一般支原体都具有的“煎蛋状”菌落, 但在通常的琼脂浓度时无此表现。

2 流行病学

在自然条件下, 丝状支原体山羊亚种只感染山羊, 尤其3岁以下的羔羊;而绵羊肺炎支原体既可感染山羊也可感染绵羊。营养缺乏、气候骤变、羊群密集等有利于本病的发生和流行, 因此多发生于冬季和早春常呈地方性流行, 接触传染性很强。病羊和带菌羊是传染源, 主要经呼吸道分泌物排菌。新疫区的暴发, 几乎都由引进病羊所致。发病后传播迅速, 20d左右可波及全群。冬季流行期平均20d, 夏季可达2个月以上。

3 发病机理

病原菌经呼吸道进入肺脏, 先引起细支气管炎, 很快侵入其周围间质, 引起浆液性或纤维素性炎症;随后又沿淋巴管和血管向全肺蔓延, 因此肺脏出现大灶性肝变。病原菌进入支气管后, 能紧密贴附于纤毛间的上皮细胞膜, 因此不能被粘液-纤毛清除机制排出, 甚至可免于吞噬细胞的作用。粘附于上皮的病原菌通过释放其代谢产物对纤毛和细胞膜发生毒性作用, 致使纤毛脱落、细胞膜受损。此外, 病原菌的入侵机体, 还可带来复杂的免疫学发病机制, 如产生广泛的免疫异常反应和免疫系统损害。病原菌在沿血管、淋巴管蔓延的过程中, 可引起血管炎与血栓形成以及淋巴管炎与淋巴栓形成。血栓可导致肺梗死;淋巴栓则影响炎性渗出物的吸收, 进而带来机化及肺肉变。病畜如继续存活, 小坏死灶可被肉芽组织取代, 大坏死灶则形成结缔组织包囊。当疾病好转或临诊痊愈后, 病原菌能在肺病灶里长期存活, 成为疾病内源性再发的基础。

4 症状

4.1 最急性

体温升高, 可达41~42℃, 沉郁, 不食, 呼吸急促, 随之呼吸困难, 咳嗽, 流浆液性鼻液, 粘膜发绀, 呻吟哀鸣, 卧地不起, 多于1~3d死亡。

4.2 急性

最常见。体温升高, 初为短湿咳, 流浆液性鼻液, 后变为有痛苦的干咳, 流粘脓性铁锈色鼻液。胸部敏感、疼痛, 病侧叩诊常有实音区, 听诊有支气管呼吸音与磨擦音。高热不退, 呼吸困难, 呻吟痛苦。弓腰伸颈, 腹肋紧缩, 孕羊大批流产。最后倒卧, 萎顿, 衰竭死亡。死前体温下降。病期1~2周, 有的达3周以上。偶有不死者转为慢性。

4.3 慢性

多见于夏季。全身症状较轻, 体温降至40℃左右, 间有咳嗽、腹泻、流鼻, 身体衰弱, 被毛粗乱。此时如再度感染或有并发症则迅速死亡。

5 病理变化

一般局限于胸部器官。有浆液纤维素性胸膜炎变化。胸腔积有大量淡黄色浆液纤维素性渗出物。胸膜充血、晦暗、粗糙, 附以纤维素絮片。肺胸膜与肋胸膜常发生粘连。支气管与纵隔淋巴结充血、出血、肿大。心肌松软, 心包积液。

肺表现为纤维素性肺炎。肺炎最初为炎性充血和水肿, 随后发生肝变。因病情不同, 肝变区可呈局灶性或弥漫性两种形式。局灶性肝变经常首先在通气良好的膈叶或中间叶胸膜下发生局限的红色实变区, 以后实变区逐渐扩大。弥漫性通常表现为一侧肺的膈叶大部或全部发生炎症, 对侧肺也可能有大小不等的肺炎灶;但两侧肺全部发生肝变者罕见。弥漫性肺炎的外观和牛传染性胸膜肺炎相似, 也呈多色性和大理石样变, 但间质水肿没有牛传染性胸膜肺炎的显著。慢性病例, 肝变肺有坏死灶形成, 小坏死灶可被机化, 大者其外围以结缔组织包囊, 这和牛传染性胸膜肺炎的结局也较相似。

镜检, 有纤维素性肺炎的一般组织变化。间质虽有炎性水肿, 但没有严重的坏死以及血管周围机化灶与边缘机化灶。病初, 支气管与血管周围为浆液性炎, 以后则为增生性炎, 主要表现为淋巴网状细胞增生甚至可形成淋巴小结, 肺膜增厚, 膜下及肺泡间隔也有淋巴细胞浸润。

6 诊断

根据流行特点、临诊症状和病变特征常可做出初步诊断, 但要确诊应进行病原菌分离鉴定。

本病在症状和病变上均和山羊巴氏杆菌病相似, 但可以从以下几方面鉴别。

6.1 巴氏杆菌病的病变除纤维素性肺炎外, 还有全身败血性变化, 而本病主要为一侧胸膜肺炎, 其他器官常无明显病变。

6.2 病料涂片染色镜检, 巴氏杆菌病为两极染色的小杆菌, 而本病为很难看到的小紫点。

6.3 用血液琼脂分离培养时, 巴氏杆菌病有明显的菌落生长, 本病常无细菌生长, 或仅生长为很难观察到的小点状菌落。

6.4 用病料接种家兔或小鼠, 巴氏杆菌病必定引起动物死亡, 本病常不引起发病。

7 防治

7.1 预防

严防引入病羊或带菌羊, 如需引种, 则应隔离检疫1个月以上, 确认健康时方可混群。根据当地病原体分离结果, 选择注射山羊传染性胸膜肺炎氢氧化铝苗、鸡胚化弱毒苗或绵羊肺炎支原体灭活苗。对发病羊严格封锁、隔离、消毒和治疗。

7.2 治疗

接触传染性胸膜肺炎 篇10

关键词:副伤寒;胸腹肺炎;治疗

中图分类号:S858.2 文献标识码:A 文章编号:1674-0432(2011)-07-0241-1

1 发病情况及临床症状

仔猪副伤寒和猪传染性胸膜肺炎是由沙门氏菌和放线杆菌引起的一种危害严重的传染病。2008年12月份吉林省海天牧业发展有限公司生态床上的300多头仔猪有20头猪发生了异常。病猪精神萎靡,食欲不振,呼吸困难,体温升高至41-42℃,个别的有张口呼吸或腹式呼吸。从口鼻流带有血泡沫状液体。其中有2个仔猪生长缓慢,大部分拉稀,粪便呈黄绿色,有时粪便干燥,呈交替性。

2 病理剖检

剖检3头病死猪,可见腹腔积液,腹腔内有纤维素性炎症,肝脏有灰白色坏死灶;脾长,肠系膜淋巴结肿大,肠静脉淤血;肾脏浆膜有出血斑;胃黏膜有出血斑和溃疡;十二指肠、回肠及盲肠黏膜上有黄色黏液并有固膜性炎症;胸腔有纤维素性渗出,心包积液,心脏表面有纤维素性炎症包裹,肺脏表面有纤维素性炎症,剥离后见肺小叶和尖叶两侧均呈肉样变,气管及支气管内有大量带血泡沫黏液。

3 实验室检验

仔猪副伤寒及传染性胸膜肺炎抗体检测用仔猪副伤寒和传染性胸膜肺炎间接ELISA检测试剂盒(西班牙海博莱公司)检测血清中仔猪副伤寒和传染性胸膜肺炎抗体。结果仔猪副伤寒和传染性胸膜肺炎均为阳性。

仔猪副伤寒检查,取病死猪的肝,肠系膜淋巴结,心血涂片,革兰氏染色镜检,可见小的两端钝圆的革兰氏阴性菌。传染性胸膜肺炎检查取病死猪心血、肝、肺、胸腔积水涂片。革兰氏染色镜检可见肝,肺和胸腔积水中均有革兰氏阴性球杆菌。

细菌分离、纯化。仔猪副伤寒的分离、纯化取病死猪的肝直接涂布于普通琼脂和SS琼脂培养基上,37℃培养24h,均长出直径2mm,湿润的灰白色小菌落,挑取典型菌落染色镜检,可见到小的革兰氏阴性菌。传染性胸膜肺炎的分离、纯化取病死猪心血、肝、肺、胸腔积水接种于普通培养琼脂和SS琼脂培养基上,于37℃灼缸中培养24h后,可见肝、肺和胸腔积水接种的琼脂基上均有针尖大小,圓形,隆起,边缘整齐,表面光滑的菌落生长,革兰氏染色镜检可见革兰氏阴性球菌落。

通过药敏试验选用临床常用的抗生素20多种,用培养基扩散法进行药敏试验,结果显示,这两种菌株对头孢他啶,头孢噻呋,头孢曲松,呋喃妥因,丁胺卡那,环丙沙星和左氧氟沙星七种药高敏;对磺胺嘧啶,土霉素,头孢拉定,头孢唑啉,头孢氨苄,阿奇霉素,恩诺沙星,庆大霉素,多粘菌素9种药物中敏;对氨苄青霉素,四环素,强力霉素,卡那霉素,利福平6种药物低敏。

通过细菌鉴定,沙门氏菌用分离细菌接种生化培养基;48h观察结果,能发酵葡萄糖,甘露醇;不发酵乳糖,阿拉伯糖;能利用枸橼酸盐,甲基红试验(MR)阳性;靛基质,硫化氢试验阴性。胸膜肺炎放线杆菌在系列生化鉴定培养基中加入NAD,使其浓度为0.01%,接入纯化菌,37℃培养24h,结果显示,分离发酵鼠梨糖,发酵葡萄糖,麦芽糖,木糖和甘露醇产酸产气;不发酵乳糖,蔗糖,阿拉伯糖和山梨醇,MR和尿素酶阳性;VP、氧化酶和靛基质阴性。根据细菌形态,培养特性和生化鉴定,结合抗体检测结果,判定纯化菌株为仔猪副伤寒和传染性胸膜肺炎混合感染菌。

4 治疗方案

根据临床实践该病特点及剖检所见选用两种治疗方法,第一治疗方法对缓解临床症状起到作用,要求对猪场进行严格、彻底的消毒后,将发病猪迅速隔离饲养,用左氧氟沙星200g/t和环丙沙星200g/t混于饲料中,连用7d,加上肌肉注射丁胺卡那霉素,按15mg/kg颈部注射,每日2次,连续2-3d,仔猪症状有所缓解但不佳。另一种是紫花地丁180g,黄芩120g,苦参120g,生石膏120g,知母120g,桔梗120g,加水5000ml,煎至3000ml,每头猪灌服250ml,每天2次,连用3d,较单纯用抗菌素治疗效果要好。

5 结论

仔猪沙门氏菌和放线杆菌极易产生耐药性。仔猪副伤寒耐药力更强,虽然抗生素的应用对控制和预防沙门氏菌有作用,但由于抗生素的使用不当,耐药性日益严峻。血清型较多,血清型也不相同。各型之间及同一血清型的不同菌株毒力和致病性均存在差异。应确定主要流行的优势血清型,以开发具有交叉保护的疫苗是预防该病。

保育阶段的仔猪抵抗力最差。如断奶应激、转群应激、换料应激、环境改变的应激、高密度的应激,应激反应导致猪的抵抗力降低。仔猪到断奶阶段母源抗体几乎降低到了最低的水平,容易在这一时期感染各种病原。所以只有增加机体的免疫力才能减少病原的袭击。

参考文献

[1] 王振敏,盛海兰,刘永红.仔猪副伤寒病的诊治[J].现代化农业,1997,(11):22.

[2] 刘征.仔猪副伤寒的诊治[J].新农业,2001,(05):28.

[3] 孟宪雨,王爱娜,戚凯.猪传染性胸膜肺炎的防治措施[J].山东畜牧兽医,2006,(01).

[4] 李杰.猪传染性胸膜肺炎的诊断与防制[J].现代畜牧兽医,2006,(02).

[5] 仔猪副伤寒的防治[J].畜牧兽医科技信息,2005,(05):41.

[6] 王妮,刘霞,李景德,于申业,刘方娜,张伟.猪传染性胸膜肺炎的诊断与防治[J].中国医学杂志,2006,(03).

羊传染性胸膜肺炎的诊治 篇11

1 发病情况及症状

2008年9月2号饲养户用伊维菌素和丙硫苯咪唑进行了一次全群驱虫, 放牧发现个别咳嗽, 第二天早晨发现两只小羊死亡, 50多只羔羊和10多只大羊发病, 到2008年9月5号共有63只羊发病, 死亡8只, 造成了较大的经济损失, 发病率为50%左右。羔羊表现咳嗽, 精神沉郁, 有些羊有腹泻现象。体温升高至40.5~41℃左右, 食欲废绝, 呼吸急促, 肺部叩诊出现浊音, 听诊肺泡呼吸音呈捻发音。随着病情发展, 病重羊卧地不起, 呼吸极度困难, 全身颤抖, 可视黏膜发绀, 目光呆滞, 有痛苦的呻吟声, 死亡较快。病程2~3 d, 有的仅一天。成羊表现体温升高。不爱运动, 常卧于圈舍四周, 驱赶后常出现咳嗽症状, 2~3 d后咳嗽加重, 呼吸困难, 腰背弓起, 头颈伸直。按压胸部病羊表现敏感、疼痛, 病程常为7~10 d。怀孕母羊发生流产。

2 剖检变化

病变多集中在胸部, 胸腔内有淡黄色的积液。暴露在空气中积液形成纤维素蛋白凝块。急性病例肺部的损害多集中在一侧, 病变多集中在肺组织的尖叶, 肺脏上有肝变区, 肝变区突出于肺脏表面, 颜色红至灰色不等。切面呈大理石样, 胸膜变厚表面有大量的纤维蛋白渗出物。胸膜与肋骨或心包粘连。支气管淋巴结和纵隔淋巴结肿大, 胆囊充盈, 肾脏肿大, 表面有出血点。

3 实验室诊断

直接涂片检查。无菌操作取病死羊的心血、肝、肺及淋巴结吉姆萨染色法染色后镜检, 可见0.3~0.5 μm的菌体。

无菌操作取病羊的肺、肝、淋巴结接种于营养琼脂和血琼脂平板37℃培养48 h, 未见细菌生长。

4 治疗措施

胸腔注射5%恩诺沙星10 mL, 具体做法为:病羊左侧卧保定在肩关节水平线上, 距肘关节5 cm处剪毛、消毒, 垂直进针3~5 cm穿透皮肤、肋间隙到达胸腔, 但不能刺伤肺脏。胸腔注射每天注射一次, 连续治疗5~7 d, 为一个疗程。

对症状较重的病羊可采用输液治疗, 5%碳酸氢钠20~30 mL, 10%葡萄糖150~200 mL, 红霉素50万单位静脉注射一天一次, 连用5~7 d。

在饲料中添加抗生素, 每吨饲料恩诺沙星200~400 g, 连续饲喂7~10 d。

对体温升高的病羊肌肉注射安乃近, 缓解症状。

5 小结

上一篇:次生代谢下一篇:网络调试论文