无菌检测（精选4篇）
无菌检测 篇1
建立一套快速、简洁有效的10000级洁净室灭菌效果检测方法, 用于粉针车间无菌室的洁净管理, 非常必要。我们以车间的一个10000级洁净室作为试验基地, 由车间化验室提供仪器及细菌培养, 以采用灭菌后, 每立方米空气中沉降菌菌落数 (cfu/m?) 作为检测指标。
1 材料和方法
1.1 实验材料
恒温培养箱, φ90mm培养皿, 肉汤琼脂培养基, 臭氧、二氧化氯、甲醛
1.2 10000级洁净室结构
一、二、三更衣室缓冲走廊10000级洁净室, 每个房间都装有紫外线灯管及臭氧设备。
1.3 10000级洁净室空气净化及灭菌方法
1.3.1 当生产线的工作全部结束后, 点击空调机控制触摸屏“开/关”, 显示屏显示为关机状态。
1.3.2 待空调机风机、压缩机及所有风阀全部关闭, 打开风箱体上的箱门。
1.3.3 10000级洁净室清洁
1.3.3. 1 洁净室日清洁:
1.3.3. 1. 1 每日工作结束后首先用指定丝光
毛巾清洁门窗、四壁、机器台面、灯检桌、椅子、分瓶转盘、隧道干燥箱内外、传送带、监视器、工具、工具柜, 再用指定消毒液消毒。
1.3.3. 1. 2 用注射用水冲刷旋塞器至无胶屑、黑点, 再用75%乙醇冲刷一遍。
1.3.3. 1. 3 地面清洁:
各岗位人员用丝光毛巾蘸注射用水擦试一遍, 清洁至无粉尘、无污渍, 然后再用消毒液擦一遍, 墙面和地面的圆弧处用消毒液反复清洁, 将缝隙处擦洁净为止。
1.3.3. 1. 4 盛胶塞桶、盛铝盖桶、半成品不锈钢盘的清洁:
将胶塞桶、铝盖桶及桶盖先内后外擦洗干净。再用75%乙醇擦拭干净, 盖好桶盖放置不得超过24小时备用。然后将压盖室的不锈钢盘刷洗干净, 再用75%乙醇刷洗一遍, 倒至存放在盘架上自然晾干。
1.3.3. 1. 5 清洁完毕后, 将清洁用具清洗干
净, 用121℃饱和蒸汽灭菌30分钟后晾在指定架上;不锈钢盆、不锈钢桶等清洁干净、晾干, 并挂上容器状态标志卡, 机器设备挂上设备状态标志卡。
1.3.3. 1. 6 水池及无菌地漏清洁:
由专人把水池内外用消毒液进行擦洗干净。将无菌地漏内、外盖, 用消毒液进行刷洗、浸泡、液封, 然后依次盖好盖, 将盖擦洗干净。
1.3.3. 1. 7 清洁完毕后, 洁净室人员离开, 由专人将拖鞋刷洗干净后摆放到鞋架上。
1.3.3. 1. 8 洁净室及更衣室每日班前、中午、晚上用紫外灯照射至少30分钟。
1.3.3. 1. 9 每日处理完毕后, 由组长、检查员
进行彻底检查, 并记录, 由工艺员及车间检查员复核。
1.3.3. 1. 1 0 由专人用消毒液进行各室喷雾, 人员撤出。
1.3.3. 1. 1 1 洁净室每周两次大处理, 更换品种时, 清场后洁净室要进行大处理。
1.3.3. 2 甲醛消毒
1.3.3. 2. 1 准备36%甲醛溶液。
1.3.3. 2. 2 检查各洁净室内及有风口的房间是否有人员停留, 及时通知离开。
1.3.3. 2. 3 打开回风阀门, 打开送风阀。
1.3.3. 2. 4 启动风机和变频器, 听、看风机、
电机是否有异常, 有异常立刻停机, 无异常可加热消毒。
1.3.3. 2. 5 打开加热器阀门至100%, 调节送风温度及分装室温度在控制范围内。
1.3.3. 3 二氧化氯消毒
1.3.3. 3. 1 准备2%二氧化氯溶液。
1.3.3. 3. 2 检查各洁净室内及有风口的房间是否有人员停留, 及时通知离开。
1.3.3. 3. 3 关闭新风阀, 打开回风阀门, 打开送风阀。
1.3.3. 3. 4 启动风机和变频器, 听、看风机、
电机是否有异常, 有异常立刻停机, 无异常可消毒。
1.3.3. 3. 5 戴好防毒面具、乳胶手套、穿好水鞋注意安全防护。
1.3.3. 3. 6 打开消毒罐的进料阀门, 加入2%
二氧化氯溶液, 活化15分钟后, 加入饮用水, 关进料阀门。
1.3.3. 3. 7 打开消毒罐夹层加热的进汽和汽阀门开始加热。
1.3.3. 3. 8 二氧化氯蒸汽随管路进入空调机风箱内, 随风送入洁净室。
1.3.3. 3. 9 闭合循环2小时停风机, 保持5小时。
1.3.3. 3. 1 0 二氧化氯每半月1次, 甲醛每月
1次。
1.4 10000级洁净室检测
1.4.1 将培养灭菌后的空白培养基进行顺
序编号, 然后放在桶中, 将桶外侧用75%乙醇棉球擦试后, 放入洁净室传递橱内, 经紫外灯照射后传入洁净室。
1.4.2 化验员按照《人员进出洁净区标准操作程序》进入洁净室做沉降菌检查。
1.4.3 洁净室菌检位置;进风口、回风口、操作者、缓冲室、墙壁、机器、台面、无菌服及操作者双手。
1.4.4 无菌服的菌检:
用经过灭菌的棉签擦拭无菌服的胸口处、帽兜额头处、腰部、前臂、膝部, 然后在培养48小时的空白培养基上擦试后, 迅速盖好平皿碟的盖, 将其放入桶中。
1.4.5 操作者双手的菌检:
打开培养48小时的空白培养基的盖, 让操作者分别将双手五指在培养基上点一下, 然后分别盖好放入桶中。
1.4.6 将培养48小时的空白培养基放在洁
净室菌检位置上, 将平皿碟的盖打开, 暴露30分钟, 把盖盖好集中放回桶中, 并放入传递橱。
1.4.7 在培养48小时的空白培养基中取三个培养基, 做阴性空白对照。
1.4.8 从10000级洁净室内取回培养皿, 放
入恒温培养箱内培养48小时, 观察细菌生长情况。
1.4.9 肉汤培养基试管澄清, 透明为合格品, 微浊、浑浊为不合格。
1.4.1 0 10000级洁净室沉降菌总数计算,
10000级洁净区每个培养皿内不超过三个菌落为合格。
1.4.1 1 根据菌检情况, 认真填写洁净室沉降菌检查报告。
1.5 结果
每个采样点用三只培养皿采样, 每立方米空间 (cm2) , T为平板暴露时间 (min) , N为平皿上细菌的平均菌落数 (cfu/平皿)
表1不同采样点上的菌落数
2 讨论
从实验结果分析, 作为试验的10000级洁净室灭菌效果非常理想, 原因可能是:a.人员能够严格按照SOP进行操作;b.10000级洁净室设计合理、密封好;c.10000级洁净室灭菌时间及方法合适;d.检测过程中人员流动小;e.10000级洁净室清洁及消毒用的消毒液使用品种及配制浓度起到一定的作用。
无菌检测 篇2
关键词：一次性使用无菌医疗器械,质量检测,管理
为了控制感染现象, 医院内部会使用大量的一次性使用无菌医疗器械, 这些医疗器械不仅能够有效控制感染, 同时还能够有效提升护理工作质量。由于一次性医疗器械的广泛推广, 在管理的过程中, 稍有不慎就可能留下安全隐患, 给患者的生命带来威胁。因此, 加强一次性医疗器械的管理力度, 是当前医院感染控制的重要手法。医疗器械检测机构加强对一次性医疗器械的监督抽验, 通过对其进行质量检测, 为行政监督提供依据, 能够提高医疗器械的安全性, 使患者的健康得到更好的保障。
1 资料与方法
1.1 一般资料
我中心2010年1月-2012年12月共对一次性使用无菌医疗器械进行了263批次检测。
1.2 检测方法
从同批次有效期内的一次性使用无菌医疗器械中随机抽取3个样品进行热原检测。
1.2.1 试验操作具体方法:
对所有参与试验的器具进行去热原、去污、精洗以及去洗涤剂四项洗涤处理。再将其放置到电烤箱内进行干烤处理。保持试验室内空气环境的整洁度, 并进行适当地消毒处理。由于室内温度过高会对试验结果造成影响, 为此, 需对室内温度进行调整, 使其保持在25℃上下。
1.2.2 供试液的制作:
所有操作均在无菌条件下进行, 将10mL的无热原灭菌注射用水注入到输液器中, 而注射器则根据其实际规格, 抽取最大刻度的无热原灭菌注射用水, 对其进行震荡处理。为检验样品注入无热原灭菌注射用水后, 对其进行充分的震荡, 随即进行封闭处理后放入温度维持在 (37±2) 摄氏度的恒温箱中, 完成2h处理后将其取出, 分配到玻璃试管内为试验做好准备。
1.2.3 试验方法
运用砂轮轻锯鲎试剂安瓿颈, 再采用碘伏对其进行消毒处理, 方可开启安瓿, 对鲎试剂进行稀释, 带到稀释用水与鲎试剂完全融合后;再从供试液中取出0.11mL, 将其置于安瓿内, 并轻晃安瓿, 等到内容物逐渐融合后再将管口封闭;放入恒温箱或水浴箱内, 其温度保持在 (37±2) 摄氏度, 保持60±2min。
1.2.4 阴性对照组的制备。
轻弹鲎试剂瓶颈, 使粉末能够逐渐沉入到底部, 以此增强精确度。运用砂轮轻锯鲎试剂安瓿颈, 再采用碘伏对其进行消毒处理, 方可开启安瓿, 对鲎试剂进行稀释。配制2管阴性对照组。
1.2.5 阳性对照组的制备。
取2支“中检所981”细菌内毒素工作品, 取1mL细菌内毒素检查用水, 放入到漩涡器内进行轻微震荡, 震荡时间达到15min, 再对鲎试剂进行稀释。
1.2.6 结果判断。
将供试品试管轻轻旋转, 旋转1800即可, 若试管内物体仍然保持非常完整, 并呈现为凝胶状, 即可确定为阳性;反之保持不完整或不呈现为凝胶状, 即可确定为阴性。需使阴性两支试管均呈现为阴性, 阳性均呈现为阳性, 否则该试验视为无效。
2 结果
对一次性使用无菌医疗器械进行热原检测结果, 为阴性即可投入到临床使用。我中心近三年对一次性使用无菌用品进行263批次检测结果如表1。
3 讨论
一次性无菌医疗器械属直接进人人体血管、体腔、无菌组织内的特殊医疗器械, 其质量优劣直接影响患者身体健康及生命安全。医院一定要把好订货关、采购关, 对新购进的产品抽检并全程监控, 医疗器械检测机构对其监督抽验的结果也可作为行政监督的依据。
在采购一次性使用无菌医疗器械时, 必须对厂家的资质资料进行严格审查核对, 所有许可证件均应当通过网络查询辨识真伪, 并确定所有复印证件均加盖厂家公章, 在确定资质资料无问题后, 必须进行存档备案。此外, 安排专人负责一次性使用无菌医疗器械的采购工作, 在验收的过程中, 必须根据厂家开具凭证进行严格核对, 票据上必须详细显示产品名称、批号、生产日期、生产厂家等信息, 而验收的过程中, 则必须将产品的产品名称、批号、生产日期、生产厂家等信息与票据开具的进行严格审核, 同时检查产品是否出现漏发、错发和破损等现象。在产品验收后, 应当及时存入库房。库房应当按照药监局相关规定, 设置专门的存放区域, 货架必须严格根据相关标准摆放, 同时注意调整库房的温湿度, 为产品提供一个最佳的存放环境。此外, 所有产品入库及出库、流向均应当有数据资料, 以备必要时查询, 并不定期对库存和电子库存进行核对, 一旦发现问题, 必须及时纠正。根据本组资料, 我中心近三年检测结果均100%合格率。这就说明, 加强一次性使用无菌医疗器械管理和质量检测, 对预防院内感染上有着非常重要的意义。
参考文献
[1]国家药品监督管理局.一次性使用无菌医疗器械监督管理办法, 2011.
无菌检测 篇3
法国生物梅里埃公司生产的用于血液样品细菌检测的BacT/ALERT 3D系统已在国内外得到广泛的应用。在国外, 该系统还广泛用于商业无菌的布丁、奶酪、牛奶、果汁等罐装饮料、食品样品的检测。
本实验以与罐头食品关系最密切的细菌为研究对象, 结合了低酸性罐头 (pH4.6以上) 变质因素和原因菌的分析, 以及菌株收集获取的实际情况, 选择了十株有代表性的菌株 (枯草芽胞杆菌ATCC6633、蜡样芽胞杆菌ATCC11778、大肠杆菌ATCC8739、金黄色葡萄球菌ATCC6538、生孢梭菌1.2157、粪链球菌1.0130、短小芽胞杆菌63202、产气荚膜梭菌64701、地衣芽胞杆菌和阴沟肠杆菌) 进行研究, 以确定BacT/ALERT 3D系统的灵敏度、特异性和适用性以及罐头食品取样量、取样方式、培养温度、培养时间和检出时间。从而确定其是否适合用于食用菌罐头食品商业无菌的检测。
BacT/ALERT 3D系统检测原理
微生物在生长时会产生CO2, CO2会使培养瓶底部的感应器从浅灰色变成浅黄色, 并且这种颜色变化可以通过仪器检测到。以培养瓶中初始CO2水平为基础, 在指定的天数内, 若CO2水平发生显著变化, 说明样品中有细菌存在, 则判定为阳性;在指定的天数之后, 若CO2水平没有发生显著的变化, 则样品为阴性。
BacT/ALERT 3D检测试验
1.BacT/ALERT 3D检测系统特异性和灵敏度试验
菌悬液制备:将保存的产气荚膜梭菌和生孢梭菌接种硫乙醇酸盐液体培养基 (其它实验菌株接种营养肉汤) , 36℃, 厌氧培养24小时后备用。将各培养物用生理盐水适当稀释后用于测试。
接种:用一次性注射器分别吸取各种浓度产气荚膜梭菌和生孢梭菌菌悬液各1mL, 以注射的方式接种到iNST培养瓶中 (法国生物梅里埃公司生产, 有限期内使用) , 同时将各菌悬液接种1mL到一次性平皿, 然后倾注硫乙醇酸盐固体培养基, 36℃厌氧培养24小时后, 进行平板菌落计数。其它各种菌悬液则按同样方式接种到iAST培养瓶 (法国生物梅里埃公司生产, 有限期内使用) 中, 同时进行平板菌落计数。
BacT/ALERT 3D系统检测:按仪器说明书进行操作, 将接种好的培养瓶加载到仪器的孵育箱中, 温度设定为36℃, 时间设定为3天。
2.BacT/ALERT 3D检测系统检测罐头样品试验
试样的处理:打开密封包装前, 用温水擦净试样外包装, 放入无菌室, 以紫外光杀菌灯照射30分钟。用75%酒精棉球擦拭试样外包装 (铁盒罐头擦拭后点燃灭菌) , 带汤汁的罐头应在开启前适当振摇, 然后再用灭菌卫生开罐刀或罐头打孔器开启。
加样:在使用培养瓶前, 用75%酒精棉球擦拭瓶口。开启包装后, 用一次性注射器吸取内容物各10mL, 分别注入iAST培养瓶和iNST培养瓶。加完试样后, 在培养瓶上做好试样标记。加样后, 应该留样, 即用一次性注射器吸取内容物10-20mL, 移入灭菌试管, 保存于冰箱中。
BacT/ALERT 3D系统检测:按照仪器操作说明使仪器处于正常工作状态, 并按检测类型设定好孵育温度和最大检测时间。酸性罐头设定孵育温度为30℃±1℃, 最大检测时间为3天。低酸性罐头设定孵育温度为36℃±1℃, 最大检测时间为3天。将接种好样液的培养瓶加载到孵育箱中。
感官检查和pH测定:在光线充足、空气清洁无异味的检验室中将试样内容物倾入白色搪瓷盘内, 由有经验的检验人员对产品的外观、色泽、状态和气味等进行观察和嗅闻, 用餐具按压仪器或戴薄指套以手指进行触感, 以鉴别食品有无腐败变质的迹象, 并测定pH。
培养瓶结果分析:当仪器检测到阳性瓶后, 电脑会报警提醒操作者, 可进入仪器的浏览和打印界面, 记录阳性瓶的读数和标记;对仪器显示“假阳性”的培养瓶, 如果涂片镜检表明没有微生物, 那么, 应该进行继代培养。如果在继代培养中出现生长, 那么, 培养瓶视为“阳性”, 记录阳性瓶的读数和标记;当孵育时间达到设定的最大检测时间, 培养瓶中无微生物生长, 则仪器会给出阴性的结果, 记录阴性瓶的读数和标记。
阳性瓶结果的验证:将阳性培养瓶打开, 按GB/T 4789.26中表2或表3的要求接种培养进行试验并记录。对仪器分析结果为阳性的试样, 将留样按GB/T 4789.26中6.10-6.12进行试验并记录。
结果判定:仪器分析结果为阴性, 经感官检查、pH测定, 确认无微生物增殖现象, 则为商业无菌;仪器分析结果为阳性, 经过确认无微生物增殖现象, 则判为商业无菌;仪器分析结果为阳性, 经确认有微生物增殖现象, 则为非商业无菌。
结果与讨论
1.BacT/ALERT 3D检测系统特异性和灵敏度试验结果
由测得的实验数据表明, iAST和iNST培养瓶对各实验菌株均敏感, 而且在很低含量的范围时, BacT/ALERT 3D系统也可进行测试, 菌含量越低, 则DT值 (判断为阳性的时间) 越大;各实验菌株之间含菌量相当时, 其DT值有微小差别;当含菌量小于50个时, DT值一般会在10小时到20小时之间, 最大也不超过30小时, 且当计数结果为零时, 仪器均显示阴性。
由于罐头食品经过热杀菌, 通常不含菌或含菌量很低, 所以重点关注当菌含量很低时DT值的大小。通过对菌液进行一系列的稀释, 重复测试获得灵敏度数据 (5瓶阳性测试的平均值) (见表1) , 意在验证该BacT/ALERT 3D监测系统是否适用于商业无菌的检测, 同时这些数据可为罐头商业无菌的最大检测时间的确定提供参考。
另外, 在实验过程中, 灵敏度测试的难度在于制备菌悬液时菌含量只是预估而不能确定, 加之在含菌量极低时, 菌液中细菌的分布易出现不均匀而造成实验误差。就仪器本身的灵敏度而言, 只要样本中含有1个细菌, 就能检测到。
2.BacT/ALERT 3D检测系统检测罐头样品结果
样本pH对DT值的影响试验
罐头食品依据p H不同可分为低酸性罐头和酸性罐头, 在低酸性罐头食品中, 不同原料的罐头其pH也不尽相同。为验证样本的不同p H是否会对D T值产生影响, 我们选择了大肠杆菌ATCC8739、金黄色葡萄球菌ATCC6538、短小芽胞杆菌63202和产气荚膜梭菌64701, 配制成系列菌悬液, 通过调节pH, 分别制成pH4.5、pH6.0和pH8.0的模拟样品。通过实验发现, 样本在pH4.5、pH8.0范围时, 使用iAST和i NST培养瓶进行测试, 其DT值无显著差异。因此, iAST和iNST培养瓶可以用于检测各种低酸性罐头食品。
接种方式、加样量和孵育温度的确定
(1) 接种方式:通过对直接注射接种和打开瓶盖接种两种方式的比较, 我们发现, BacT/ALERT 3D微生物检测系统培养瓶需密封口, 如果打开瓶盖接种, 需再封口, 操作不便, 并且存在污染的风险, 因此本研究中, 针对食用菌罐头样品多含有汤汁的情况, 选择了以直接注射方式进行加样, 快速简便。
(2) 加样量确定:BacT/ALERT 3D检测系统从仪器本身的灵敏度而言, 只要样本中含有1个细菌, 就能检测到。细菌含量越高则DT值越小。因此同一稀释度, 加样量越大其含菌量也越高, DT值则越小, 当加样量提高时可使灵敏度提高。由于罐头食品中通常不含菌或含菌量很低, 因此尽可能的增大加样量则能提高检测灵敏度。根据培养瓶所能承载的体积, 最终将加样量定为10mL。
(3) 孵育温度确定:BacT/ALERT 3D检测系统对相同含菌量, 不同孵育温度的样本进行检测时, 其DT时间不尽相同。在微生物适宜的温度范围内, 孵育温度高的比孵育温度低的DT值小。由于本研究对象食用菌罐头多为低酸性罐头, 传统商业无菌保温温度为36℃, 因此本实验将孵育温度也设为36℃, 与传统方法保持一致。
(4) 最大检出时间DT值的确定:由于一般微生物95%可在24小时内恢复生长, 98%可在72小时内恢复生长。因此, 为了保证试验不出现假阴性, 在综合了本研究与仪器厂商的BacT/ALERT 3D检测系统灵敏度的试验数据后, 最终将最大要检出时间DT值定为3天。
常规方法与BacT/ALERT检测罐头食品的试验比较
以不同种类的食用菌罐头为研究对象 (共45份) , 进行不同方法的比较试验:分别取同批次的3个罐头, 一罐采用BacT/ALERT方法进行测试, 另一罐按常规保温观察, 第3罐常温放置作为对照。实验结果显示, 45份罐头中有一份BacT/ALERT 3D检测阳性, 而按GB/T4789.26方法保温观察, 样品未见胖听、泄漏、感官异常。将显示阳性培养瓶打开, 按GB/T4789.26中表2的要求接种培养进行试验, 同时对留样进行试验, 最后确认为嗜温性需氧芽胞杆菌。可见, 采用BacT/ALERT方法进行检测, 不但简便, 而且检测结果准确。
结论
无菌检测 篇4
1 资料与方法
1.1 一般资料:
选取我院于2014年1月~12月在手术过程中使用的无菌灯柄404个, 表面积为288 cm2。在手术室的选择上, 百级手术间148个, 万级手术间162个。手术见温度在23℃左右, 湿度在50%~60%。在患者进入手术室前要保证开启层流30 min, 空气评定标准符合国家对层流手术室的要求 (细菌菌落总数<10 cfu/m3) , 此时测得无菌灯柄打开时无细菌生长。手术种类的选择为属于Ⅰ、Ⅱ无菌手术, 手术时间要超过4 h, 患者在手术之前半个小时注射抗生素, 主要为青霉素类或者头孢类抗生素, 在手术进行3 h时在注射一组抗生素, 同时要保证患者没有其他病症影响检测。
1.2 方法:
按照《医疗机构消毒技术规范》中所示, 在无菌灯柄的各个不同阶段涂抹无菌棉拭纸, 其中棉拭纸使用前要浸在无菌的生理盐水采样液中, 选择的时间段分别为未使用时, 使用3、4、5、6 h后, 在擦拭结束后去掉手接触部分, 余下部分置入无菌的生理盐水试管中 (10 m L) , 在微生物室培养48 h, 观察后记录细菌动态, 同时要记录灯柄表面是否存在血迹。
1.3 统计学方法:
将记录的数据采用专业的SPSS21.0软件包进行统计学分析处理。计量资料以均数±标准差 (±s) 表示, 采用t检验, 计数资料采用χ2检验, P<0.05表示差异有统计学意义。
2 结果
2.1 无菌灯柄细菌检测情况在不同手术室中的比较:
各手术间从第4 h开始检测到细菌, 共测得标本1084例, 百级手术间404例, 其中阳性率为20.05%, 万级手术间438例, 阳性率为18.49%。虽具有差异性, 但差异不具有统计学意义 (P>0.05) 。见表1。
2.2 无菌灯柄细菌检测情况在有无血迹之间比较:
在有血迹情况下通过细菌检测出阳性细菌168例, 阳性率达到27.72%;在无血迹情况下通过细菌检测出阳性细菌40例, 阳性率达到8.37%, 明显低于有血迹情况下的细菌阳性率, 差异具有统计学意义 (P<0.05) 。见表2。
3 讨论
在手术室内保持无菌对手术的顺利进行有非常重要的意义, 能够有效防止微生物感染。手术过程中的人员的流动、器具的活动等都会影响空气中细菌的数量。所以, 保证手术间内的无菌状态不仅要减少人员的流动, 还要保证手术器械的无菌管理, 使患者在最有利的环境中进行手术[1]。
本院此次对无菌灯柄在层流手术中的细菌动态检测与李先锋, 魏先, 阳世伟等人所著的《层流手术室中浸血盐水细菌含量研究与分析》的结果相同[2]。在不同手术室中无菌灯柄细菌检测情况比较, 百级手术间与万级手术间的手术环境中细菌的阳性率为20.05%和18.49%, 各级手术间细菌阳性率差异不具有统计学意义 (P>0.05) ;有无血迹之间无菌灯柄细菌检测情况比较, 有血迹无菌灯柄的细菌阳性率为27.72%, 高于无血迹无菌灯柄的细菌阳性率8.37%, 差异具有统计学意义 (P<0.05) 。
根据数据显示, 要缩短无菌灯柄暴露在空气中的时间, 在各级手术间中, 3 h以内均无细菌生长情况测出, 由此可以得出在手术不超过3 h时, 灯柄不会成为细菌感染源, 若手术时间延长, 可以在手术开始时打开灯柄[3]。在器械的擦拭中, 只注意到手术器械中的血迹清洁, 灯柄的血迹经常被忽略, 通过检测得, 在有血迹的情况下, 呈阳性的细菌增加, 与血迹的存留有很大的关系, 所以在手术过程当中, 护士也要时刻注意无菌灯柄的血迹情况, 及时擦拭, 延长使用时间[4]。
4 结语
综上所述, 无菌灯柄在使用过程中的细菌动态与所处的不同手术室没有关系, 但是在使用无菌灯柄是要注意表面的血迹, 及时擦拭, 防止滋生细菌, 形成感染。同时也要注意手术室内无菌环境的保持, 保证患者处在一个安全的环境中进行手术。
摘要：目的 针对层流手术室中无菌灯柄上的细菌进行动态检测和分析。方法 选取手术时间在4 h以上的手术中使用的无菌灯柄404个, 在使用前和使用3、4、5、6 h后对其表面微生物进行采样, 进行细菌学检测。结果 不同手术室中无菌灯柄细菌检测情况比较, 各级手术间细菌阳性率差异不具有统计学意义 (P>0.05) ;有无血迹之间无菌灯柄细菌检测情况比较, 有血迹无菌灯柄的细菌阳性率高于无血迹无菌灯柄的细菌阳性率, 差异具有统计学意义 (P<0.05) 。结论 无菌灯柄在使用过程中的细菌动态与所处的不同手术室没有关系, 但是在使用无菌灯柄要注意表面的血迹, 及时擦拭, 防止滋生细菌, 形成感染。
关键词：层流手术室,无菌灯柄,动态检测
参考文献
[1]陈小娣, 钱小毛.手术室环境消毒质量现状及其监督措施[J].中华医院感染学杂志, 2008, 18 (4) :532-533.
[2]李先锋, 魏先, 阳世伟, 等.层流手术室中浸血盐水细菌含量研究与分析[J].南方护理学报, 2005, 12 (8) :2.
[3]Hussein JR, Villar RN, Gray AJR, et al.Use of light handles in the laminar flow operating theatre is it a cause of bacterial concern?[J].Ann R Coll Surg Engl, 2001, 83 (5) :353-354.