鸭疫里默氏杆菌病防治

鸭疫里默氏杆菌病防治（精选8篇）

鸭疫里默氏杆菌病防治 篇1

鸭疫里默氏杆菌病由鸭疫里默氏杆菌 (RA) 引起的, 又称鸭传染性浆膜炎, 在临床上主要引起鸭纤维素性肝周炎、纤维素性心包炎以及纤维素性腹膜炎, 能给养鸭业造成重大损失, 已成为危害各国养鸭业的主要细菌性传染病之一。Hendrickson和Hilbert首先报道在美国纽约长岛发现该病, 在我国, 郭玉璞等于1982年首次报道北京地区发现本病的流行。该细菌目前可感染鸭、鹅、鸡、火鸡、鸽子、野鸭、鹦鹉等鸟类, 甚至从猪、青鱼体内也分离鉴定。本病一般发生于2~8周龄的雏鸭, 多发于春冬季节, 在污染鸭场的感染率可达90%以上, 死亡率在5%~80%之间。目前已报道该菌共有21个血清型, 我国至少有1、2、3、5、6、10、11、13、14、15等16个血清型, RA血清型之间基本无交叉免疫保护作用, 流行菌株多表现为多重耐药。目前对于该病研究主要集中于鸭疫里默氏杆菌耐药性和疫苗研制。

1 鸭疫里默氏杆菌耐药性现状

使用抗菌药物预防该病是目前最常用的一种方法, 但长期大量使用抗生素, 已经使该病产生了严重的耐药性, 出现了耐受2种、3种, 甚至更多种抗生素的耐药性。戈锐从四川地区分离到一株RA, 发现对左氟沙星、蒽诺沙星、庆大霉素等高度敏感, 而对青霉素、链霉素、新生霉素等耐药。谢永平等对广西地区分离的36株RA研究发现, 有23种抗生素存在耐药性, 其中对强力霉素、庆大霉素、卡那霉素、丁胺卡那的耐药菌株比例达到100%。赵宝华等从分离的4株鸭疫里默氏杆菌发现其对头孢类和喹诺酮类等部分药物敏感, 能耐受3种及以上抗生素。阳艳洁等在桂林地区所分离的菌株大多对阿莫西林、氟苯尼考和头孢噻吩比较敏感, 而对丁胺卡那霉素、环丙沙星、氨苄青霉素、新霉素、蒽诺沙星和利福平不敏感, 6耐菌株占总菌株数的68.2%, 5耐菌株占77.3%。杨瑞锋从潍坊地区分离的三株鸭疫里默氏杆菌耐药情况均很严重, 尤其对氨基糖苷类、四环素类、磺胺类和喹诺酮类耐受力极强, 仅少数对其表现出较好的药物敏感性, 整个山东地区的多重耐药现象极其严重, 四耐、五耐菌株所占的比例占总菌株数的63.16%。蔡丙严研究表明泰州地区为血清1型, 对头孢吡肟、环丙沙星高度敏感, 对复方新诺明、阿米卡星、庆大霉素、青霉素、链霉素、阿奇霉素、林可霉素、利福平耐药。程龙飞等对73株11型RA分离株检测表明, 90%以上菌株对头孢唑啉、氟苯尼考和头孢氨苄敏感。查湖生等对安徽省某养鸭场番鸭群药敏试验结果显示, 分离株对强力霉素、氟苯尼考、复方新诺明、环丙沙星等抗生素敏感, 而对蒽诺沙星、诺氟沙星、庆大霉素、青霉素等抗生素具有耐药性。由此可见, RA在全国各地都产生了严重的耐药性, 耐药谱越来越广, 多重耐药现象极其严重, 防控压力极大。

2 疫苗研究近况

目前国外研制成的鸭疫里默氏杆菌菌苗有单价和多价灭活菌苗、弱毒疫苗和亚单位疫苗及混合大肠杆菌制成的二联灭活疫苗等, 在我国目前应用较多的是各种佐剂的灭活苗, 其中蜂胶灭活苗和油佐剂灭活苗两种单价苗都对预防鸭疫里默氏杆菌病有良好的效果。目前国内仅血清1型RA疫苗获得新兽药证书, 但在RA疫苗的研制方面取得了丰富的科研成果。杨灵芝等以10型RV菌株制备的油乳剂灭活疫苗, 对3日龄雏鸭产生的保护率可达70%, 14天达100%。王小兰等研制了血清1型、血清2型、血清10型鸭疫里默氏杆菌分离株油乳剂灭活疫苗。程增青等用血清Ⅰ型和血清Ⅱ型RV菌株研制的二价灭活疫苗, 用5日龄樱桃谷鸭分别进行安全性和效力试验, 攻毒保护率可达90%~100%。另外, 赵朴, 李艳奇等也研制成功了多价灭活苗。可见, 以上科研成果为疫苗的生产和推广提供了基础。中国农业科学院上海兽医研究所研制的鸭疫里默氏杆菌血清1型、2型和10型三价油乳剂灭活疫苗, 其安全性和效力检验均已达到规定要求。该疫苗对雏鸭使用安全, 接种3个免疫剂量无不良反应产生, 在常温下可保存1年;疫苗接种后对血清1型、2型和10型强毒的攻毒保护率均达90%以上, 免疫保护期为70天。

3 中草药防治研究近况

由于RA易产生耐药性, 针对这一情况, 国内一些学者开始研究中草药及其制剂的抑菌作用。臧莹安等对RA进行中药单方药物敏感性测定, 发现对黄芩、金银花、大黄、黄连高度敏感;蔡红等研究表明, 杜仲、大黄、板蓝根、佛手、秦皮和大青叶对RV的体外抑菌作用较好, 金银花、姜黄、黄芩、黄芪和紫草对RV体外抑菌作用较差;卢玉葵等用40味中草药浸出液对南海、三水、肇庆地区分离鉴定的3株RV进行体外抑制试验, 表明黄连、大黄、黄柏、板蓝根、石榴皮具有显著抑菌效果。另外, 一些学者用中药制剂或中药与抗生素结合, 开发出一些中草药复方制剂, 经临床试用后, 效果良好。孟冬霞等使用氟苯尼考、强力霉素、黄连、白头翁等药物进行治疗本病, 结果病情得到控制。晏平开用氯霉素或土霉素拌料饲喂, 并灌服黄连、白头翁、蒲公英等中药煎剂来防治RA感染, 疗效达到90%以上;胡厚平等将头孢噻呋和苍术、防风、龙胆、牛膝、夏枯草等组成的复方中药共同拌料, 外加肌肉注射氟苯尼考, 效果显著。可见, 我国学者充分发掘丰富的中草药资源, 研制各种制剂, 避开抗菌药物的副作用, 减少药物残留, 在防治鸭传染性浆膜炎方面做出了巨大贡献, 很值得兽医临床工作者学习和借鉴。

综合以上可见, 在鸭疫里默氏杆菌病防治方面疫苗免疫技术已经成熟, 抗菌药物产生的耐药性日益严重, 中草药防治取得了很多成效, 建议从饲养管理、免疫接种以及中药与抗生素相结合三方面入手, 进行综合性防治。

4 综合性防治措施

4.1 加强饲养管理, 实施“全进全出”的饲养管理制度

严格做好人员、车辆、饲料及环境条件的管理, 坚持定期消毒, 切断疾病传播的途径。做好病死鸭的深埋、焚烧等处理措施, 处理好粪尿、垫料等物品, 杀灭传染源。加强饲养管理, 保持饲料中各营养成分齐全, 保持合适的温度、湿度, 减少鸭群密度, 加强通风, 及时淘汰病弱个体, 增强鸭群抗病能力。

4.2 免疫接种

7日龄左右注射鸭疫里默氏杆菌灭活苗或鸭疫里默氏杆菌-大肠杆菌二联灭活苗, 对预防本病有一定的效果。本病血清型较复杂, 可试用本场分离的菌株制备灭活疫苗来进行免疫接种, 效果良好, 但是在对细菌进行回收培养过程中要确保无外源菌污染。

4.3药物防治

药物是目前我国许多地区防治鸭疫里默氏杆菌病的最常用方法, 特别是对于已经感染的鸭群, 采用抗菌药物结合中草药制剂治疗是一种主要的控制措施。采用氟苯尼考、左氟沙星、头孢类等药物都有比较好的效果, 头孢喹肟作为第四代头孢菌素类药物, 抗革兰氏阴性菌作用强, 抗RA效果优于盐酸环丙沙星可溶性粉、盐酸多西环素可溶性粉和氟苯尼考可溶性粉。但不同的RA菌株对抗菌药物敏感性差异较大, 以及临床上长期大量使用抗生素, 导致大量耐药菌株的产生, 在不同的地区、不同养殖场, RA对抗菌药物的敏感性都可能不一致, 因而, 对病死鸭进行病原分离, 对分离菌株进行药物敏感试验, 筛选高敏药物交叉使用, 同时结合本场的用药史来用药是防治该病的重要环节。对于发病鸭群, 用抗生素肌肉注射, 同时结合饮水、拌料给药, 辅助添加电解多维、消毒鸭舍用具等, 可有效控制疫情。

鸭疫里默氏杆菌病防治 篇2

关键词：鸭疫里默氏杆菌；血清型；鉴定；药敏试验

中图分类号： S858.322.61文献标志码： A文章编号：1002-1302（2014）01-0168-02

收稿日期：2013-05-09

基金项目：江苏省高等学校大学生实践创新训练计划（编号：2012JSSPITP3463）；江苏农牧科技职业学院科技资助项目（编号：YB1204）。

作者简介：蔡丙严（1980—），男，河南濮阳人，硕士，讲师，主要从事动物防疫与检疫专业的教学及科研工作。E-mail：caibingyan20@163.com。鸭疫里默氏杆菌（Riemerella anatipestifer，RA）是一种革兰氏阴性、无鞭毛、无芽孢的棒状杆菌，瑞氏染色呈两极着色。鸭疫里默氏杆菌所引起的传染病称为鸭传染性浆膜炎，该病呈世界范围分布，给养鸭业带来了巨大的经济损失[1]。

RA对营养要求较高，在普通营养琼脂和麦康凯琼脂上不生长，在胰酶大豆琼脂（TSA）、血液琼脂、巧克力琼脂上生长良好。RA在初次分离培养时对CO2依赖性强，一般在烛罐或CO2培养箱中，提高CO2浓度和湿度，37 ℃培养 48～72 h，RA生长最佳[2]。RA血清型众多且非常复杂，现在国际上报道的血清型共有21 种，其中优势血清型为 1 型和 2 型[3]，在我国，程安春等在此基础上又发现了4 个新的血清型[4]。血清型的复杂及血清型之间无交叉保护力给此病的防治带来极大的困难，多年来，由于生产上盲目用药、滥用药或超剂量用药，RA对各种抗生素均产生不同程度的耐药性，尤其对喹诺酮类和氨基糖苷类抗生素的耐药性非常普遍，耐药率极高，耐药情况复杂，并且来自同一群不同株对同一药物敏感性有差异的情况非常普遍[5-6]。

从江苏泰州周边地区2个规模养鸭场临床疑似鸭疫里默氏杆菌感染的病死鸭中，进行病原分离和血清型鉴定，并且对分离菌株进行药敏试验，为切实做好该病的防治工作提供依据。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1病料来源2013年3月，从泰州周边地区获得临床具有典型鸭疫里默氏杆菌感染的病死鸭，从病死鸭的脑、心血、肝脏中分离获得2株菌株，分别命名为TY1、TY2。

1.1.2培养基胰蛋白胨大豆琼脂培养基（TSA，批号：2107469）、胰蛋白酶大豆肉汤培养基（TSB，批号：2191068），均购自碧迪医疗器械（上海）有限公司；麦康凯琼脂培养基（批号：12075）、普通琼脂培养基（批号：120909），均购自杭州天和微生物试剂有限公司。

1.1.3药品阿莫西林、庆大霉素、环丙沙星、多西环素、头孢吡肟、阿米卡星、复方新诺明、青霉素、链霉素、阿奇霉素、林可霉素、利福平等12种药敏试纸（批号：20120920），购自杭州天和微生物试剂有限公司。

1.1.4试剂革兰氏染液、瑞氏染液、微量生化发酵管，均购自杭州天和微生物试剂有限公司；犊牛血清，购自浙江天航生物科技有限公司；鸭疫里默氏杆菌1～10型阳性血清，购自中国兽医药品监察所。

1.2方法

1.2.1细菌分离培养与形态观察无菌采取病死鸭脑、心血、肝脏等病料，分别接种于普通琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂培养基（TSA）、巧克力琼脂培养基、鲜血琼脂培养基和麦康凯琼脂培养基平板上，置37 ℃、5% CO2培养箱中培养 48 h。观察菌落形态，挑取单个疑似菌落涂片，革兰氏染色和瑞氏染色镜检，纯培养后，以40%甘油生理盐水于-70 ℃保存备用。

1.2.2生化试验挑取TSA 琼脂培养基、鲜血琼脂培养基平板上纯化的疑似 RA 菌株，按 Edwards PR 的方法用接种环在超净台将菌落接种于乳糖、半乳糖、蕈糖、果糖、蔗糖、棉子糖、葡萄糖、麦芽糖、甘露醇、山梨醇、枸橼酸盐、H2S、M-R、V-P 尿素酶、吲哚等生化培养基上，继续培养 48～72 h 观察试验结果。

1.2.3血清型鉴定将纯化培养的分离菌株在含有5%犊牛血清的 TSA 培养基上，37 ℃、5% CO2培养箱中培养36 h。取1滴标准阳性血清滴于干净玻片上，挑取少量菌落混匀于标准阳性血清中，静置片刻观察玻片凝集结果。

1.2.4药敏试验采用K-B纸片扩散法，将保存的2株菌株分别在TSA琼脂培养基平板上扩增培养，刮取菌落，用灭菌生理盐水稀释细菌悬液至1.5×108个/mL，吸取0.1 mL均匀涂布于TSA琼脂培养基平板上，待菌液表面干燥后，用灭菌镊子将抗生素纸片贴附在琼脂表面，继续培养 48 h后测量抑菌圈直径。

2结果与分析

2.1细菌分离培养特性与形态特征

分离菌株在胰蛋白胨大豆琼脂培养基（TSA）上生长良好，菌落湿润，小菌落呈露滴样，在麦康凯琼脂培养基和营养琼脂培养基上不生长。取菌落涂片、染色镜檢，革兰氏染色可见阴性小杆菌，单个或成双存在；瑞氏染色呈现两极浓染的小杆菌。

2.2生化试验

由表1可见，TY1和TY2株均不发酵乳糖、半乳糖、葡萄糖、麦芽糖、蔗糖等多种碳水化合物，不产生靛基质和硫化氢，过氧化氢酶、氧化酶和明胶液化试验为阳性，符合鸭疫里默氏杆菌的生化反应特征。

表12株分离菌株生化特性鉴定结果

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项目1结果1项目1结果1项目1结果乳糖1-1麦芽糖1-1M-R1-半乳糖1-1甘露醇1-1H2S1-覃糖1-1山梨醇1-1过氧化氢酶1+果糖1-1枸橼酸盐1-1尿素酶1-蔗糖1-1硝酸盐还原1-1氧化酶1+棉子糖1-1柠檬酸盐1-1吲哚1-葡萄糖1-1V-P1-1明胶液化1+

2.3血清型鉴定

将TY1和TY2株分别与鸭疫里默氏杆菌1～10型单因子阳性血清做玻片凝集试验，两菌株均与1型阳性血清出现清晰的乳白色絮状凝集块，与其他型阳性血清均不反应。由此鉴定，TY1和TY2株均为血清1型。

2.4药敏试验

由表2可见，TY1和TY2株对头孢吡肟、环丙沙星高度敏感，对强力霉素、阿莫西林中度敏感，对复方新诺明、阿米卡星、庆大霉素、青霉素、链霉素、阿奇霉素、林可霉素、利福平耐药。

表22株分离菌株的药敏试验结果

药物名称1抑菌圈直径（mm）TY11TY21药物浓度

（μg/片）头孢吡肟119118115环丙沙星11611715强力霉素112113130阿莫西林114111110复方新诺明1919123.71、1.25阿米卡星1918130庆大霉素1818110青霉素1917110链霉素1718110阿奇霉素1816115林可霉素151712利福平151315注：抑菌圈直径10 mm 以下为耐药（不敏感）；10～15 mm为中度敏感；15 mm以上为高度敏感。

3小结与讨论

鸭疫里默氏杆菌初次分离培养，由于所需生长条件苛刻、病料不新鲜和鸭场大量使用抗生素等原因，往往不易分离到，因此，RA初次分离，病料的采取和培养条件的选择至关重要。从分离过程中发现，在病鸭刚死亡或濒临死亡时无菌采取鸭脑组织和心血，且在TSA琼脂培养基平板上37 ℃、5% CO2培养箱中培养24～48 h，病菌分离成功率较高。

血清型鉴定有利于疫苗的研究和RA 控制。由于RA 血清型较多，且各血清型之间的交叉保护性差， 因此，研制针对本地血清型的RA疫苗对于鸭疫里默氏杆菌的防治具有重要意义[7]。根据胡清海等人的调查，江苏地区主要以1、2、10 型为主[8]。从本次试验结果可知，泰州周边地区规模鸭场分离的2株RA菌株均为血清1型，基本摸清了本地区流行RA菌株的优势血清型，为研制相应血清型的疫苗、控制该病的发生奠定了理论基础。

目前，鸭疫里默氏杆菌已成为国内危害养鸭业最严重的传染病之一，大部分鸭场，尤其是肉鸭场都有此病发生。虽然 RA 对多种抗生素敏感，但极易产生耐药性，而且不同地区、不同菌株对抗菌药物的敏感性不一，给实际治疗工作带来困难，最好能对当地分离菌株进行药敏试验，以便选择最佳药物进行治疗[9]。头孢吡肟为新的第四代注射用头孢菌素，对葡萄球菌属和肠杆菌属（尤其产气和阴沟肠杆菌）的作用更强，对多种质粒介导和染色体介导的β内酰胺酶稳定，兽医临床应用较少。本次药敏试验结果表明，泰州地区鸭疫里默氏杆菌对头孢吡肟和环丙沙星高度敏感，对氨基糖苷类抗生素如庆大霉素、丁胺卡那霉素、林可胺类抗生素和磺胺类抗生素等耐药。因此，临床选择用药时必须以药敏试验结果为依据，才能做到正确用药，减少耐药菌的产生，从而提高治愈率，减少经济损失[10]，有条件的鸭场更应定期对环境中RA的药敏特性进行监测，以便在发病时及时有效地用药。

参考文献：

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鸭疫里默氏杆菌病防治 篇3

1 临床症状及病理解剖

病鸭表现为最急性、急性和慢性经过。一群鸭当中最初发病的几乎看不到明显临床症状而死亡;之后, 鸭群逐步发生嗜唾, 萎靡不振, 打堆、体温升高、不食或少食、拉绿色或黄绿色稀粪, 不愿走动、眼有浆液、鼻孔流出露滴状分泌物、腹部略膨胀, 发病2～3d后死亡。部分能存活, 但生长发育不良, 消瘦, 最后变成僵鸭。

剖检变化主要为:肝表面覆盖一层灰白色纤维素膜, 土黄或棕红色、质脆、肿大, 胆囊充盈;气囊、腹腔、心外膜均有纤维素性膜, 心包膜与心外膜常粘连, 不易分离, 腹腔常有积液。

2 实验室诊断

2.1 细菌的分离

无菌采集病死鸭的肝脏、脑、心血同时接种于TSA (Difco laboratories) 平板、鲜血平板, 37℃烛缸培养24 h, 挑选单个可疑菌落编号后进行纯化培养、保存和革兰氏染色镜检。

2.2 分离菌鉴定

将纯化的分离细菌接种到TSA、麦康凯琼脂和血琼脂平板, 37℃烛缸培养24 h观察结果;接种于含5%小牛血清的葡萄糖、乳糖、蔗糖、麦芽糖、甘露醇等的糖发酵管, 37℃培养24～48 h, 观察结果。进行氧化酶、过氧化氢酶、吲哚、硫化氢、硝酸盐还原、液化明胶等常规生化试验。并进行1型和2型的血清学鉴定。

2.3 动物回归试验

将纯化后的分离菌分别接种于鲜血平板培养基, 37℃烛缸培养18～24 h后, 挑选典型菌落接种含5%小牛血清的普通肉汤, 37℃水浴振摇培养24 h, 制成含约102和104CFU/mL菌悬液两种, 分别后腿部肌肉注射4～6日龄健康雏鸭5只, 每只0.5 mL。观察20 d, 记录各菌株组小鸭发病和死亡情况, 记录发病鸭的临床症状和死亡鸭的剖检情况, 并从心血回收病原。

3 有效防治药物的筛选及研制

3.1 药物敏感性试验

抗生素的敏感药物试验按常规药敏纸片试验方法进行, 药敏纸片购自大连生物制药厂, 冰箱保存, 备用。单味中草药提取液的敏感性试验则按挖孔法进行。

3.2 药物组方设计与筛选试验

组方设计:根据协同药敏试验结果, 将敏感并有协同作用的药物合理组方, 研制成西药复方和中药复方的水溶剂和注射剂, 供试验用。

两组方剂分别进行抑菌试验:根据抑菌效果选择最佳组合, 制成中试产品进行临床治疗试验和推广应用试验。

药物安全性试验:选择最佳组方以治疗量的10倍、20倍、40倍剂量灌服小鼠和雏鸭各10只, 观察半月记录死亡动物情况, 判定其安全性。

药物最适用量的确定:将最佳组方药物溶液倍比稀释后, 分别治疗人工发病雏鸭, 统计死亡和康复雏鸭, 判定疗效, 确定最适用药量。

4 结果

4.1 细菌分离和鉴定

先后从发病鸭的心血、肝和脑中分离出可疑细菌8株。分离菌在TSA平板上形成圆形、隆起、露珠样、直径为0.5～1 mm、大小均一的菌落。在血琼脂平板上不溶血, 菌落表面光滑、隆起、圆形似奶油、直径为1～1.5 mm;分离菌在麦康凯上不生长。菌落涂片镜检可见革兰氏染色阴性的小杆菌、两极略微重染、细菌大小 (0.2～0.4) mm×15 mm。可疑菌不发酵葡萄糖、乳糖、麦芽糖、蔗糖、甘露醇、果糖和甘露糖, 氧化酶与过氧化氢酶试验呈阳性, 有吲哚、硫化氢产生、硝酸盐还原、明胶液化试验均为阴性。经重庆市畜牧科学院兽医所进行的血清学试验鉴定为鸭疫里默氏杆菌血清I型。

4.2 动物试验及细菌的回收结果

分离菌肉汤培养物104CFU/mL试验组接种后36 h全部发病, 发病后2～3 d内全部死亡, 从死亡鸭只的心血中回收到该菌。102CFU/mL试验组在接种后第4～7天发病, 发病后7～10 d自然康复, 但生长发育缓慢;对照全部健康。人工感染试验104CFU/mL组表现为最急性或急性经过, 病鸭萎靡不振、嗜睡、打堆、体温升高、不食、拉绿色稀粪, 于发病后24～36 h全部死亡 (5/5) 。大体剖检变化为肝表面覆盖一层灰白色纤维素膜, 肝呈棕红色、质脆、肿大, 胆囊充盈、气囊、腹腔、心外膜均有纤维素性膜, 心包膜与心外膜粘连, 不易分离, 腹腔积液, 注射部位水肿。102CFU/mL剂量组表现为慢性经过, 体温升高;精神不佳、缩颈、不愿走动、眼有浆液、鼻孔流出浆液性分泌物呈露珠状、黄绿色稀粪、腹部略膨胀, 死亡率较低 (1/5) , 存活者变成僵鸭。

4.3 药敏试验结果

该分离菌对利福平、氯霉素、庆大霉素、环丙沙星和氧氟沙星高敏, 对红霉素、呋喃唑酮、新霉素、丁氨卡那霉素、头孢三嗪、羧苄青霉素、头孢唑啉、麦迪霉素、链霉素、卡那霉素和万古霉素中敏, 对青霉素、多粘菌素B等不敏感。中草药制剂“双草素”高敏, 其抑菌环直径可达19 mm以上。

根据药敏试验结果设计与筛选的以氧氟沙星为主的西药组方具有良好的安全性 (40倍剂量均无异常发生) , 经初步临床治疗试验有效率可达92%以上。

5 讨论与小结

鸭疫里默氏杆菌病又叫鸭浆膜炎, 是鸭病中危害较为严重的疫病之一, 常常侵袭2～3周龄的幼鸭, 一旦发病其死亡率都比较高, 所以早期预防措施相当重要。由于其血清型较多, 抗生素的使用又容易引起耐药性, 这又为该病的防治带来难度, 所以难免还在一些地方发生该病。本地区附近发生的2～3周龄鸭群大量死亡现象, 经过临床诊断和实验室鉴定, 确诊为鸭疫里默氏杆菌血清I型所致。

试验表明, 分离菌人工感染引起的疾病与自然感染发病在临床症状、大体剖检上一致, 但相同剂量的不同含菌量接种动物后其存活率的差别提示我们动物生存环境的状况相当重要。以104CFU/m L剂量接种动物后全部发病死亡, 表现为多个内脏器官的浆膜炎;而102CFU/m L剂量组表现为慢性经过, 死亡率20% (1/5) 。所以加强饲养管理, 重视常规的环境卫生措施, 以减少鸭群接触该病原菌的机会对该病的防制意义重大。

药敏试验表明, 分离菌对利福平、氯霉素、庆大霉素、环丙沙星、氧氟沙星高敏, 对卡那霉素等中敏, 对青霉素、多粘菌素B不敏感, 这表明各养鸭场 (户) 可能存在大量使用青霉素等, 造成了耐药性。因此在养鸭生产上应防止抗生素的滥用, 以免耐药性的产生, 同时对发病鸭场用药应结合药敏试验进行选择。

此次药敏试验初步筛选出较为敏感的中草药制剂“双草素”, 从其对鸭疫里默氏菌具有的高度抑菌作用来看, 它为应用中草药制剂防治本病奠定了基础, 但具体应用还有待进一步研究。

浅淡鸭疫里默氏杆菌病的防制 篇4

1 流行特点

家禽中鸭的易感性最高, 不同品种的鸭均可发病。主要侵害2~7周龄的雏鸭, 其中2~3周龄的雏鸭最为严重, 虽然随年龄的增长鸭的易感性降低, 但也有报道90日龄后的青年鸭、产蛋鸭及种鸭也可发生此病。

本病一年四季均可发生, 但在低温、潮湿、阴雨连绵的季节发病率更高。不良的饲养环境、饲料营养不均衡、鸭群内有其它疫病时会造成此病的暴发。

2 临床症状

常见的临床表现为精神沉郁、厌食、缩颈嗜睡、咳嗽、喷嚏、呼吸困难、眼鼻中有浆液性或黏液性分泌物, 眼周围羽毛由于分泌物粘连而形成“污秽圈”;腹泻、粪便稀薄呈淡黄白色、绿色或黄绿色;部分病鸭出现扭颈、摇头、运动失调等神经症状;个别病鸭由于关节肿胀出现伏卧、不愿走动、跛行等症状。急性病例死前全身抽搐、死后常呈角弓反张姿势。

3 病理变化

本病特征性的病理变化是广泛性纤维素渗出性炎症, 表现为心包炎、肝周炎、气囊炎及脑腹炎。主要表现心包液增多, 心外膜表面覆盖有纤维素性的渗出物, 病程稍长者心包壁层与心外膜粘连在一起形成干酪样物;肝脏肿大, 呈土黄色或红褐色, 表面覆有一层极易剥离的灰白色或淡黄色的纤维素性膜;气囊壁增厚、混浊并覆有纤维素性或干酪样的渗出物。脑腹充血、出血, 表面也有纤维素性的渗出物附着。个别病例还会出现输卵管炎、皮肤局部坏死。

4 诊断

根据流行病学、临床症状及剖检所见广泛性纤维素渗出性炎症变化可作为本病初步诊断的依据。但应注意, 鸭大肠杆菌病和鸭沙门氏菌病都可引起浆膜性渗出性炎症, 在初步诊断上应注意区别。本病的确诊还需通过涂片染色镜检、细菌培养、生化试验、血清学试验等方法进行。鸭疫里默氏杆菌的菌体形态和培养特性与多杀性巴氏杆菌极其相似, 菌体均会出现两极浓染, 还需通过生化试验加以区别。

5 防制

5.1 加强饲养管理

根据雏鸭生长发育的营养需要, 适时调整日粮配方、适量添加维生素和微量元素以保证其营养均衡全面。保证鸭舍适宜的温度和湿度, 冬天注意保暖防寒, 夏天要防暑降温, 定期通风换气, 以保证舍内空气新鲜。根据雏鸭的日龄适时调整饲养密度, 实行全进全出制的饲养模式, 以提高鸭群的健康水平。尽量避免或降低换料、转群、运输、惊扰等应激因素对鸭群的影响, 必要时在饲料中添加多维以提高鸭群的抗应激能力。

5.2 做好消毒工作

选择刺激性小、低毒、广谱的消毒药每周至少2次对鸭舍实施带鸭消毒, 应注意为避免产生耐药性应定期更换消毒药。对于鸭的嬉水池每半月按10kg/亩剂量撒漂白粉消毒一次。

对于空鸭舍应先彻底清扫、再选用两或三种化学消毒剂交替进行喷洒消毒、再密闭熏蒸消毒后重新启用。对于清扫用具、笼具也应进行消毒。

5.3 免疫接种

鸭疫里默氏杆菌血清学较多, 且各个血清之间没有交叉保护。因此, 在进行免疫接种之前, 最好先鉴定本地流行的血清型, 选用同型菌株的疫苗。或者选用多价灭活苗进行免疫, 才能获得较好的免疫效果。

5.4 药物预防

生产过程中有时疫苗的保护不是很理想, 因此药物预防是当前控制本病的一项重要措施, 可选择氯霉素、青霉素、庆大霉素、环丙沙星、恩诺沙星、氟苯尼考等药物。但鸭疫里默氏杆菌耐药性很强, 有条件的鸭场应通过药敏试验选择高效药物, 没有条件的鸭场尽量选择平时少用或不曾用过的药物。

5.5 发病后的处理

一起鸭疫里默氏杆菌病的诊治 篇5

1 发病情况

病鸭表现为精神不振, 食欲减退, 蹲伏, 不愿走动, 共济失调, 呼吸困难, 眼睑粘连, 有的鼻窦肿胀, 排黄绿色稀粪等多种症状, 每天死亡80~100只。

2 临床症状

病鸭精神状态不佳, 困倦, 发病初期, 表现为精神差、采食量下降、嗜睡、多卧伏, 缩颈, 眼鼻有分泌物, 有的甚至被分泌物粘连, 有的鼻窦肿胀, 有轻度的咳嗽, 打喷嚏, 脚软不愿走动, 不能站立, 4周龄以上的病鸭易出现神经症状。发病后期, 病鸭表现为瘫痪, 无法站立, 部分病鸭出现扭颈、摇头, 急性病例死前出现全身痉挛性抽搐, 死后常显角弓反张姿势。

3 剖检变化

剖检死亡鸭12只, 其中7只症状明显, 3只病变不明显, 其它均见消瘦和腹胀, 部分可见腹水。见有心包积液、气囊、肝脏表面覆盖一层纤维素性薄膜;十二指肠黏膜充血;肺脏瘀血、水肿, 肺门淋巴结肿胀、出血;肝脏橙红色, 质脆肿大, 外边包裹一层灰黄色纤维膜;脾脏肿大;胆囊肿大;胃黏膜有大量粘液;肠道有黄绿色粘液状物;有的脑膜充血、水肿, 有出血;个别关节肿胀, 关节液增多等。

4 实验室检验

4.1 组织涂片镜检

以无菌操作取病死鸭的心脏、肝脏、脑膜病料等涂片, 经革兰氏染色镜检, 可见革兰氏阴性的小杆菌;经瑞氏染色镜检可见两极浓染着色、无芽孢、有荚膜的小杆菌。

4.2 荧光抗体检查

以无菌操作取病鸭肝或脑组织病料涂片, 火焰固定, 用特异的荧光抗体染色, 在荧光显微镜下检查, 可见黄绿环状结构, 多为单个散在或短链排列。

4.3 细菌分离与鉴定

以无菌操作取病鸭心血和肝组织病料, 分别接种于两组血液琼脂平板、麦康凯琼脂平板、巧克力琼脂平板培养基上上, 分别置于烛缸和温箱中, 37℃培养24~48h。在各种培养基上生长情况分别是:在血液琼脂平板上长出不溶血的圆形、光滑、湿润、微隆起、半透明露珠状的小菌落, 小菌落大约1.45 mm大小;在巧克力琼脂平板培养基上有细小、湿润、表面光滑、边缘整齐的微隆小菌落, 大约1.9 mm大小;而在温箱中培养和麦康凯琼脂平板培养基上均无病原菌生长。

4.4 生化试验

提取培养的纯菌落, 接种于生化试验管中, 37℃培养48 h。结果分离的革兰氏阴性短杆菌, 不发酵葡萄糖、木糖、蔗糖、果糖、肌醇;不分解尿素, 不产生硫化氢和吲哚, 不还原硝酸盐, V-P实验为阴性, 过氧化氢酶实验为阳性。

4.5 药敏实验

无菌挑取培养基上的纯菌落, 用药物纸片进行药物敏感试验, 试验结果显示为该菌对红霉素、阿莫西林、丁胺卡那霉素、氟苯尼考高度敏感, 对新霉素、卡那霉素中度敏感, 对氟哌酸、庆大霉素有抵抗力。

5 诊断

根据发病情况、临床症状、剖检变化、实验室检验结果, 确诊为鸭疫里默氏杆菌感染。

6 治疗

6.1 改善饲养环境, 加强饲养管理

用百毒杀、威岛消毒剂交替对鸭场进行彻底全面消毒, 对病死鸭尸体进行深埋或者焚烧无害化处理, 隔离病鸭, 调整饲养密度, 清除鸭舍粪便, 更换干净的垫料, 加强通风换气, 保持栏舍清洁干燥。

6.2 药物治疗

对每只病鸭注射丁胺卡那霉素1万u, 或青霉素、链霉素各5万u, 或氨苄青霉素每只3万u, 或2.0%氟苯尼考溶液按2 mg/kg体重肌肉注射, 连用3 d。对全群鸭采用阿莫西林按0.025%整群饮水, 连用3 d。同时用电解多维复合维生素可溶粉按一定比例稀释后饮水, 连用7d以提高机体抵抗力。

6.3 紧急免疫接种

对未发病鸭群进行菌苗紧急接种。采用鸭疫里默氏杆菌血清三价灭活疫苗, 按每只鸭0.6 m L/只剂量紧急接种。

通过采用药物治疗、隔离病鸭、全面消毒等几种办法后观察鸭只情况, 第5 d鸭群精神状态有明显好转, 采食旺盛, 无流涕拉稀现象, 粪便亦正常, 基本无沉睡现象, 病情很快得到有效控制。

7 小结与体会

7.1 鸭疫里默氏杆菌病易产生耐药性, 在进行药物治疗的过程中, 应做药物敏感试验, 来确保第一时间正确选择敏感的药物进行有效的治疗, 从而有效控制鸭群发病。

7.2 使用疫苗进行免疫是有效控制该病暴发的重要措施。未进行鸭疫里默氏杆菌病疫苗免疫工作, 在发该病后才紧急接种, 加之幼鸭群抗病水平低, 是暴发此病的重要因素。

鸭疫里默氏杆菌病防治 篇6

从应用效果来看, 疫苗对该病的预防有明显作用[4,5,6,7], 但也有免疫后发病的报道。究其原因, 除流行血清型与疫苗用血清型不一致和具有相似临床症状的大肠杆菌等感染外, 还可能与免疫后因抗体水平不高而不能有效保护有关。因此, 在生产中要确诊疾病并分析原因, 不仅需要进行病原种属和血清型的鉴定, 还要做好鸭群浆膜炎抗体水平的监测。

针对不同病原体的抗原抗体检测方法种类繁多, 各方法又因原理不同而具有各自优势和缺陷, 因此选择灵敏度高、准确性好而又适合于生产实际应用的方法已成为广大研究人员和兽医工作者所面临的首要问题。当前在RA抗原和血清型鉴定方面有传统的玻板凝集实验和琼脂扩散试验, 也有分子水平鉴定方法。抗体测定包含半定量和全定量两类, 其中半定量法多由抗原鉴定法发展而来, 全定量检测中酶联免疫吸附法 (ELISA) 具有较好的前景和较高的实用价值。本文仅就近年来RA防治中抗原抗体检测方法的有关研究, 结合笔者在生产实际中对一些方法的应用进行综述, 以期能够为对该病的进一步研究和生产实际提供参考。

1 抗原鉴定方法

当前RA抗原鉴定采用的方法可以分为两个方面, 即抗原种属鉴定和血清型鉴定。前者通过各种传统方法, 如培养特性及现代分子生物学方法, 如PCR等与其他细菌进行区分, 后者利用特异性凝集反应进行菌株血清型的鉴定。在一个完整的病例诊断或流行病学调查中, 上述两方面应结合进行, 以获得尽可能详尽的抗原信息。

1.1 传统方法

传统方法主要是根据RA的培养特性[8,9]、形态特性[10]和生化反应特性[9]等, 利用相应手段与其他病原菌进行区分。不过研究显示, 不同血清型菌株间上述特性并不一致[11,12,13], 即使同一血清型内也会由于菌株来源的不同而表现出一定差异, 因此这类方法适用于抗原的初步鉴定及完全不具备其他检测条件的地区采用。

1.2 分子生物学方法

应用分子生物学方法鉴定抗原, 主要是基于当前病原菌分类手段的进步及近年来各国研究者对RA代表株和分离株部分及全基因序列的测定, 其中多聚酶链式反应 (PCR) 使用最多。

(1) PCR

PCR技术在现代分子生物学实验中应用范围最广, 其利用核酸在一定条件下能够发生变性、复性并延伸的基本原理, 通过多次循环获得大量目的片段, 最后将得到的产物利用电泳进行分离, 初步测定其大小, 或经测序后详细分析比较其序列特征。

目前利用PCR鉴定RA抗原主要依据RA菌体外膜蛋白A (Omp A) [14]和16sRNA[15]中所具有的特征性片段。Tsai等[16]应用PCR技术对18株RA台湾分离株的16sRNA和15株台湾分离株的Omp A进行了扩增测序, 并分别与GenBank中的已有序列及参考菌株序列比较, 结果二者的相似性分别为95%-100%和88.1%-100%。而魏秀丽等[17]在对分离自广东、福建和山东等地的8株RA Omp A基因进行扩增测序并与GenBank中发表的26株RA序列对比后, 也发现Omp A基因具有种内相对保守型, 其核苷酸和氨基酸同源性与菌株的血清型、分离时间和地点间无必然联系。

基于上述认识, 众多研究者在应用Omp A与16sRNA进行RA抗原鉴定方面建立了多种方法。魏秀丽等[18]同时设计了针对Omp A和16sRNA的两对特异性引物采用双重PCR技术得到大小为809bp和334bp的两个特异性片段。胡清海[19]与程龙飞[20]根据GenBank中提供的Omp A序列, 设计引物得到了809bp的特异性片段;而林树乾[21]与郭元奎[22]得到的特异性片段大小为592bp;杨建元[23]的片段为671bp。曲风发[24]建立了分别利用16sRNA特异性引物与通用引物结合限制性内切酶HaeⅢ的两种RA抗原鉴定方法;刘文华[25]在利用通用引物的实验中结合使用了EcoRⅠ和HaeⅢ两种内切酶;而陈泽祥[26]使用通用引物进行抗原鉴定时, 在片段扩增后结合了测序和同源性分析两个处理过程。

从上述研究来看, 应用PCR鉴定RA抗原的关键在于选择合适靶序列及建立成熟的操作程序。16sRNA是构成核糖体小亚基的组分, 其半保守区和非保守区序列因不同种属细菌而异, 且其长度适中、易于测序, 因此近年来已经广泛应用于细菌的鉴定与分类。Tsai等[16]在研究后指出基于16sRNA的PCR技术适合于进行RA抗原的鉴定。结合对其他研究者报告的分析及与专家学者的交流, 我们建议在分子诊断中应用RA 16sRNA保守区序列作为引物设计的参考。

(2) 其他

段泽等[27]根据RA荚膜多糖序列设计引物并建立了检测RA的实时荧光定量PCR技术 (FQ-PCR) 。研究显示, 只要样品中含有2个核酸拷贝, 检测结果即成阳性反应。临床上, 由于药物应用等原因, 常规方法有时很难分离到病原菌。因此, 该方法非常适合于进行临床样品的检测。

汪铭书等[28]应用随机扩增多态性DNA标记 (RAPD) 技术筛选到一条可以直接进行RA、大肠杆菌和沙门氏菌区分的特异性引物, 同时还筛选到8条可以区分血清1、2、4、5型的特异性引物。蔡畅等[29]应用单链构象多态性 (SSCP) 技术对26株RA菌株的PCR产物进行了分析, 结果显示该结果可以作为RA分类鉴定的一种指标。RAPD技术在PCR基础上发展而来, 使用一系列不同碱基随机排列的寡核苷酸单链为引物, 利用PCR反应进行DNA扩增, 检测序列的多态性, 自出现至今该技术已成为基因定位、品种鉴定、遗传变异检测及遗传图谱构建等方面的一种有效工具;SSCP技术是一种基于不同碱基组成DNA在构象上的差别检测点突变的方法, 该技术简便、快速、灵敏, 与其他方法比较具有较高的检测效率。虽然上述两种技术较PCR具有更高的准确性, 但由于操作体系还未完善, 要使之真正用于临床检测, 还需要对各项技术指标进行深入研究。

1.3 免疫学方法

应用免疫学方法进行RA抗原鉴定, 依据的基本原理是抗原抗体在一定条件下能够产生特异性反应, 并且可经一定途径观察到反应产物。由于目前RA已确认血清型有21种[30], 因此根据反应中所使用抗体类型的不同, 该方法可以分为型特异性抗原鉴定和种特异性抗原鉴定两种。

型特异性抗原鉴定一般是在抗原种属鉴定之后进行, 主要通过玻板凝集实验[31]和琼脂扩散试验[32]进行, 具有操作简单、准确性高的特点。不过研究发现, 一些血清型抗原抗体间存在有交叉反应[33,34], 因此在鉴定时, 应同时参考其他方法的结论。

种特异性抗原鉴定的免疫学方法目前报道并不是很多, 且主要集中在荧光抗体技术和免疫组化技术两方面。苏敬良[35]与朱琪[36]在各自试验中应用制备的多克隆抗体结合异硫氰酸荧光素 (FITC) 标记的羊抗兔IgG, 建立了检测RA抗原的间接荧光抗体技术, 实验结果表明两种方法都具有较好的特异性和敏感性。秦春雷等[37]在研究中利用流行较多的血清1、2、6、10型RA抗原制备的抗体, 对直接荧光抗体技术和间接荧光抗体技术进行了种和型特异性检验, 结果显示两种方法都具有种特异性而不具备型特异性, 因此可以在检测中直接应用, 而不必考虑血清型的差异。随着对RA抗原在基因水平的进一步认识, 陈虹[38]应用纯化的兔抗RA1型磷酸二酯酶 (PDE1) 重组蛋白IgG抗体建立了检测RA的间接免疫荧光法和间接免疫组化法 (IIS) , 实验结果证实, 两种方法均具有较好的特异性和灵敏度。针对RA来源不同可能引起的检测误差, 刘维平[39]与孟琼华[40]分别用鸭源1型抗原和鹅源1型抗原制备的多克隆抗体建立了IIS法, 通过对人工感染雏鸭和雏鹅的RA检测, 证实方法具有直观、特异和灵敏的特点。

2 抗体检测方法

抗原进入机体后能够刺激免疫系统产生体液和细胞双重应答反应, 其中体液应答的产物是抗体, 它主要分布于血液和局部黏膜组织表面;而细胞免疫应答反应的结果则是形成大量具有杀伤功能的致敏T细胞。通常机体对抗外来病原侵袭的完整应答反应是上述两方面的综合作用, 差异在于哪一方在其中起主导作用。目前针对RA免疫应答是受控于体液免疫[41]还是细胞免疫[42]并没有一致定论。不过, 多数报道集中在体液免疫应答方面, 而且检测抗体水平要比测定免疫细胞数量变化简单快速准确。

检测RA抗体, 一方面可以根据抗体水平变化进行RA感染的诊断, 另一方面可以进行疫苗免疫效果的监测。当前抗体检测中, 应用的方法可以分为半定量和全定量两类, 其中后者主要是指ELISA。

2.1 半定量法

这类方法包括玻板凝集实验、试管凝集实验和琼脂扩散试验等, 主要是将待检抗体按一定比例稀释后与RA抗原进行反应, 通过肉眼对反应结果进行判定, 具有操作简单等特点。不过凝集反应只能检测血清中的凝集抗体, 而胡青海等[43]的研究结果显示, 琼扩实验敏感性低, ELISA检测效价达16400时, 琼扩实验也为阴性反应。随着当前新检测技术的应用, 在抗体检测方面上述方法已经很少见有使用及其报道。

2.2 ELISA

ELISA是将抗原抗体反应的特异性与酶反应的灵敏性结合发展而来的一种新型抗原抗体检测技术。与其他方法相比, 该方法具有灵敏度高、准确性好、操作简单等优势。

当前应用ELISA进行RA抗体检测的研究有很多, 主要集中在间接ELISA法。使用该方法进行RA抗体检测的首要考虑是所使用进行包被的抗原类型。从目前来看, 报道中使用的抗原种类有灭活的全菌体[44]、制备的菌体裂解物[45,46]以及表达的基因产物[47]等, 这些包被原在实际应用中均具有良好效果, 但各有优势。方钦[48]在研究中对分别应用菌体超声波裂解抗原、脂多糖抗原及协同溶血素基因 (CAM) 融合蛋白为包被抗原建立的间接ELISA法进行了应用效果比较, 结果显示, 利用菌体超声波裂解抗原建立的间接ELISA适用于疫苗免疫效果的评价及免疫程序制定, 而以CAM融合蛋白为包被原建立的间接ELISA法可用于流行病学调查。由于RA具有21种已知血清型, 而各地区不可能流行单一类型[49], 如果将21种血清型抗原分别进行包被检测, 无疑将会加大工作量, 因此各研究建立的方法是否能够检测不同血清型的抗体极大影响检测结果的准确性, 解决这一问题的方法, 除了要对所建立的方法进行验证外, 还可以考虑使用RA种间共同抗原作为包被原。张冬冬等[50]利用1、2、6、10型四种血清型的全菌裂解物作为包被原, 进行同型及异型抗体检测, 结果各型抗原除了可以检测到同型血清中的抗体外, 还可以检测到异型血清中含有的高水平抗体;辜新贵等[51]对方法中使用的包被原—假定蛋白P25, 进行了分子水平分析, 结果所扩增基因的核苷酸序列及其编码的氨基酸序列和抗原表位在2、5、8、10型间高度保守, 表明该蛋白是各血清型RA间的共同抗原, 以其作为包被原建立的ELISA可以检测不同血清型抗体。前面提到, 进行RA抗体检测的目的有二:即感染监测和抗体水平检测。在实际应用中如何对感染抗体和免疫抗体进行区分也是所要解决的问题。另外, 由于同一地区流行的血清型有多种, 因此通常使用多价苗进行免疫, 要评价疫苗中各血清型菌株的免疫效果, 就必须要用型特异性抗原作为包被原建立型特异性检测方法, 而目前这方面的工作并未见报道。

虽然传统ELISA方法相比较于其他方法有了明显提高, 但技术的进步使得操作更为简单。刘爽[52]在实验中将RA菌体裂解物作为包被原与硝酸纤维素膜相结合, 建立了快速检测RA抗体的Dot-ELISA方法。

鸭疫里默氏杆菌病防治 篇7

近几年来, 我县养鹅业发展较快, 养殖量逐年增加。据统计, 2011年, 全县鹅的饲养量已达到100万羽, 养鹅业已经成为我县养殖业中的一个亮点。随着养鹅业的不断发展, 鹅的一些传染病也呈发展之势, 其中鸭疫里默氏杆菌病对养鹅危害较大, 一旦控制不好, 往往造成很大的损失。我县某场2012年4月份发生了一起雏鹅感染鸭疫里默氏杆菌病, 现将有关发病、诊治情况报告如下。

1 发病情况

2012年4月中旬, 张某养殖场所养1 200羽25日龄四川白鹅发病。最初只是零星发病, 几天后, 发病逐渐增多, 其间使用恩诺沙星等抗菌药物进行治疗, 但效果不明显。发病4天后, 出现零星死亡, 到第8天, 发病已达100余羽, 累计死亡30余羽, 且病情呈发展之势, 张某请求诊治。

2 临床症状

病鹅体温升高, 缩颈、拱背、精神沉郁, 羽毛松乱;食欲减退或废食;流泪、眼睑周围绒毛湿润、粘连或脱落, 形成明显的“眼圈”;鼻流浆液性或粘液性分泌物, 严重者鼻孔周围形成“结痂”, 粘满污秽物;少部分鼻腔肿胀, 出现明显的鼻窦炎;咳嗽、打喷嚏;拉稀, 粪便呈水样或黄色或白绿色;脚软无力, 行走迟缓或蹲伏不愿走动, 离群独处。病程长、严重者表现共济失调、站立不稳, 仰卧后不易翻转;有的头颈痉挛, 摇头、不自主点头, 头颈或全身震颤, 啄食动作不准确。发病后期濒死时, 神经症状更加明显, 头颈扭转, 转圈, 向前冲或向后退, 在水中常仰卧、侧翻、转圈运动十分明显。病程3~5天。

3 病理变化

剖检最明显的病变是浆膜表现有白色或淡黄色厚薄不一的纤维素性渗出物, 以心包膜、肝脏表面及气囊壁最明显, 部分肠系膜上亦有明显炎性渗出物。心包膜增厚、混浊、心包积淡黄色液体, 心外膜表面覆盖一层灰白色或淡黄色纤维素性渗出物, 形成明显的“心包炎”;肝脏肿大、表面覆盖一层白色或淡黄色纤维素性渗出物, 且易剥离;肿囊肿大, 充满胆汁, 且浓稠;气囊壁增厚、混浊, 附着数量不等、大小、形状各异的黄色或淡黄色干酪样渗出物;十二指肠严重出血, 小肠中度或轻度出血, 直肠有白色稀粪堵塞;肾肿不同程度肿胀, 输尿管内有白色尿酸盐沉积;个别见有关节炎症状。

4 临床诊断

根据发病情况、临床症状及病理变化综合判断为鹅感染鸭疫里默氏杆菌病。因时间紧迫, 疫情严重, 没有做实验室检测。

5 防治

用氟苯尼考注射液对鹅群进行注射。未表现临床症状者按每千克体重注射10mg, 注射一次;发病者, 按每千克体重20mg进行注射, 一天一次, 连用2~3天。注射时, 更换针头, 发病者与未发病者分开注射, 以免交叉染感。同时, 在饮水中加入丁胺卡那霉素和多维, 连续使用5天。从治疗后第2天开始, 死亡率、发病率明显降低, 5天后除个别病情严重者死亡外, 其他基本治愈。

6 几点体会

6.1 养殖户要加强预防

许多养殖户认为该病只感染鸭, 鹅感染该病往往没有引起足够的重视, 疏于预防, 往往造成严重损失。

6.2 发病诱因

该病的发生往往与环境条件、气温等因素有着极大的关系。环境条件差、饲养密度大、气温变化大等情况下, 该病发生较多。

6.3 治疗选用效果要好的药物

目前, 氟苯尼考、丁胺卡那霉素等对该病较敏感, 效果较好, 有条件的地方, 最好先做药敏实验, 做到对症下药, 以提高治愈率, 争取治疗时间。

6.4 临床上应注意与鹅流感的鉴别

鸭疫里默氏杆菌病防治 篇8

1 发病情况及临床症状

畜主于11月18日早上喂料时发现有几羽鸭子不吃料、脚软, 不愿下水活动, 精神不振, 拉稀, 下午发现有零星死亡。曾用氟哌酸投喂进行治疗, 2次/d, 至20日早上, 病情未见好转, 仍有死亡发生, 死亡数已达50羽。

2 病理剖检

共剖检5羽病死鸭, 病变大体相似, 主要病变表现为心积液, 心包膜表面有黄白的纤维素性渗出物;肝脏表面有一层灰白色或灰黄色纤维素性膜状物覆盖, 容易剥离;气囔内有白色胶冻样的纤维素性渗出物;肠鼓气, 肠道内出血、充血, 肠壁变薄。

3 实验室检查

3.1 染色镜检

取病鸭肝、脾组织进行革兰氏染色镜检, 发现有中等大小、红色的杆菌, 呈革兰氏阴性。

3.2 细菌分离培养

采取病死鸭的心血、肝、脾、气囊上的干酪样物质等病料进行无菌操作, 将病料接种于血琼脂平板上和麦康凯平板培养基上, 经过37 ℃恒温培养24 h。血琼脂平板上可见圆形隆起、边缘整齐、均匀一致的粉红色菌落。用接种棒取菌落涂片, 经革兰氏染色镜检均可见大量两端钝圆的革兰氏阴性小杆菌。菌落较小的一种呈细小杆状, 单个或成对排列, 两极着色浓染。

3.3 药敏试验

采用常规药敏试纸法, 用打孔管将定性滤纸打成直径为6 mm的圆形小纸片, 灭菌干燥, 各取10片分别放入含有庆大霉素、青霉素、 土霉素、恩诺沙星、头孢赛福、氟哌酸药液的小瓶中, 制成药敏试纸备用。用无菌镊子将药敏试纸从瓶中取出, 用常规方法进行药敏试验, 结果发现头孢赛福、庆大霉素高敏, 青霉素、恩诺沙星中敏, 其它药物低敏或不敏感。

4 诊 断

根据发病症状、病理剖检变化和实验室诊断, 确诊为鸭疫里默氏杆菌与大肠杆菌混合感染。

5 防治措施

1) 对全场进行喷雾消毒, 更换鸭舍垫料。饮具、饲槽用消毒水清洗, 病鸭与健康鸭隔离。

2) 将病情较重, 不食的鸭隔离饲养, 并按体重可选用以下药物之一进行肌肉注射:①能治难按0.5 mL/kg体重进行治疗;②头孢赛福按2 mg/kg进行治疗;③庆大霉素按4 mg/kg进行治疗;④乙酰甲喹按0.1 mL/kg混合肌肉注射, 1次/d, 连用3 d。对病情较轻者, 可用鸭疫消 (500 g) 、朴杀平按1 kg饲料中添加2.5 g药物混合后全群投喂, 连喂3 d。

用药后第3 d回访, 除10羽病重死亡外, 鸭群的精神状况和采食量基本恢复正常。

6小结与体会

1) 大肠杆菌病多发生于环境卫生条件比较差的地方, 只要保持干燥卫生的环境就可以减少疾病的发生。对健康鸭定期严格按免疫程序注射鸭疫里默氏杆菌与大肠杆菌二联疫苗, 首免7～10日龄, 0.5mL/羽, 二免25日龄, 1 mL/羽, 可以很好的预防鸭疫里默氏杆菌与大肠杆菌病。

2) 制定有效可行的消毒程序, 定期严格进行消毒, 保持饲料和饮水的清洁、卫生。发病期与康复期每天坚持消毒。

3) 严格控制饲养密度, 做好日常的饲养管理工作, 避免饲料突然的更换。环境突变时投喂多维增强鸭的抵抗力。冬天应注意保暖, 夏天注意降温, 特别是中午应用消毒液喷洒降温, 尽量使鸭舍内温度适宜。对疾病做到早发现早治疗, 以减少损失。

4) 实行全进全出的饲养原则。对每一批鸭群废弃的垫料、鸭便定点堆放, 进行发酵灭菌, 减少污染。