酶的活性测定论文

2024-09-16

酶的活性测定论文（共5篇）

酶的活性测定论文篇1

近年来大量国内外研究结果表明活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)生成过多和(或)清除不足会破坏机体内氧化/抗氧化系统之间的平衡,导致细胞或组织损伤,从而促进癌症的形成与发展[1]。本文拟通过检测消化道肿瘤患者术前血清中活性氧、超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)和谷胱甘肽过氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-PX)的活性,以进一步探讨氧化损伤与消化道肿瘤发生发展的关系,为消化道肿瘤的抗氧化治疗提供一定的理论依据。

1 资料与方法

1.1 一般资料

癌症组:经术前内镜活检及术后病理确诊的消化道肿瘤患者148例,其中食管癌40例,胃癌58例,大肠癌50例,男女比例为120:28,年龄45～68岁,平均56岁。对照组:尽量使其年龄、性别、嗜好、性格、知识水平、精神状态及饮食习惯等与癌症组相当。选取临床体检正常的健康人40例,男女比例为29:11,平均55岁。

1.2 研究样本

受试者空腹,用真空采血管(内置抗凝剂为枸橼酸钠)于术前抽取外周静脉血5 ml,2 h内以1500～2000 r/min离心10 min,分离血清2～3 ml,保存于-80℃冰箱待测。

1.3 实验仪器

(1)普通水平离心机:上海安亭医疗仪器厂;(2)超低温冰箱:日本Sanyo公司;(3)水浴箱:北京长风仪器公司;(4)751型分光光度计。

1.4 实验试剂

ROS试剂盒、SOD试剂盒和GSH-PX试剂盒均购自南京建成生物工程研究所。

1.5 检测方法

分别采用Fenton显色法、黄嘌呤氧化酶法和二硫代二硝基苯甲酸法测定癌症组和对照组血清中ROS、SOD和GSH-PX活性。

1.6 统计学处理

实验数据采用SPSS 11.5软件系统进行统计学分析,数据采用均数±标准差()表示。

2 结果

试验结果:癌症组和对照组血清中ROS、SOD和GSH-PX活性检测结果见表1。

注:与对照组比较,*P<0.05

3 讨论

ROS是生物体内一类活性含氧化合物的总称,具有比分子氧更活泼的化学反应性质。近年来,ROS的研究逐渐成为热点之一。随着研究的深入,ROS的许多新功能也不断被发现。生理情况下,低浓度的自由基在许多生化生理过程中如细胞分化、发展、生长抑制、凋亡、免疫、抵御微生物侵袭等发挥着重要的作用[3]。当机体遭受各种内外源性氧化应激因素作用时,体内ROS的产生与清除体系失衡,过量的ROS将会引起组织细胞不同程度的氧化损伤,改变生物大分子物质的结构与功能,促进癌症的发生与发展[4]。为保护机体免受氧化损伤,细胞形成一套复杂的抗氧化损伤防御系统,该系统主要包括SOD、GSH-PX,过氧化氢酶(catalase,CAT)等。其中SOD是组织细胞内自由基清除体系中最重要的物质,它促使超氧阴离子自由基歧化为H2O2,通过清除超氧阴离子自由基,使细胞免受氧化损伤,SOD活性反映细胞内的抗氧化能力。GSH-PX则催化分解体内H2O2和脂质过氧化物,清除过多的ROS,保护染色体免受损伤和防止基因突变[5]。SOD和GSH-PX是衡量机体内自由基代谢状态的两项重要指标。

迄今为止,国内外有关消化道肿瘤与SOD、GSH-PX关系的研究结果尚存在一定的差异,可能与肿瘤的部位,病理分级和分期,实验样本来源,实验方法等有关[6,7]。本研究结果显示消化道肿瘤患者血清中ROS的活性显著高于健康对照组(P<0.05),而SOD和GSH-PX的活性均显著低于健康对照组(P<0.05)。ROS的生成增多伴随着抗氧化酶活性的降低启动过氧化反应链,造成生物大分子物质如脂质、蛋白质和DNA等的结构与功能改变,引起组织细胞的氧化损伤,从而导致癌症的发生、发展。一方面,体内病理性浓度增高的ROS和LPO及其代谢产物丙二醛(MDA)等可与单线态氧作用于抗氧化酶和辅酶等,使其活性进一步降低或丧失,进而攻击细胞内容物,触发和(或)使正常细胞恶性化。另一方面,恶化的肿瘤细胞又可产生ROS,直接破坏SOD和GSH-PX的结构并抑制其活性,引发新的脂质过氧化反应,从而进一步加速ROS的产生,不断触发和促发正常细胞恶性化、加速肿瘤细胞增生和浸润[8]。

目前,手术仍然是消化道肿瘤最有效的治疗手段,但手术造成的应激损伤将会加剧患者体内已有的自由基代谢紊乱。有研究报道较高比率的SOD、GSH-PX可以改善细胞内氧化还原的状态,特别是防止过氧化氢的积累,并且延长细胞群体倍增时间,降低细胞的接种效率,从而抑制肿瘤细胞的形成和生长[9]。因此本试验提示,在消化道肿瘤的治疗中可通过适当补充抗氧化剂来改善体内抗氧化酶的活性,降低自由基的水平,抑制肿瘤的继续发展,抗氧化剂治疗可能成为消化道肿瘤治疗中的一种辅助治疗手段。

摘要：目的探讨消化道肿瘤患者机体内自由基代谢状态的改变及其在消化道肿瘤发生、发展中的作用。方法分别采用Fenton显色法、黄嘌呤氧化酶法和二硫代二硝基苯甲酸法对148例消化道肿瘤患者(癌症组)和40例健康体检者(对照组)术前血清中活性氧(ROS)、超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)的活性水平进行检测。结果病例组血清中ROS活性(1197.844±489.640)U/ml显著高于对照组(507.706±17.525)U/ml,而SOD和GSH-PX活性(81.884±40.893)nmol/ml、(87.143±69.119)AU显著低于对照组(101.166±18.350)nmol/ml、(438.933±138.201)AU。结论消化道肿瘤患者体内自由基代谢紊乱,抗氧化损伤能力下降,氧化损伤与消化道肿瘤的发生、发展有一定的关系。

关键词：消化道肿瘤,活性氧,超氧化物歧化酶,谷胱甘肽过氧化物酶

参考文献

[1]Clerkin JS,Naughton R,Quiney C et al.Mechanisms of ROS modulated cell survival during carcinogenesis.Cancer Letters,2008,266 (1):30-36

[2]]Nishikawa M.Reactive oxygen species in tumor metastasis.Cancer Letters,2008,266(1):53 -59

[3]胡大林,廖建坤,吴校连,等.自由基与DNA的氧化损伤.国外医学·卫生学分册,2002,29(5):261-263

[4]Peter S.Reactive oxygen species in tumor progression.Frontiers in Bioscience,2005,5(10):1881 -1896

[5]赵克然,杨毅军,曹道俊.氧自由基与临床.北京:中国医药科技出版社,2000:55-56.

[6]Elzbieta S,Stanislaw S,Mariusz Koda et al.Lipid peroxidation and antioxidant status in colorectal cancer.World Journal of Gastroenterology, 2005,11(3):403 -406

[7]Yildiz D.Tülay A,Osman BT et al.Nitric Oxide and Antioxidant Defense in Patients with Gastric Cancer.Digestive Diseases and Sciences, 2006,51(8):1367-1370

[8]Maria -Jesus SP,Pilar M.Ana N.Mitocondrial dysfunction in human colorectal cancer progression.Frontiers in Bioscience,2007,1(12): 1190-1199

[9]Rainis T,Maor I,Lanir A,et al.Enhanced oxidative stress and leucocyte activation in neoplastic tissues of the colon.Dig Dis Sci,2007, 52(2):526-530.

酶的活性测定论文篇2

一、实验名称

探究香烟烟雾处理与酶的活性的关系。

二、实验目的

1.学会设计一个实验探索香烟烟雾处理与酶的活性关系。

2.学会观察实验中产生的现象, 分析观察到的现象, 得出实验结论。

三、实验原理

新鲜的猪肝中含有过氧化氢酶, 酶的本质是蛋白质, 因此其活性受多种因素的影响, 如温度、pH等, 香烟烟雾中含有的刺激性和毒性化学物质也能影响酶活性。

四、实验材料和用具

新鲜猪肝, 剪刀, 粉碎机一台, 市售香烟若干支, 漏斗2个, 200ml注射器2支, 吸管2支, 试管2支, 支试管2支, 胶头滴管4支, 3%过氧化氢溶液, 铁架台, 铁圈, 石棉网, 酸式滴定管3支, 滴定管夹, 100ml烧杯2个, 500ml烧杯一个, 温度计1支, 10ml量筒3个, 水槽1个, 导气管若干。

五、实验方法与步骤

1.新鲜猪肝提取液的制备及实验准备

猪肝经剪碎、研磨、过滤后, 滤液置于烧杯内, 待猪肝提取液充分沉淀, 用量筒量取2ml的猪肝提取上层清液, 分别加入A、B两试管内。

自制吸烟器:将两支吸管分别套在两支注射器上, 用胶布将连接处密封。将其编号为甲、乙。

实验装置连接:将装置按如图所示连接。

2.香烟烟雾的收集和对照气体的收集

点燃一支香烟, 用甲自制吸烟器收集香烟烟雾, 用乙自制吸烟器同时抽取等量空气。

3.将甲、乙自制吸烟器内的全部气体分别以相同速度缓慢注入A、B两支盛放猪肝提取液的试管内, 轻轻振荡两只试管, 并保证气体与液体充分接触, 重复2次。将两试管同时放入水浴烧杯内。

4.实验组和对照组酶活性的检测

(1) 另取两支洁净带支管的试管, 编号为C、D, 用酸式滴定管分别量取5毫升的过氧化氢溶液加入其中, 将两试管同时放入37℃水浴锅内保温3~5分钟。

(2) 将A、B试管内的液体分别装入到另外两支酸式滴定管内, 调整两滴定管的液面到0刻度。然后同时转动两酸式滴定管玻璃活塞, 慢慢滴加3滴液体到C、D试管内。

(3) 每隔5秒观察记录一次量筒内液面下降的高度, 观察3分钟。最后可以从水槽中取出两支量筒。将带余烬的卫生香分别放入C、D两支量筒内观察卫生香复燃的剧烈程度.

六、实验结果预测

1.与C试管相连接的量筒在单位时间内液面下降快或卫生香复燃剧烈, 与D试管相连接的量筒在单位时间内液面下降慢或卫生香复燃不剧烈。

2.与D试管相连接的量筒内在单位时间内液面下降快慢相同或卫生香复燃剧烈程度相同。

七、实验结果分析

若出现上述1的实验结果, 则证明香烟烟雾能使酶的活性发生了改变, 使酶的活性降低。若出现上述2的实验结果则证明空气使酶的活性未发生改变。

八、实验结论

烟草点燃后形成的烟草雾中, 含有的微量的物质能影响酶的活性, 从而影响人体的新陈代谢, 影响人体的健康。

酶的活性测定论文篇3

1 白、黄、黑、绿、红五大茶类对酶的处理

1.1 绿茶杀青是其制作的主要工序, 是决定绿茶品质的关键

杀青就是利用高温破坏鲜叶酶的活性制止多酚类物质的氧化, 以保证绿茶的“清汤绿叶”的品质特征。其原理:鲜叶中能促使多酚类氧化的多酚氧化酶和过氧化酶是一种催化作用的蛋白质, 它不耐高温, 在85℃时, 酶就会钝化失活。

1.2 白茶萎凋是其制作的主要工序

温度控制在常温下, 20～25℃左右, 在酶的作用下渐渐失水, 在失水过程中, 发生一系列的物理和化学变化过程, 与此同时外形与内质也发生一系列的变化, 在正常萎凋中, 形态变化规律:贴筛→波卷→显毫→翘尾→定形。色泽变化规律:鲜绿→暗绿→黄绿→绯红→灰绿。最后形成“白装素裹”, 白茶品质风格。

1.3 红茶属全发酵茶, 发酵是红茶初制最关键的工序

其目的就是增强酶的活性, 促进多酚类化合物的氧化缩合形成红茶特有色泽和滋味, 同时在最佳温湿度 (24～28℃, 相对湿度95%以上) 条件下, 促进叶子充分发酵, 减少青涩味, 发生浓郁的香气。如果温度过高发酵过快, 多酚类化合物氧化缩合成不溶性产物较多, 叶底乌暗, 香低味淡。反之温度过低, 酶的活性弱, 发酵慢, 时间长。品质差。

1.4 黄茶焖黄是制作黄茶的主要工序

其过程是利用高温杀青破坏酶的活性, 其后多酚类物质的氧化作用是由于湿热的作用引起, 并产生一些有色物质。实质是黄烷醇类物质产生少量的非酶性制动氧化。制作机理为非酶性制动氧化。

1.5 黑茶关键工序是渥堆, 类似于黄茶的制作

其过程也是利用高温杀青破坏酶的活性, 而后多酚类物质氧化作用也是湿热的作用下, 并产生一些有色物质, 实质也是黄烷醇类物质迟缓氧化, 非酶性制动氧化, 程度黑茶比黄茶更深。

2 乌龙茶制作工艺

乌龙茶制作工艺汲取了白茶、红、绿茶之精华。传统加工工艺为:晒青→凉青→做青→杀青→初揉→炒熟→复揉→水焙 (毛火) →搧簸→凉索→毛拣→足火→纯火→毛茶, 共10余到工序。其中“做青”是乌龙茶制作工艺主要工序。

2.1 做青的作用

做青工艺 (摇青、做手) 是乌龙茶制作过程中, 形成其特有风格和品质的及其重要的环节。它带有继续自然萎凋的性质, 以茶多酚缓慢而符合要求的酶促氧化为主导的“发酵”, 伴以逐步破坏叶缘细胞的轻揉作用, 给酶促氧化过程提供必要的条件, 而形成乌龙茶“绿叶红镶边”的独特过程 (红茶的甜醇, 绿茶的清香) 。

2.2 做青方法

目前做青方法有:水筛摇青、综合做青机摇青。做青过程, 就是要为茶多酚氧化创造某些必要条件, 又要控制酶的活性抑制茶多酚氧化的进程和速度, 能较长时间保持细胞的活性, 利于大分子物质的充分水解和转化。做青全过程, 所需时间一般以10～12小时为宜过短不利于品质, 过长不利于工效。

做青主要分为4个阶段:第1阶段目的仍然为物理失水为主, 提高叶温, 叶温以18～20℃为宜, 激活酶的活性 (多酚氧化酶) , 引起一系列生物的化学变化 (也就是鲜叶体内物质产生分裂, 不断失水过程中, 促使叶内一些水浸出浓度提高) 的萎凋阶段。做法:以摇匀为主、轻摇 (每次2～3分钟) , 保持酶的活性基础上, 使青叶走水均匀, 青叶呈现萎软状态。一般历时2～3小时。第2阶段目的以摇活为主, 摇青稍比前段重 (每次5～10分钟) , 打破叶内水分的平衡, 使原先萎凋状态通过摇青呈现硬挺状态, 使萎凋叶复活, 也叫“还阳”。历时3小时左右。第3阶段为摇红阶段, 摇青程度重摇 (每次10～20分钟) , 目的使茶青在筒内翻转、滚动, 使茶叶和茶叶之间发生摩擦、损伤, 由于边缘受损的茶青在筒内翻转中, 叶缘受损的细胞和多酚氧化酶产生相互接触, 从而引起了叶缘的红变, 达到“绿叶红镶边”效果。该阶段历时3～4小时。第4阶段为摇香, 重摇 (每次15～25分钟) , 静置发酵, 叶温控制18℃左右为宜, 有利于大分子物质的断裂, 碳水化合物的水解, 香气产生。做青程度:以第2叶为标准, 叶脉透明, 叶色黄绿, 叶缘朱砂红, 青气散失, 叶形要呈汤匙状, 叶片要柔软、光滑绸带感, 翻动叶子要有沙沙的响声。该阶段历时3～4小时。

酶的活性测定论文篇4

关键词：线粒体天冬氨酸氨基转移酶,心脏疾病,肝脏疾病

2007年1月—2008年6月,笔者就线粒体天冬氨酸氨基转移酶(m-AST)在心、肝疾病诊治过程中的改变作了初步观察,现报告如下。

1 临床资料

1.1 一般资料

本组100例,均为住院病人,其中男69例,女31例,年龄19～73岁,均经临床各项检查确诊,其中急性心肌梗死19例、病毒性心肌炎20例、肝硬化28例、肝炎33例(ALT200U/L以上者)。正常参考范围系以正常健康检查者50例(其中男30例、女20例,年龄20～45岁),均无心、肝方面疾病和病史的检验结果[m-AST为(8.7±2.8)U/L,范围为3.1～14.3U/L]。

1.2 方法

仪器为德国拜耳PA-XT 108-A 010全自动生化分析仪,试剂为北京北化康泰临床试剂有限公司生产,采用速率法测定。

2 结果

心肌梗死、心肌炎、肝硬化及急性肝炎的AST和m-AST的测定值见1表。

3 讨论

AST有2种同工酶,即存在于细胞浆中的胞质天冬氨酸氨基转移酶(c-AST)和存在于线粒体中线粒体天冬氨酸氨基转移酶(m-AST),这2种同工酶广泛存在于动物或人的肝、心、骨骼肌和肾等组织中,尤以心、肝含量最高。一般情况下,血清中cAST比m-AST活力高得多,m-AST活力占总AST活力的大约10%,但当心、肝受损,尤其是心、肝细胞坏死时,血清为m-AST显著增高[1,2]。从本组数据可以看出,凡m-AST升高的患者,其AST均明显升高,说明心、肝组织细胞在受到损伤的同时,细胞膜通透性增大,使m-AST易透入血液,从而使血清中m-AST升高。急性心肌梗死患者血清中m-AST活力明显增高,其升高程度与心肌损伤程度成正比,所以m-AST测定是诊断心肌损伤较敏感的指标,对于急性心肌梗死等心脏疾病的诊断、治疗指导及预后判断有重要的价值[3,4]。

注:*各组与正常参考值比较,均P<0.01。

肝炎特别是急性肝炎时,由于线粒体破坏严重,m-AST释放入血,血清中m-AST明显升高,由于病情的差异,故m-AST升高幅度差别较大,但与总AST和ALT平行。同时,m-AST是急性肝炎恢复的一个客观指标,急性肝炎到恢复期,m-AST全部下降,预后良好,否则病程迁延,最终变为慢性肝炎[5]。

肝硬变患者m-AST也升高,但升高程度不如其他组病人,这可能与肝硬变所处的阶段有关,与以往文献一致[6]。总之,在心、肝脏病中,血清中m-AST活力测定有助于对肝细胞和心肌细胞破坏的评估,因此,m-AST是反映心、肝组织坏死程度的指标,又由于m-AST在血清中半衰期短,当细胞不再坏死时,血清中m-AST很快降低,所以m-AST又可作为心、肝等器官预后的指标。

参考文献

[1]荣墨克,孙荣武,何成彦,等.ELISA法测定线粒体天门冬氨酸氨基转移酶.吉林大学学报(医学版),2003,29(3):374-375.

[2]李兴武.选择性抑制法测定线粒体同工酶的试验探讨.陕西医学检验,2001,16(4):1-2.

[3]阴斌霞,王华,王香玲,等.急性心肌梗死患者血清m-AST的变化及意义.现代检验医学杂志,2005,20(6):64-66.

[4]王秀丽,董解菊,邵丽丽,等.心脏病患者血清天冬氨酸氨基转移酶及其同工酶检测的临床意义.重庆医学,2006,35(17):1562-1563.

[5]顾炳权,白慧霞.m-AST检测对急性肝炎预后判断的意义.中国血液流变学杂志,2005,15(4):660-661.

浅谈活性硅粉:可活性硅的测定篇5

1 试验部分

原理:试样采用振荡器振荡, 过滤后, 分取若干体积, 在弱酸性介质中使末聚合的硅酸与钼酸铵形成黄色硅钼杂多酸, 之后加入草酸消除磷、砷的干扰, 用硫酸亚铁铵或抗坏血酸将硅钼杂多酸还原为硅钼蓝, 测定其吸光度, 借此测定可活性硅的含量。

其主要反应式如下:

1.1 主要试剂

(1) 混合熔剂:两份无水碳酸钠与1份硼酸研细混匀。

(2) 盐酸 (0.5 mol/L) :量取41.5ml盐酸, 稀释至1L。

(3) 草酸溶液 (60 g/L) :称取6g草酸溶解于100 ml水中, 混匀。

(4) 硫酸亚铁铵溶液 (60 g/L) :量取165 ml硫酸沿玻棒缓慢注入500 ml水中, 搅拌, 加入称好的60 g硫酸亚铁铵, 溶解, 稀释至1 L, 混匀, 保存于棕色玻璃瓶中。

(5) 钼酸铵溶液 (50 g/L) :称取5g钼酸铵溶解于100 ml水中, 混匀。

(6) 抗坏血酸 (2%) :称取2 g钼酸铵溶解于100 ml水中, 混匀 (现配) 。

(7) 二氧化硅标准贮存溶液。

准确称取0.1000 g预先于105~110℃烘干至恒量的二氧化硅 (高纯99.9%以上) 于铂坩埚中, 加入5 g混合熔剂, 混匀, 表面再覆盖2 g混合熔剂, 加盖于900~950℃马弗中熔融15分钟, 取出, 冷却后, 置于塑料杯中用热水浸取, 同时洗出坩埚用盖, 移入1000 ml容量瓶中, 水定容至刻度, 摇匀。 (移入塑料瓶中贮存, 此溶液含二氧化硅100μg/ml。)

二氧化硅标准溶液:准确移取50.00 ml二氧化硅标准贮存溶液于500 ml容量瓶中, 用水定容到刻度, 摇匀。 (移入塑料瓶中贮存, 此溶液含二氧化硅10μg/ml。)

1.2 主要仪器设备

(1) HY-2多用调速振荡器。

(2) 分光光度计:应符合GB/T7728的规定。

(3) 常用实验设备。

1.3 试样

试样通过74μm试验筛 (GB/T 6003) 于105℃~110℃干燥至恒量, 贮存于干燥器内, 冷却至室温。

1.4 试验方法

(1) 盐酸、硝酸介质试样处理结果对比 (随同试样做空白试验) 。

称取1.0000 g样品于锥形瓶中, 加入温的30℃左右0.5 mol/L盐酸150 ml, 塞紧塞子, 于振荡器振荡30 min, 取出, 进250 ml容量瓶, 定容, 干过滤。

称取1.0000 g样品于锥形瓶中, 加入温的30℃左右0.5 mol/L硝酸150 ml, 塞紧塞子, 于振荡器振荡30 min, 取出, 进250 ml容量瓶, 定容, 干过滤。

(2) 显色与测定。

盐酸介质:移取2~20 ml滤液 (视含量高低而定) 于100 ml容量瓶中, 加入 (1+99) 盐酸40 ml;边摇边加钼酸铵溶液 (50 g/L) 5ml, 放置15 min (视天气冷暖而定, 冷天应放置时间要稍长些20~30 min) ;再加入20 ml (1+1) 草酸溶液 (60g/L) +硫酸亚铁铵溶液 (60g/L) 混合剂;用水稀释至刻度, 摇匀。于分光光度计波长650 nm处, 测其吸光度, 减去随同试样做出的空白, 在工作曲线上查出相应二氧化硅含量。

硝酸介质:移取2~20 ml滤液 (视含量高低而定) 于100 ml容量瓶中, 加去离子水30 ml;加入 (1+3) 硝酸2 ml;边摇边加钼酸铵溶液 (50 g/L) 5 ml, 放置15 min (视天气冷暖而定, 冷天应放置时间要稍长些20~30 min) ;再加入7 ml (1+3) 硫酸, 摇匀;加2%抗坏血酸5 ml, 用水稀释至刻度, 摇匀。15 min后于分光光度计波长650 nm处, 测其吸光度, 减去随同试样做出的空白, 在工作曲线上查出相应二氧化硅含量。

(3) 工作曲线绘制

移取1 0μg/m l二氧化硅标准溶液0.00 ml、0.20 ml、0.50 ml、1.00 ml、2.00 ml、5.00 ml分别置于一组100 ml容量瓶中, 分别按以上1.4.2步骤 (盐酸、硝酸介质) 进行, 并绘制工作曲线) 。

2 测定结果

(1) 表1为分别采用稀盐酸、硝酸振荡过滤后移取适量体积试样进行比色得出的结果进行对比。

(2) 表2为在没有标准样品与试样测定结果进行对比的情况下, 本文采用了加标回收法对实验测定结果进行实验。

(3) 表3为两种方法的稳定性进行对比:以上的测定结果再分三次测定, 前两次每隔30 min测定, 后一次放置第二天17 h测定, 吸光度值随时间的变化如下。

(4) (表4) 为采取钼蓝光度法与氟硅酸钾容量法测定结果进行对比 (在此氟硅酸钾容量法操作步骤省略) 。

3 结果与讨论及注意事项

(1) 从表1实验结果可以看出3个样品在两种酸性介质中测其吸光度得到的结果基本一致, 相对偏差仅为2.08, 说明结果重现性好。表2加标回收率为95.0%~105.0%, 最大相对误差为5.0%, 满足一般工业分析要求。

(2) 从表3实验结果可以看出用硫酸亚铁铵或抗坏血酸作为还原剂, 形成的硅钼蓝络合物稳定时间长, 两种还原剂效果基本相同。

(3) 从表4中可以看出比色法与容量法的结果对比, 测定值相接近。

(4) 大量的铁、硫化物、磷酸盐、砷干扰测定, 加入草酸能破坏磷酸盐, 样品中含铁20 mg/L、硫化物10 mg/L和磷酸盐0.8 m g/L以下时, 不干扰测定。