痰细菌培养标本（精选5篇）
痰细菌培养标本 篇1
1概述
细菌培养有血、尿、便、痰、胆汁、脑脊液、穿刺液、鼻咽拭子、脓及创伤感染等九大类标本, 痰培养阳性检出率最高 (这是笔者的经验) 。笔者从101例痰培养标本中检出82例有细菌生长, 阳性率为81%, 其男女比例:男∶女=67∶34, 年龄段 (以10年为一段, 20岁~29岁这一段用2来代替, 30岁~39岁用3来替换, 以此类推) :2∶3∶4∶5∶6∶7∶8=1∶1∶7∶18∶45∶22, 从这个比例中不难看出, 年龄在70岁~79岁之间发病最高, 80岁~89岁次之, 20岁~39岁这两段发病最少, 40岁以后逐渐增高, 70岁段达高峰, 80岁后稍微有所降低。谁说人生七十古来稀, 八十耄耋不用提?这说明随着医疗技术的不断发展, 人们的生活水平也在不断提高, 延年益寿已司空见惯, 那么, 怎样才能使生活质量进一步提高呢?为了使患者减少病痛折磨, 这就要求微生物检验尽早、准确无误地做出细菌耐药性分析, 为临床治疗提供可靠依据, 更好地为患者服务。
2细菌的分布
101例痰标本中检出82例有细菌生长, 其中肺炎双球菌36例, 金黄色葡萄球菌15例, 表皮葡萄球菌16例, 肺炎克雷伯杆菌5例, 变形杆菌3例, 大肠杆菌2例, 甲型链球菌2例, 乙型链球菌2例, 丙型链球菌1例。细菌分布情况见表1、图1。
3细菌的耐药性分析
见表2、图2~8。
4讨论
表1是9种细菌百分比, 图1是9种细菌饼图比例, 表2是9种细菌耐药情况出现的次数, 图2是9种细菌耐药性簇状柱形图, 图3~8是各种细菌耐药性簇状柱形图, 甲型、乙型、丙型链球菌由于例数太少未做簇状柱形图。从上述各种图表中不难看出细菌的耐药情况。
上述各种图表中除表2外, 其余内容均一目了然, 从图2~图8, 均由表2数据所得。表2的由来:表2里的每一个数据, 都是微生物实验室记载的真实数据, 是每一种细菌耐药性统计的结果, 有多有少, 每一种细菌的耐药性均不同。如丙型链球菌一栏, 无一耐药, 这个细菌只有1例, 做了20种药敏试验全敏感, 因此, 这一栏空缺。由于是纯手工操作, 我院规定, 一般标本培养不超过4 d (除血培养外) , 从接收标本之日起为第1天, 接种;第2天, 若有细菌生长, 做初步鉴定是球菌还是杆菌, 是阴性还是阳性, 再进一步做生化反应, 同时根据初步鉴定结果做药敏试验;第3天, 药敏试验结果一目了然, 现在只报敏感和耐药, 根据生化反应确定细菌, 为临床提供准确的药敏敏感程度。笔者总是把抑菌圈最大的放在第1位, 然后以此类推, 不敏感的也就是耐药的, 不分先后均报出。若是第2天无菌生长, 给临床打电话, 先通报一下;第3天仍无菌生长, 则报告结果。若是第3天细菌已鉴定出来, 但是药敏试验全耐药, 这个时候就不分是革兰阳性球菌还是阴性球菌, 阳性杆菌还是阴性杆菌, 把第2天做过药敏试验剩余的15种, 再做1次药敏试验 (所以, 有的细菌几乎每一栏都有数据) , 等第4天药敏试验结果出来, 再报告给临床。不至于治疗盲目用药, 做到对症下药, 药到病除, 既减轻了患者疾病痛苦, 又减轻患者的经济负担, 还提高了医院的声誉, 因此, 细菌培养工作在临床上有重要的作用。
由于是手工操作, 加之个人水平有限, 不足之处, 还望各位同仁提出批评意见。
痰细菌培养标本 篇2
关键词 院内感染 痰培养 护理对策
中图分类号：R446.5 文献标识码：B 文章编号：1006-1533（2013）12-0038-02
Analysis of the current situation of sputum culture and specimen
collection in the geriatric nursing hospital and the nursing countermeasure
BAO Dijia， FU Jihong， LIU Ping
（Shunchang Hospital of Huangpu District， Shanghai 200023， China）
医院获得性肺炎亦称院内肺部感染，是临床上最常见的院内感染[1]，痰培养是主要的病原学诊断方法。但目前在老年护理医院较普遍的问题是痰培养标本采集不规范，不能指导临床针对性用药[2]，甚至影响或延误疾病的诊断和治疗[3]。现对我院2011年7月-2012年6月108例院内肺部感染患者痰培养结果分析如下。
1 对象与方法
1.1 对象
2011年7月-2012年6月我院发生的院内肺部感染患者134例，108例进行痰培养病原学检查。其中男52例，女56例，年龄55～101岁，平均年龄（83.0±8.2）岁。
1.2 方法
收集108例患者的护理记录和痰培养结果报告，采用Excel 2003建立数据库，用百分比进行分析。
2 结果
26例痰标本采集不成功原因：因病情变化立即转院5例（3.73%）；因烦躁不配合采样6例（4.48%）；因痰液在气管深部且黏稠或无痰15例（11.19%）。
108例痰标本培养检验结果：杂菌生长6例，占4.48%；条件致病菌68例，占50.75%，致病菌34例，占25.37%。
3 讨论
3.1 影响标本采集的原因
由于老年护理医院患者大多是老年患者，患者及家属认为已经得到了医师的明确诊断，痰标本检验对疾病治疗没有多大意义，又增加个人经济负担。且老年患者咯痰无力或痰液位于气管深部且黏稠，无法通过自主咳嗽获取痰标本是影响痰标本采集的一个重要因素[4]。患者病情变化快或有身心疾病，导致无法采集痰标本。
3.2 影响标本质量的原因
采集标本前护理人员未进行健康指导或老年患者理解偏差，不能掌握正确的留痰方法，使标本内混入唾液或鼻涕等，因此无法获得符合要求的痰标本[5]。留取标本前准备工作不充分，未能做到漱口或刷牙，导致留取标本污染严重，影响痰标本的质量[6]。患者及家属将标本盒乱扔乱放导致污染，影响标本质量。还有痰培养采集时间不当，多数患者使用抗生素治疗后再采集标本[7]。患者采集的标本一般是6?7时清晨的第一口痰，但护士要到病房交班后再送至检验科，标本放置时间过长也影响到标本的检查质量。
3.3 护理对策
3.3.1 采集标本前的护理
组织护理人员进行正确留取痰标本的相关知识培训，提高其业务水平。通过责任护士宣教和发放书面告知书等方法，向患者及家属解释留痰的目的和重要性、正确留取痰标本的方法及注意事项，以取得患者和家属的配合。收集痰液的一次性无菌容器盒集中放置在治疗室中，等收集痰标本时再统一发放至患者处，以减少容器因存放不当而造成的污染。采集前嘱患者以冷开水漱口或刷牙，以保证口腔清洁。对于无法配合漱口或昏迷的患者应先给予口腔护理，清洁口腔。对于口腔内有严重感染的患者可先给予洗必泰溶液漱口后再用生理盐水漱口。
3.3.2 采集标本时的护理
告知患者正确用力咳出呼吸道深部的痰液，避免标本混有唾液、鼻涕等分泌物，避免患者作无效的多次轻咳而造成不必要的疲劳。嘱患者深吸气，在呼气时用力咳嗽，并尽量咳出气管深处的痰，同时护士协助拍击其背部，促使附在气管、支气管、肺泡壁的痰液松动、脱落。
对咳嗽无力、昏迷患者的痰标本进行采集，可用一次性婴儿吸痰管连接吸引器为病员吸痰，将病员的痰液收集到吸痰器的储痰瓶内，留取痰标本2～5 ml，可以减少标本的污染[8]。对痰少或无痰患者的痰标本采集，可采用0.9%氯化钠液加温至45℃左右，再给予雾化吸入的方法，以湿润呼吸道，有利于痰液的稀释，促进痰液的排出[9]。
3.3.3 标本采集后
标本采集后最好在10～30 min内送至实验室，防止标本中的原始菌死亡或繁殖，以提高标本送检的合格率。如确实无法及时送检的可放置在4℃冰箱内保存，在2 h内送检，以防止痰液干涸或污染[10]。
综上所述，痰培养检测结果的影响因素主要在于采集前准备，采集中方法和采集后送检的三个环节。针对这些这些因素，采取相应的措施，提高送检标本的质量及检出的阳性率，为临床提供及时准确的信息，为合理使用抗生素提供准确依据。同时减少患者的痛苦和经济负担，也提高临床的医疗护理质量。
参考文献
[1] 陈坚. 老年护理医院内肺部感染原因分析及预防对策[J]. 实用全科医学， 2007， 5（2）： 161-162.
[2] 李学群. 改进痰培养标本采集方法对细菌学检验质量的影响[J]. 护理与康复， 2010， 9（3）： 253-254.
[3] 高艳， 贾春英， 马清光， 等. 痰标本质量对痰培养结果影响的对比分析[J]. 航空航天医药， 2000， 11（4）： 214.
[4] 李蕾， 纵瑞美. 痰培养存在的问题及纠正措施[J]. 实用医技杂志， 2006， 13（19）： 3525.
[5] 张肖英. 留痰标本失败原因分析及护理对策[J]. 齐齐哈尔医学院院报， 2003， 24（8）： 935.
[6] 张佩英. 提高痰培养标本质量的研究进展[J]. 解放军护理杂志， 2009， 26（10）： 33-35.
[7] 关淑琴. 痰培养时存在的问题及对策[J]. 山西医药杂志， 2010， 39（1）： 76.
[8] 杨钰， 秦健秀， 蒲晓波. 脑卒中昏迷患者痰培养标本采集方法的探讨[J]. 中国民族民间医药， 2011， 20（4）： 50-52.
[9] 邹永辉. 痰培养标本留取的探讨[J]. 现代医药卫生， 2002， 18（3）： 234-235.
[10] 王大连. 微生物学标本采集和运送中常见问题分析与对策[J]. 中华护理杂志， 2000， 35（4）： 220-222.
细菌培养标本涂片镜检的意义 篇3
1培养前标本留取质量的评价
标本留取质量, 直接影响细菌的培养结果的准确性。
如标在留取过程中被其它部位的常在菌、定植菌群污染, 还进行培养鉴定, 就会导致病源学诊断上错误, 误导临订治疗。所以细菌培养前必需作涂片镜检来评价标本留取质量, 只有合格的标本才能进一步进行培养鉴定。
1.1自然留取的尿液标本应以不高离心湿片直接镜检进行质量评价, 观察10个以上油镜视野, 平均每个视野有1个以上细菌者, 说明感染的可能性大, 作进一步培养。还要观察细菌的种类, 如果有3种以上细菌同时存在, 则标本可能被污染, 应重新留取。
1.2对于痰标本, 应在培养前作革兰染色镜检评价留取质量, 基标准为:扁平上皮细胞≤10个/低倍镜视野, 白细胞≥25个/低倍镜视野, 细菌形态在两种以下为合格痰标本, 另外有些标本白细胞数量上没有≥25个/低倍镜视野, 但见到了明显形态, 染色特征的致病菌, 如流感嗜血杆菌、肺炎克雷伯菌等, 应进行培养并向临床回报涂片检查结果。注重痰标本培养前质量评价, 可大大提高培养阳性率和结果的可靠性。
1.3对于深部位的伤口、中耳、子宫内膜感染留取的脓汁、分泌物标本, 出应进行涂片染色质量评价。如有大量磷状上皮存在则说明留取过程中被污染, 不能再进行培养。
2为临床直接提供诊断信息
根据标本来源部位和临订怀疑诊断疾病, 培养菌标本涂片做适当染色镜检, 对急性感染症的快速诊断有重要的实用价值。
2.1临床怀疑细菌性脑膜炎患者的脑脊液标本, 离心后沉淀做涂片革兰染色镜检, 如发现有典型形态、染色特征的脑膜炎双球菌、新型隐球、流感嗜血杆菌等, 可直接向临床回报镜检所见细菌的形态与染色特征, 并初步怀疑是哪种细菌。
2.2阴道、尿道、前列腺分泌物或脓法标本培养前做革兰染色镜检, 如见到白细胞内, 外有典型的革兰阴性肾形双球菌, 结合临床症状即可快速诊断为淋病。临床疑为真菌感染的阴道分泌物标本培养前可做涂片墨法染色镜检察院, 如在墨色背景下查到不着色有肥厚夹膜的酵母真菌, 即可向临床回报真菌的形态染色特点, 为临床作出快速诊断。
2.3深部位感染标本, 在培养前做革兰涂片染色镜检, 如发现菌体淡染、染色不一的革兰阴性杆菌、球杆菌等常为厌氧菌, 结合标本来源部位、感观性状 (有恶臭、脓血等) 向临床回报所见细菌的形态, 染色特性并疑为氧菌, 以便临床快速、正确选择抗厌氧菌药物治疗。
2.4标本培养前涂片镜检, 还可观察到白细胞的种类与数量, 如见到大量多形核白细胞和较多细菌则说明是急性细菌感染, 如白细胞数量较少并以单个核细胞为主则说明为慢性感染。此住信息为临床诊断也极为重要, 应及时回报。
3指导培养方向, 缩短培养时间
细菌培养前标本涂片染色观察细菌的形态, 染色特点, 结合标本留取部位和临床初步诊断。初步确认是那一类细菌, 并向这一类细菌方向培养与鉴定。可以直接选用鉴别培养基和专用分离培养基接种分离培养。大大缩短检测时间, 避免培养的盲目性。如脑脊液标本涂片染色观察到革兰阴性短小杆菌, 则应疑为水磨石嗜血杆菌, 直接接种到巧克力平板上培养。尿液标本如涂片见到杆菌则直接接各在亚酸钾平板上分离鉴定。
4细菌培养质量控制的重要手段
细菌培养前涂片观察到某细菌, 而培养结果为阴性或是培养生长的细菌与涂片观察到的细菌在形态和染色特点上不一致, 不能再向临床回报该结果, 应及时从如下几方面查找原因: (1) 厌氧菌标本采集、运送等技术操作不当, 淋球菌等脆弱细菌未及时接种培养, 较长时间放置在自然环境中都可造成细菌的死亡, 而使培养出现假阴性。 (2) 已经应用抗生素治疗的标本中残余抗生素抑制了细菌的生长。 (3) 培养基成分比例、p H值等不能达到要求, 就不利于细菌的生长, 甚至使细菌发生形态、染色性质的变异, 另外, 培养基所处环境气体成分、温度的变化都会影响细菌的生长。 (4) 细菌实验室内消毒不彻底, 用过的培养物和培养基不及时处理, 操作者无菌操作观念淡薄, 可造成实验室内污染。使用权得培养结果与涂片结果不一致。
有了培养前标本涂片镜检, 就可以及时发现问题, 分析原因, 解决处理, 提高了细菌培养的可信度。
痰细菌培养标本 篇4
关键词：呼吸机相关性肺炎,革兰阴性菌,亚胺培南
呼吸机相关性肺炎 (Ventilator-associated pneumonia VAP) 为机械通气常见的并发症, 由于其病原菌的变异比较大, 因此难以选择确切的抗生素进行治疗[1~3]。对于呼吸机相关性肺炎, 采用最初抗生素经验治疗有40%已经被验证为不合适, 主要是因为使用的抗生素抗菌谱没有正确覆盖病原菌, 因而导致相关性的死亡率显著高于正确治疗者。因此如何对呼吸机相关性肺炎的病菌进行正确判断并进行合理的抗生素治疗已经成为呼吸机肺炎预后至关重要的因素。对于获得病原菌的方法有多种, 包括血培养、痰涂片以及痰细菌培养等, 在检查细菌中痰细菌培养由于操作简单、效果明显一直为检验所用[4,5]。笔者发现该种方法可以有效指导呼吸机相关性肺炎抗生素使用, 对疾病的治疗具有重要作用, 因此作如下汇报, 望可以为后续的临床用药提供数据理论参考。
1 资料与方法
1.1 一般资料收集2012 年1 月-2015 年2 月呼吸科ICU的VAP患者80例, 其中男62例, 女18例, 年龄25~81岁。经气管切开72例, 经口气管插管8例。80例患者中, 慢性肺部疾病44例, 重症肺炎16例, 脑血管疾病7例, 术后严重感染8例, 心血管疾病1例, 重症肌无力2例, 心肺复苏后1例, 中毒1例。
1.2 呼吸机相关性肺炎的诊断对呼吸机相关性肺炎的诊断选择目前国内外比较公认的包括临床诊断以及微生物学的诊断。机械通气超过48h或者撤机拔管在48h以内的患者, 并且具备以下2项或者2项以上表现的患者: (1) 出现发热症状, 体温高于38.5℃或者比基础体温高1℃以上; (2) 通过血常规检查发现患者外周白细胞数>10×109/L或者<4×109/L; (3) 对患者的脓性分泌物进行涂片发现WBC>25个/低倍镜视野, 鳞状上皮细胞<10个/低倍镜视野; (4) 对患者进行X线胸片检查发现肺部出现新的或者进展性的浸润病灶。
1.3 痰细菌的采集以及培养采用带有表针收集瓶的一次性无菌吸痰管经气管插管或者气管切开导管处获得呼吸道的痰液标本。用法国梅里埃公司ATB全自动细菌鉴定及药敏测试仪进行细菌培养鉴定及药敏试验。如果是同一个患者的相同菌种标本, 并且收集的时间在1周之内, 则视为同一株病菌, 不做重复的统计。
2 结果
2.1病原菌分布80例患者中痰培养为阳性18例, 阳性率为22.5%, 一共培养出3种菌62株病原菌。革兰阳性菌20株 (30.8%) , 革兰阴性菌35株 (56.5%) , 真菌7株 (12.7%) 。
2.2耐药性分析呼吸机相关性肺炎中革兰阴性菌对亚胺培南的耐药性最低 (17.6%) , 万古霉素对革兰阳性菌敏感率超过90%。此次重点分析革兰阴性菌对常用抗生素的耐药性, 结果见表1。表1显示, 亚胺培南对革兰阴性菌耐药性最低为14.3%, 头孢噻肟为42.9%, 其余均>80.0%。大肠埃希菌对亚胺培南耐药性最低, 而对于其他抗生素的耐药性均较高。此外铜绿假单胞菌和肺炎克雷伯菌对亚胺培南也有一定耐药性。因此, 采用亚胺培南为主治疗革兰阴性菌感染患者, 临床治疗有效率为85.7%。
3 讨论
呼吸机相关性肺炎是医院内获得性肺部病症中比较常见的一种, 也是病死率比较高的一种[6]。诱发该类疾病的原因主要是患者的血行感染以及患者吸入咽部的分泌物。研究显示, 气管插管等的气囊并不能完全阻碍含菌的分泌物进入气管。细菌一旦进入气管就会在其导管内壁定植以及形成生物膜, 在呼吸机气流的帮助下进入到远端的气道。因此在某些情况下呼吸机管路以及湿化装置均可能是感染物的来源。
在本次的培养中, 80例患者中痰培养为阳性18例, 阳性率为22.5%, 一共培养出3种菌62株病原菌。革兰阳性菌20株 (30.8%) , 革兰阴性菌35 株 (56.5%) , 真菌7 株 (12.7%) 。培养得出的效果比较理想。
在本文结果中笔者发现, 呼吸机相关性肺炎的细菌耐药性均比较高。而革兰阴性菌对亚胺培南的耐药性较低, 但是对头孢曲松等具有较高的耐药性。对铜绿假单胞菌敏感的药物分别是头孢曲松和头孢噻肟。有文献报道, 铜绿假单胞菌对头孢曲松和头孢噻肟、哌拉西林以及氨曲南的耐药性已经达到50%~80%, 而对于哌拉西林的耐药性正在逐渐的上升, 已经达到了86%。该报道的结果与本论文所得结果基本一致。文献报道铜绿假单胞菌对头孢他啶和亚胺培南的耐药性也十分显著, 在本次结果中铜绿假单胞菌对亚胺培南的耐药性为40.0%十分显著, 与文献报道基本一致。以上结果暗示:对于呼吸机相关性肺炎的患者一定要慎重选用第三代头孢菌素。
本论文的相关结论仅建立在本论文的分析结果之上, 因为病原菌会随着用药频率的加大以及用药剂量的加大出现变异等情况。因此不应该根据某一次的研究结果一直指导着临床的用药, 在此笔者建议每次治疗呼吸机相关性肺炎时均应进行患者痰液细菌的培养, 然后根据培养结果指导使用抗生素, 从而提高患者生存率。
参考文献
[1]Charles MP, Kali A, Easow JM, et al.Ventilator-associated pneumonia〔J〕.Australas Med J, 2014, 7 (8) :334-344.
[2]He S, Chen B, Li W, et al.Ventilator-associated pneumonia after cardiac surgery:a meta-analysis and systematic review〔J〕.J Thorac Cardiovasc Surg, 2014, 148 (6) :3148-3155.
[3]Bassi GL, Ferrer M, Marti JD, et al.Ventilator-associated pneumonia〔J〕.Semin Respir Crit Care Med, 2014, 35 (4) :469-481.
[4]Keyt H, Faverio P, Restrepo MI.Prevention of ventilator-associated pneumonia in the intensive care unit:a review of the clinically relevant recent advancements〔J〕.Indian J Med Res, 2014, 139 (6) :814-821.
[5]郭富芹.ICU呼吸机相关肺炎56例病原菌分析〔J〕.齐鲁护理杂志, 2014, 20 (11) :123-124.
痰细菌培养标本 篇5
1 材料与方法
1.1 标本来源
2007年1月—2009年10月我院就诊的住院及门诊患者送检的细菌培养标本1 588份, 标本多来自于外科及妇产科, 包括伤口及手术切口分泌物、烧伤分泌物、阴道分泌物、各种穿刺液等。
1.2 仪器与材料
微生物鉴定及药敏试验, 德灵AS4细菌鉴定分析仪及配套产品阴性复合板NC31、阳性复合板PC20板条 (美国德灵公司产品) ;所用培养基均购自杭州天和微生物制药有限公司。
1.3 细菌学检测及药物敏感测定方法
严格按照无菌操作将标本接种到5%的血平板上, 35℃培养24 h, 常规分离致病菌后将细菌用德灵AS4细菌鉴定分析系统进行鉴定及药敏试验, 采用微量稀释法测得最小抑菌浓度 (MIC) , 严格按照美国国家临床实验室标准化委员会 (CLSI) 标准判读结果。
1.4 质控菌株
每天用标准菌株进行质控, 质控菌株为卫生部临床检验中心提供的大肠埃希菌ATCC25922、金黄色葡萄球菌ATCC25923、铜绿假单胞菌ATCC27853和粪肠球菌ATCC29212.
2 结果
2.1 病原菌的分布
1 588份细菌培养标本, 检出致病菌890株, 检出阳性率为56.04%.病原菌中, 革兰阳性球菌247株, 占27.8%;革兰氏阴性杆菌618株, 占69.4%;真菌25株占2.8%.具体见表1.
2.2 耐药率结果见表2、表3.
3 讨论
随着广谱抗菌药的不断更新, 抗生素的普遍应用, 打破了人体内部自然的微生态平衡, 临床感染的类型及感染细菌谱发生相应的变迁, 条件致病菌引起的感染不断增多, 较多文献报道, 感染菌谱变迁的总趋势以革兰阴性菌占主要地位[1,2,3,4]。本文研究显示:临床感染性分泌物病原菌主要是革兰阴性菌, 与之相符。由表1可以看出, 病原菌分布占前6位的是大肠埃希菌、克雷伯菌属、假单胞菌属、金黄色葡萄球菌、溶血葡萄球菌和肠杆菌属, 与相关文献[1,2,3]的报道有一定差异。在革兰阴性杆菌中肠杆菌科541株, 占60.8%, 其中主要以大肠埃希菌为主, 占全部病原菌的35.1%;非肠杆菌科77株, 占8.6%, 其中主要以铜绿假单胞菌为主, 占7.0%.由于革兰阴性杆菌广泛存在于自然界中, 其本身是无毒力或毒力弱的条件致病菌, 而这些条件致病菌在医院感染中占有重要地位。过去不致病或致病力弱的病原菌发展为致病菌, 其原因是革兰阴性杆菌大量聚居在人的皮肤和肠道等处, 当条件改变或机体免疫力降低时, 细菌易位并大量繁殖导致感染发生[5]。在革兰阳性球菌中金黄色葡萄球菌102株, 占病原菌总数的11.5%, 它的耐药性比表皮葡萄球菌更高, 对青霉素的耐药率达82.3%.给临床用药造成困难, 应引起临床的重视。
由表2可以看出, 革兰阴性杆菌如大肠埃希菌、铜绿假单胞菌、肺炎克雷伯菌、产气肠杆菌感染率较高。耐药率较高的有头孢唑啉、头孢噻吩、氨曲南、复方磺胺、头孢噻肟和庆大霉菌等, 并逐年增加。肠杆菌科细菌对亚胺培南未发现耐药菌株, 对哌拉西林钠/他唑巴坦钠、头孢西丁、阿米卡星有较好的抗菌活性, 对氨苄西林、氨苄西林钠/舒巴坦钠、哌拉西林和三代头孢的耐药性均较高。但对β内酰胺类与β内酰胺酶抑制剂组成的复方制剂敏感性大大增加, 如哌拉西林加他唑巴坦的敏感性比单用哌拉西林明显增效。上述资料表明, 肠杆菌科细菌对喹诺酮类的敏感性较低, 喹诺酮类不能作为医院内感染的经验用药。第四代头孢菌素如头孢西丁敏感性较高, 还有亚胺培南、阿米卡星敏感性也较高, 有较高的使用价值。
革兰阳性球菌以金黄色葡萄球菌、溶血葡萄球菌、表皮葡萄球菌为主, 耐药性较高的药物有青霉素、红霉素、复方磺胺等, 与文献报道基本一致[6]。葡萄球菌的主要耐药是耐苯唑西林 (MRS) , 包括耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 (MRSA) 、耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌 (MRSCN) 。且耐甲氧西林金黄色葡萄球菌 (MRSA) 高达45.1%, 耐甲氧西林凝固酶阴性葡萄球菌 (MRSCN) 也高达83.8%~96.5%.敏感的药物有万古霉素、利福平、庆大霉素等, 在治疗葡萄球菌感染时可供选药参考。
由于盲目滥用抗生素, 导致细菌耐药性产生, 医院感染复杂化, 为控制临床感染复杂化的程度, 应加强抗菌药物的使用和监控。临床医师在使用抗菌药物前应送标本做细菌培养和药敏试验, 为了合理使用抗菌药物, 耐药监测可以弥补由于细菌培养不能及时获得药敏结果的不足, 能有效指导临床医生合理应用抗菌药物, 这对降低细菌耐药率、有效控制医院感染具有重要意义。
参考文献
[1]王邵珺, 张伶辉, 周核.伤口分泌物细菌培养分析[J].检验与临床, 2009, 47 (12) :127.
[2]许青霞, 吕晓娴, 陈晓香.1213例送检标本的细菌谱分析及耐药菌监测[J].中华医院感染学杂志, 2006, 16 (1) :107-109.
[3]沈安宁, 袁明利, 许秋兰, 等.1223例标本细菌培养中病原菌的耐药菌分析[J].宁夏医学杂志, 2007, 29 (12) :1137-1138.
[4]李传杰, 卢美群, 韦勇法, 等.临床感染标本的细菌谱分析[J].中华医院感染学杂志, 2002, 12 (3) :177-179.
[5]李宏光, 李淑芬.临床抗生素应用与细菌耐药性分析[J].中华医院感染学杂志, 2001, 11 (2) :131-132.